Summary

Kemirgen Retina ve Uzaktan Ekstremite İskemik Önkoşullamanın Koruyucu Etkileri Fonksiyonu Değerlendirmek Üzere elektroretinogram kullanma

Published: June 09, 2015
doi:

Summary

The electroretinogram (ERG) is an electrical potential generated by the retina in response to light. This paper describes how to use the ERG to assess retinal function, in dark-adapted rats, and how it can be can be used to assess a neuroprotective intervention, in the present case remote ischemic preconditioning.

Abstract

The ERG is the sum of all retinal activity. The ERG is usually recorded from the cornea, which acts as an antenna that collects and sums signals from the retina. The ERG is a sensitive measure of changes in retinal function that are pan-retinal, but is less effective for detecting damage confined to a small area of retina. In the present work we describe how to record the ‘flash’ ERG, which is the potential generated when the retina is exposed to a brief light flash. We describe methods of anaesthesia, mydriasis and corneal management during recording; how to keep the retina dark adapted; electrode materials and placement; the range and calibration of stimulus energy; recording parameters and the extraction of data. We also describe a method of inducing ischemia in one limb, and how to use the ERG to assess the effects of this remote-from-the-retina ischemia on retinal function after light damage. A two-flash protocol is described which allows isolation of the cone-driven component of the dark-adapted ERG, and thereby the separation of the rod and cone components. Because it can be recorded with techniques that are minimally invasive, the ERG has been widely used in studies of the physiology, pharmacology and toxicology of the retina. We describe one example of this usefulness, in which the ERG is used to assess the function of the light-damaged retina, with and without a neuroprotective intervention; preconditioning by remote ischemia.

Introduction

ERG ışığa karşılık olarak retina tarafından oluşturulur ve gözün korneal yüzeyi kaydedilen bir elektrik potansiyeli. Kayıt koşulları dikkatle idare edildiğinde, ERG retina fonksiyonunu değerlendirmek için çeşitli şekillerde kullanılabilir. İşte biz 'flaş ERG', retina, bir Ganzfeld arka planda sunulan kısa, parlak flaş maruz kaldığında oluşan potansiyeli kaydetmek nasıl tarif. Ganzfeld homojen ışık dağıtır ve ışık flaş yaklaşık eşit bütün retina ulaşır. Retina kaydetmeden önce koyu adapte edilir ve hayvan kayıt için hazırlanmış gibi koyu adaptasyonu devam edilirse, ERG hem çubuk ve koni fotoreseptör tarafından oluşturulan aldı.

koyu adapte flaş ERG iki şekilde analiz edilmiştir karakteristik dalga biçimi vardır. İlk olarak, ERG, dalga biçiminin, erken ve geç bileşenleri ayırt ve nöron sekansına ilişkilendirilmiştirretina al aktivasyonu. erken bileşen kısa gecikme negatif gidiş potansiyel bir dalga (Şekil 1). Bu olumlu bir gidiş potansiyeli takip ediyor, b- dalgası olarak adlandırılan. b- dalga yükselen aşaması ayrı bir bileşen (osilatör potansiyelleri veya OP) olarak kabul edilir salınımları göstermektedir. a-dalgası fotoreseptör tarafından oluşturulan olarak kabul edilir, amacrine hücreleri 1 ile iç nükleer tabaka hücreleri ve ops b-dalgası.

Uyarıcı gücüne dayalı, çok loş flaşlar tepkiler skotopik eşik tepkisi mümkündür adlandırılan. skotopik sınır tepkisi, retinal bez hücrelerin 2-4 elde edilmesi anlaşılmalıdır. İkincisi, flaş ERG ışık adaptasyon ile ayrılabilir veya bir iki flaş protokolü tarafından çubuk ve koni odaklı bileşenleri içine, aşağıda anlatılan. Fotopik koşullar altında, koni nüfusu düşük olduğu için dalga, sıçanlarda değil saptanabilir, ancak Operasyonel ve b-dalgası5 açık. Kimin retinalar yüksek koni nüfusa sahip primatlar, olarak, çubuk ve koni yollar hem saptanabilir bir dalga 6 üretir.

