Summary

Produzione, caratterizzazione e possibilità di utilizzo di un 3D tissutale umano esofageo mucose Modello

Published: May 18, 2015
doi:

Summary

Questo manoscritto descrive la produzione, caratterizzazione e possibilità di utilizzo di un tessuto ingegnerizzato costrutto esofageo 3D preparati da normale fibroblasti esofageo umano primario e cellule epiteliali squamose seminate all'interno di un ponteggio suina de-cellularized. I risultati dimostrano la formazione di un epitelio stratificato maturo simile al normale esofago umano.

Abstract

L'incidenza di adenocarcinoma esofageo e il suo precursore, metaplasia di Barrett, sono in rapido aumento nel mondo occidentale. Inoltre adenocarcinoma esofageo ha in genere una prognosi infausta, con scarso miglioramento dei tassi di sopravvivenza negli ultimi anni. Queste sono condizioni difficili da studiare e vi è stata una mancanza di piattaforme sperimentali adatti per indagare i disturbi della mucosa esofagea.

Un modello della mucosa esofagea umano è stato sviluppato in laboratorio MacNeil che, a differenza dei sistemi di coltura cellulare 2D convenzionali, ricapitola le interazioni cellula-cellula e cellula-matrice presenti in vivo e produce un maturo, epitelio stratificato simile a quello della normale umana esofago. In breve, il modello si usano cellule non trasformate normali primari fibroblasti umani esofagee e epiteliali coltivate all'interno di un ponteggio acellulare esofageo suina di derivazione. Caratterizzazione immunoistochimica di questo modelloda CK4, CK14, Ki67 e involucrina colorazione dimostra adeguata ripresa del istologico della mucosa esofagea umano.

Questo modello fornisce un robusto, modello sperimentale biologicamente rilevanti della mucosa esofagea umana. Può essere facilmente manipolato per indagare su una serie di domande di ricerca, tra cui l'efficacia di agenti farmacologici e l'impatto dell'esposizione a fattori ambientali, come l'alcool, le tossine, ad alta temperatura o componenti refluito gastro-esofageo. Il modello facilita anche periodi prolungati di coltura non ottenibili con coltura cellulare convenzionale 2D, consentendo, tra l'altro, lo studio dell'impatto di esposizione ripetuta di un epitelio maturo per l'agente di interessi per un massimo di 20 giorni. Inoltre, una varietà di linee cellulari, come quelli derivati ​​da tumori esofagei o metaplasia di Barrett, può essere incorporata nel modello per studiare processi come invasione tumorale e responsivene drogass in un ambiente più biologicamente rilevante.

Introduction

La mucosa esofagea comprende una stratificato, epitelio squamoso sopra uno strato di tessuto connettivo, la lamina propria, ed è uno dei primi siti per incontrare stress ambientali ingeriti. L'esposizione a tossine alimentari è implicato nello sviluppo del carcinoma squamoso dell'esofago, mentre reflusso duodenogastro-esofageo è un fattore critico nella patogenesi della Barrett Metaplasia, che è associata ad un aumentato rischio di progressione di adenocarcinoma esofageo. Carcinomi esofagei sono l'8 ° più comune tumore maligno nei maschi del Regno Unito e di adenocarcinoma esofageo è in rapido aumento nel mondo occidentale 1. Inoltre, c'è stata poca miglioramento nella prognosi della malattia, con un tasso di sopravvivenza a 5 anni complessiva di circa il 15%. Di conseguenza, vi è la necessità per le piattaforme sperimentali per studiare l'impatto dell'esposizione a fattori di stress ambientali su questo epitelio esofageo e il loro potenziale coinvolgimento nella svipment di metaplasia o neoplasia.

Sebbene linee cellulari immortalizzate o tumorali permettono ai ricercatori di studiare la risposta delle cellule epiteliali a questi fattori di stress in vitro, rimangono proliferativa e non riescono a differenziarsi in cellule epiteliali mature trovate su gli strati superficiali della mucosa esofagea. Inoltre, linee cellulari che hanno già subito tumorigenesi possono fornire solo informazioni limitate per quanto riguarda le reazioni iniziali di cellule normali all'interno dell'epitelio a fattori ambientali; e questa è la fase in cui il potenziale di intervento terapeutico potrebbe essere più alta. Infine, i sistemi di coltura cellulare convenzionali non riescono a catturare le interazioni potenzialmente importanti tra cellule epiteliali e mesenchimali e tra queste cellule e la matrice circostante che si verificano all'interno dei tessuti in vivo.