Genellikle flaş ERG çıkarılan iki yararlı önlemler fotoreseptör nüfusu zarar verici parlak maruz bırakılarak, örneğin azalır, Şekil 2'de gösterilen tipik bir flaş yanıtları. Şekil 1 'deki gibi ölçülür A ve B amplitüdü, Hangi Işık, ERG tüm bileşenleri azalır. Gibi uzak iskemik önkoşullama (RIP) olarak nöroprotektif müdahaleler, a- b-dalgaları (Şekil 3) genliklerinin korunması ile doğrulanabilir. Özetle, ERG analizi hasarlı sağlıklı, hafif ve neuroprotected retina arasındaki karşılaştırmalar sağlar.

Protocol

Bu protokol University of Sydney hayvan bakım kurallarına uyar. 1. Yapımı elektrotlar Pozitif elektrot platin tel çapı 1-2 mm kısa (5 cm) uzunluğu (kornea irtibata geçecektir biri) Construct. Bir döngü içine çapında bir kaç mm o moda. Senin amplifikatör giriş aşamaya ulaşmak için yeterince uzun bir geleneksel kurşun bu döngü bağlayın (Şekil 4). Bir Ag / AgCl de kongre kablosuna bağlı çapı 1-2 mm, pelet kullanılarak (hayvan?…

Representative Results

protokolü, in vivo olarak, kemirgen retina görme fonksiyonu ölçmek için kullanılabilir. a-dalgası, fotoreseptör fonksiyonunun bir ölçüsü, ve b-dalgası, iç retina fonksiyonun bir ölçümü olan, Şekil 1 'de açıklanmış bulunmaktadır. Şekil 2A gösterildiği gibi artan ışık uyaran ile çubuk hakim ERG sinyal artar. a-dalgası 0.4 günlük scot cd.sm -2 ve 2.5 log Scot cd.sm de doyuma kadar a-dalgası artar genlik…

Discussion

Yukarıda tarif edilen koyu adapte flaş ERG yöntemi sıçanlarda retina fonksiyonlarını değerlendirmek için güvenilir bir yöntemdir. A-dalgası ve b-dalgası Hem hafif hasar azaltılmıştır. Uzaktan iskemik önkoşullama a-dalgası ve b dalga ışık hasar kaynaklı azalmalar hafifletilmiş. Retina fonksiyonunun Bu muhafaza uzak iskemik önkoşullama gibi hipoksi, iskemi ve egzersiz 8-10 gibi koruyucu önkoşullama diğer formları andıran, nöro kaynaklı olduğunu göstermektedir. Kayıt kurulumu…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Yazarlar kemirgen izleme, işleme ve deney Bayan Sharon Spana yardımı için müteşekkiriz. Doktora finansman desteği Vizyon Mükemmellik University of Sydney ve Avustralya Araştırma Merkezi tarafından sağlanmıştır.

Materials

PC computer
Powerlab, 4 channel acquistion hardware AD Instruments PL 35044 Acquistion of ERG
Animal Bio Amp AD Instruments FE 136 Amplifier for ERG
Lab chart AD Instruments Signal collection software
Ganzfield Photometric solutions FS-250A Light stimulus
Ganzfield operating system Photometric solutions
Research Radiometer International light technologies ILT-1700 calibrate light series
Lux meter LX-1010B  check red light illumanation
Excel microsoft
Lead wires AD Instruments Connect postive, negative ground electrodes to amplifier
Lead wires -aligator AD Instruments ground ganzfield and acquistion hardware to computer
Platinum wire 95% A&E metals postive electrode
Mouth electrode Ag/AgCl Pellet SDR E205 negative electode
26 gauge needle BD ground electode
Water pump
Water bath
Tubing
Homeothermic blanket system with flexible probe Harvard Appartus 507222F
Atropine 1% w/v Bausch & Lomb topical mydriasis
Proxmethycaine 0.5% w/v Bausch & Lomb topical anaesthetic
Visco tears eye drops Novartis carbomer polymer
Thread retract eye lid
Tweezers
Reusable adhesive Blu tac Dim red headlamp. Affix electrodes
Absorbent bedding
Ketamil – ketamine 100 mg/ml – 50 ml Troy Laboratories Pty Ltd dissociative
Xylium – Xylazine 100 mg/ml – 50 ml Troy Laboratories Pty Ltd muscle relaxant
Scale

References

  1. Arden, G. B., Heckenlively, J. . Principles and practice of clinical electrophysiology of vision. , 139-183 (2006).
  2. Bui, B. V., Fortune, B. Ganglion cell contributions to the rat full-field electroretinogram. Journal of Physiology-London. 555 (1), 153-173 (2004).
  3. Fortune, B., et al. Selective ganglion cell functional loss in rats with experimental glaucoma. Investigative Ophthalmology & Visual Science. 45 (6), 1854-1862 (2004).
  4. Alarcon-Martinez, L., et al. Short and long term axotomy-induced ERG changes in albino and pigmented rats. Molecular Vision. 15 (254-255), 2373-2383 (2009).
  5. Lyubarsky, A. L., et al. Functionally rodless mice: transgenic models for the investigation of cone function in retinal disease and therapy. Vision Research. 42 (4), 401-415 (2002).
  6. Bush, R. A., Sieving, P. A. . A PROXIMAL RETINAL COMPONENT IN THE PRIMATE PHOTOPIC ERG A-WAVE. Investigative Ophthalmology & Visual Science. 35 (2), 635-645 (1994).
  7. Liu, K., et al. Development of the electroretinographic oscillatory potentials in normal and ROP rats. Investigative Ophthalmology & Visual Science. 47 (12), 5447-5452 (2006).
  8. Casson, R. J., Wood, J. P. M., Melena, J., Chidlow, G., Osborne, N. N. The effect of ischemic preconditioning on light-induced photoreceptor injury. Investigative Ophthalmology & Visual Science. 44 (3), 1348-1354 (2003).
  9. Lawson, E. C., et al. Aerobic Exercise Protects Retinal Function and Structure from Light-Induced Retinal Degeneration. Journal of Neuroscience. 34 (7), 2406-2412 (2014).
  10. Grimm, C., et al. HIF-1-induced erythropoietin in the hypoxic retina protects against light-induced retinal degeneration. Nature Medicine. 8 (7), 718-724 (2002).
  11. Weymouth, A. E., Vingrys, A. J. Rodent electroretinography: Methods for extraction and interpretation of rod and cone responses. Progress in Retinal and Eye Research. 27 (1), 1-44 (2008).
  12. Bayer, A. U., Cook, P., Brodie, S. E., Maag, K. P., Mittag, T. Evaluation of different recording parameters to establish a standard for flash electroretinography in rodents. Vision Research. 41 (17), 2173-2185 (2001).
  13. Pugh, E. N., Lamb, T. D. AMPLIFICATION AND KINETICS OF THE ACTIVATION STEPS IN PHOTOTRANSDUCTION. Biochimica Et Biophysica Acta. 1141 (2-3), 111-149 (1993).
  14. Breton, M. E., Schueller, A. W., Lamb, T. D., Pugh, E. N. ANALYSIS OF ERG A-WAVE AMPLIFICATION AND KINETICS IN TERMS OF THE G-PROTEIN CASCADE OF PHOTOTRANSDUCTION. Investigative Ophthalmology & Visual Science. 35 (1), 295-309 (1994).
  15. Mizota, A., Adachi-Usami, E. Effect of body temperature on electroretinogram of mice. Investigative Ophthalmology & Visual Science. 43 (12), 3754-3757 (2002).
  16. Szabo-Salfay, O., et al. The electroretinogram and visual evoked potential of freely moving rats. Brain Research Bulletin. 56 (1), 7-14 (2001).
  17. Charng, J., et al. Conscious Wireless Electroretinogram and Visual Evoked Potentials in Rats. Plos One. 8 (9), (2013).
  18. Galambos, R., Juhasz, G., Kekesi, A. K., Nyitrai, G., Szilagyi, N. NATURAL SLEEP MODIFIES THE RAT ELECTRORETINOGRAM. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 91 (11), 5153-5157 (1994).