Modelli animali forniscono un microambiente più realistico per studiare le risposte del epitheli esofageoum e può incorporare l'induzione artificiale della malattia da reflusso gastro-esofageo 2. Tuttavia può essere più impegnativo per manipolare i fattori di stress ambientali in questi modelli, e non può rappresentare appieno la risposta entro dell'esofago umano.

Altri modelli sperimentali esofagee umani sono stati sviluppati che utilizzano cellule primarie, cellule immortalizzate o linee cellulari tumorali su un collagene, o combinati collagene / Matrigel, impalcatura contenenti fibroblasti 3,4. È meno laborioso per generare questi scaffold rispetto al ponteggio esofageo acellulare descritto in questo manoscritto, e questi modelli organotipiche fornire uno strumento utile, in particolare nello studio di invasione del 5,6, dove l'infiltrazione delle cellule tumorali nel gel di collagene può essere prontamente osservato. Tuttavia questi gel di collagene hanno non nativi proprietà meccaniche e mancano di alcune caratteristiche del tessuto originale, tra cui una membrana basale specifico e l'appropriate topografia della superficie. Ciò può influenzare il comportamento delle cellule con conseguente, ad esempio, più povera adesione tra l'epitelio e scaffold utilizzando un gel di collagene scaffold 7. Di conseguenza è stato sviluppato il acellulare porcine scaffold esofageo, con il vantaggio di essere un ponteggio biologicamente più realistica e quindi più appropriato per l'uso come una piattaforma sperimentale. E 'stato anche dimostrato che è preferibile incorporare cellule primarie nei costrutti esofagee di linee cellulari immortalizzate esofagee epiteliali, come Het-1A, poiché queste cellule formano un epitelio multistrato ma non riescono a stratificare o differenziare 4,7,8 .

Di conseguenza, questo protocollo è stato adattato da un metodo già in uso in laboratorio MacNeil per fare ingegneria tessutale della pelle e della mucosa orale 9,10 e incorpora un porcine scaffold esofageo de-cellularized combinata con cellule primarie umane esofagee epiteliali e fibroblasti. Thiprotocollo s produce un maturo, epitelio stratificato, simile a quello della normale esofago umano come dimostrato da CK4, CK14, Ki67 e involucrin colorazione. Il modello risultante fornisce una piattaforma sperimentale per studiare le risposte ai fattori di stress ambientale, ed è stato utilizzato in modo efficace per studiare i cambiamenti nell'espressione genica nell'epitelio esofageo in risposta a refluito componenti 11.

Protocol

Cellule esofagee umane sono ottenute da pazienti sottoposti a chirurgia gastrica o esofagea. Il consenso informato è ottenuto per il tessuto da utilizzare a scopo di ricerca, e il tessuto utilizzato in modo anonimo sotto le opportune approvazioni etiche (SSREC 165/03, Tessuto umano di ricerca Bank Licenza 12179). 1. Isolamento di cellule umane esofageo epiteliali Lavorando in una cappa coltura tissutale flusso laminare e con tecnica sterile, preparare il terreno di coltura epiteliale mescolando medio…

Representative Results

Questo manoscritto descrive il processo necessario, indicata schematicamente in figura 1, alla cultura modelli 3D dell'epitelio esofageo umana con successo. Per confermare l'idoneità del modello come una piattaforma sperimentale istologico e gli studi di immunoistochimica sono stati intrapresi confrontando i tessuti coltivati ​​con mucosa esofagea squamose umano. Valutazione istologica dell'epitelio prodotto con il metodo descritto mostra un maturo, multistr…

Discussion

Questo manoscritto descrive la produzione e caratterizzazione di un modello mucosa esofagea umana biologicamente rilevante adatto per l'uso come una piattaforma sperimentale per studiare l'impatto dell'esposizione a fattori di stress ambientali sulla dell'epitelio esofageo.