  19. Galambos, R., Szabo-Salfay, O., Szatmar, E., Szilagyi, N., Juhasz, G. Sleep modifies retinal ganglion cell responses in the normal rat. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 98 (4), 2083-2088 (2001).
  20. Guarino, I., Loizzo, S., Lopez, L., Fadda, A., Loizzo, A. A chronic implant to record electroretinogram, visual evoked potentials and oscillatory potentials in awake, freely moving rats for pharmacological studies. Neural Plasticity. 11 (3-4), 241-250 (2004).
  21. Huang, J. C., Salt, T. E., Voaden, M. J., Marshall, J. NON-COMPETITIVE NMDA-RECEPTOR ANTAGONISTS AND ANOXIC DEGENERATION OF THE ERG B-WAVE IN-VITRO. Eye (London). 5 (4), 476-480 (1991).
  22. Sasovetz, D. . KETAMINE HYDROCHLORIDE – EFFECTIVE GENERAL ANESTHETIC FOR USE IN ELECTRORETINOGRAPHY. Annals of Ophthalmology. 10 (11), 1510-1514 (1978).
  23. Mojumder, D. K., Wensel, T. G. Topical Mydriatics Affect Light-Evoked Retinal Responses in Anesthetized Mice). Investigative Ophthalmology & Visual Science. 51 (1), 567-576 (2010).
  24. Fraunfel, F. t., Burns, R. P. ACUTE REVERSIBLE LENS OPACITY – CAUSED BY DRUGS, COLD, ANOXIA, ASPHYXIA, STRESS, DEATH AND DEHYDRATION. Experimental Eye Research. 10 (1), 19 (1970).
  25. Calderone, L., Grimes, P., Shalev, M. ACUTE REVERSIBLE CATARACT INDUCED BY XYLAZINE AND BY KETAMINE-XYLAZINE ANESTHESIA IN RATS AND MICE. Experimental Eye Research. 42 (4), 331-337 (1986).
  26. Behn, D., et al. Dark adaptation is faster in pigmented than albino rats. Documenta Ophthalmologica. 106 (2), 153-159 (2003).
  27. Sugawara, T., Sieving, P. A., Bush, R. A. Quantitative relationship of the scotopic and photopic ERG to photoreceptor cell loss in light damaged rats. Experimental Eye Research. 70 (5), 693-705 (2000).
  28. Machida, S., et al. P23H rhodopsin transgenic rat: Correlation of retinal function with histopathology. Investigative Ophthalmology & Visual Science. 41 (10), 3200-3209 (2000).
  29. Brandli, A., Stone, J. Remote Ischemia Influences the Responsiveness of the Retina. Observations in the Rat. Investigative Ophthalmology & Visual Science. 55 (4), 2088-2096 (2014).
  30. Maccarone, R., Di Marco, S., Bisti, S. Saffron supplement maintains morphology and function after exposure to damaging light in mammalian retina. Investigative Ophthalmology & Visual Science. 49 (3), 1254-1261 (2008).
  31. Hood, D. C., Birch, D. G. Assessing abnormal rod photoreceptor activity with the a-wave of the electroretinogram: Applications and methods. Documenta Ophthalmologica. 92 (4), 253-267 (1996).
  32. Robson, J. G., Frishman, L. J. The rod-driven a-wave of the dark-adapted mammalian electroretinogram. Progress in Retinal and Eye Research. 39, 1-22 (2014).
  33. Hood, D. C., Birch, D. G. A COMPUTATIONAL MODEL OF THE AMPLITUDE AND IMPLICIT TIME OF THE B-WAVE OF THE HUMAN ERG. Visual Neuroscience. 8 (2), 107-126 (1992).
  34. Wachtmeister, L. Oscillatory potentials in the retina: what do they reveal. Progress in Retinal and Eye Research. 17 (4), 485-521 (1998).

Play Video

Cite This Article
Brandli, A., Stone, J. Using the Electroretinogram to Assess Function in the Rodent Retina and the Protective Effects of Remote Limb Ischemic Preconditioning. J. Vis. Exp. (100), e52658, doi:10.3791/52658 (2015).

View Video