I passi più critici per la produzione di successo di un modello mucosa esofagea umano sono: garantire che la maggior parte delle cellule epiteliali rimangono proliferativa e non hanno già cominciato a di…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Siamo grati al signor Roger Ackroyd, Andrew Wyman e Mr Chris Stoddard, consulente chirurghi a Sheffield Teaching Hospitals NHS Foundation Trust, per il loro aiuto ad acquisire campioni di tessuto esofageo e il loro sostegno del nostro lavoro. Ringraziamo Ashraful Haque per il suo aiuto incorporare linee di cellule tumorali nel modello. Noi riconosciamo con gratitudine il sostegno finanziario per questo studio da sovvenzioni dal Bardhan Research and Education Trust (BRET) e Yorkshire Cancer Research (YCR).

Materials

Trypsin BD Biosciences 215240 Prepare 0.1% w/v solution in PBS and filter sterilise. Warm in 37°C water bath before use
DMEM Labtech LM-D1112 Warm in 37°C water bath before use
Ham's F12 Labtech LM-H1236 Warm in 37°C water bath before use
Foetal Calf Serum Labtech FB-1090
Epidermal Growth Factor R+D Systems 236-EG-200 Prepare 200 µg/ml stock solution in 10 mM acetic acid, 1% FCS
Hydorcortisone Sigma-Aldrich H0396 Prepare stock solution in PBS and filter sterilise before use
Adenine Sigma-Aldrich A2786 Prepare stock solution in PBS and filter sterilise before use
Insulin Sigma-Aldrich I2767 Prepare 10 mg/ml solution in 0.01M HCl, dilute 1:10 in distilled water and filter sterilise before use
Transferrin Sigma-Aldrich T2036 Prepare stock solution in distilled water and filter sterilise before use
Triiodothyronine Sigma-Aldrich T2752 Prepare stock solution in distilled water and filter sterilise before use
Cholera toxin Sigma-Aldrich C8052 Prepare stock solution in water
L-Glutamine Sigma-Aldrich G7513
Penicillin-Streptomycin Sigma-Aldrich P0781
Amphotericin B Gibco 15290-026 Brand name Fungizone
PBS Oxoid BR0014 Dissolve 1 tablet in 100 ml water and autoclave to sterilise
Collagenase A Roche 10103578001
Povidone-iodine solution Ecolab 10830E Brand name Videne
Ethanol Sigma-Aldrich E7023
NaCl Sigma-Aldrich 433209 Prepare 1M solution and autoclave to sterilise before use (121 ˚C for 15 min)
Glycerol Sigma-Aldrich G2025 Autoclave to sterilise before use (121 ˚C for 15 min)
Chelex 100 Sigma-Aldrich C7901
Newborn calf serum Gibco 26010074
Progesterone Sigma-Aldrich P8783 Prepare stock solution in DMEM and filter sterilise before use
Ethanolamine Sigma-Aldrich E9508 Prepare stock solution in DMEM and filter sterilise before use
Hydrocortisone Sigma-Aldrich H0888 Prepare stock solution in DMEM and filter sterilise before use use
O-phosphorylethanolamine Sigma-Aldrich P0503 Prepare stock solution in DMEM and filter sterilise before use
ITS (insulin, transferrin, selenium) Lonza 17-838Z Used for composite media preparation
Trypsin-EDTA Sigma-Aldrich T3924 Warm in 37°C water bath before use
EDTA 0.02% solution Sigma-Aldrich E8008 Warm in 37°C water bath before use
T75 culture flask VWR 734-2313
50 ml centrifuge tube Fisher 11819650
15 ml universal tube SLS SLS7504
180 ml pot VWR 216-2603
Petri dish SLS 150350
6 well plate VWR 734-2323
stainless steel rings Manufactured in house – medical grade stainless steel, internal diameter 10 mm, external diameter 20 mm
steel mesh grids Manufactured in house – sheets have 0.3 cm diameter holes, bent to produce grid 2cm (w) x2 cm (d) x 0.5 cm (h)
ki67 Novocastra KI67-MM1-L-CE Clone MM1 Use at 1:100
CK4 Abcam ab9004 Clone 6B10 Use at 1:200
CK14 Novocastra LL002-L-CE Clone LL002 Use at 1:200
Involucrin Novocastra INV Clone  SY5 Use at 1:100
OE21 Sigma-Aldrich 96062201
OE33 Sigma-Aldrich 96070808
Het-1A ATCC-LGC CRL-2692
Mouse 3T3 fibroblasts ATCC-LGC CRL-1658 previously growth arrested by irradiation (60 Gy)

References

  1. Pera, M., Manterola, C., Vidal, O., Grande, L. Epidemiology of esophageal adenocarcinoma. J. Surg. Oncol. 92 (3), 151-159 (2005).
  2. Manea, G. S., Lupusoru, C., Caruntu, I. D. Experimental study on the effect of bile, and bile and hydrochloric acid mixture on the esophageal mucosa. Rom. J. Morphol. Embryol. 50 (1), 61-66 (2009).
  3. Andl, C. D., et al. Epidermal growth factor receptor mediates increased cell proliferation, migration, and aggregation in esophageal keratinocytes in vitro and in vivo. J. Biol. Chem. 278 (3), 1824-1830 (2003).
  4. Underwood, T. J., et al. A comparison of primary oesophageal squamous epithelial cells with HET-1A in organotypic culture. Biol. Cell. 102 (12), 635-644 (2010).
  5. Nystrom, M. L., et al. Development of a quantitative method to analyse tumour cell invasion in organotypic culture. J. Pathol. 205 (4), 468-475 (2005).
  6. Okawa, T., et al. The functional interplay between EGFR overexpression, hTERT activation, and p53 mutation in esophageal epithelial cells with activation of stromal fibroblasts induces tumor development, invasion, and differentiation. Genes & Development. 21 (21), 2788-2803 (2007).
  7. Green, N., et al. The development and characterization of an organotypic tissue-engineered human esophageal mucosal model. Tissue Eng Part A. 16 (3), 1053-1064 (2010).
  8. Harada, H., et al. Telomerase induces immortalization of human esophageal keratinocytes without p16INK4a inactivation. Mol. Cancer Res. 1 (10), 729-738 (2003).
  9. Bhargava, S., Chapple, C. R., Bullock, A. J., Layton, C., MacNeil, S. Tissue-engineered buccal mucosa for substitution urethroplasty. BJU. Int. 93 (6), 807-811 (2004).
  10. Ralston, D. R., et al. Keratinocytes contract human dermal extracellular matrix and reduce soluble fibronectin production by fibroblasts in a skin composite model. Br. J. Plast. Surg. 50 (6), 408-415 (1997).
  11. Green, N. H., et al. Pulsatile exposure to simulated reflux leads to changes in gene expression in a 3D model of oesophageal mucosa. Int. J. Exp. Pathol. 95 (3), 216-228 (2014).
  12. Wang, C. S., et al. Selective culture of epithelial cells from primary breast carcinomas using irradiated 3T3 cells as feeder layer. Pathol. Res. Pract. 197 (3), 175-181 (2001).
  13. Ricardo, R., Phelan, K. Trypsinizing and subculturing mammalian cells. J. Vis. Exp. (16), e755 (2008).
  14. . Using a Hemacytometer to Count Cells. Basic Methods in Cellular and Molecular Biology. , (2014).
  15. Mahmood, T., Yang, P. C. Western blot: technique, theory, and trouble shooting. N. Am. J. Med. Sci. 4 (9), 429-434 (2012).
  16. Streit, S., Michalski, C. W., Erkan, M., Kleeff, J., Friess, H. Northern blot analysis for detection and quantification of RNA in pancreatic cancer cells and tissues. Nat. Protoc. 4 (1), 37-43 (2009).
  17. Morgan, E., et al. Cytometric bead array: a multiplexed assay platform with applications in various areas of biology. Clin. Immunol. 110 (3), 252-266 (2004).
  18. Xu, M., et al. The abnormal expression of retinoic acid receptor-beta, p 53 and Ki67 protein in normal, premalignant and malignant esophageal tissues. World J. Gastroenterol. 8 (2), 200-202 (2002).
  19. Moll, R., Divo, M., Langbein, L. The human keratins: biology and pathology. Histochem. Cell Biol. 129 (6), 705-733 (2008).
  20. Rice, R. H., Green, H. Presence in human epidermal cells of a soluble protein precursor of the cross-linked envelope: activation of the cross-linking by calcium ions. Cell. 18 (3), 681-694 (1979).
  21. Eves, P., et al. Melanoma invasion in reconstructed human skin is influenced by skin cells – investigation of the role of proteolytic enzymes. Clin. Exp. Metastasis. 20 (8), 685-700 (2003).
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Green, N. H., Corfe, B. M., Bury, J. P., MacNeil, S. Production, Characterization and Potential Uses of a 3D Tissue-engineered Human Esophageal Mucosal Model. J. Vis. Exp. (99), e52693, doi:10.3791/52693 (2015).

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