Summary

Generering av inducerade pluripotenta stamceller från Frozen Buffy Coats använder icke-integrerande Episomalt plasmider

Published: June 05, 2015
doi:

Summary

Inducerade pluripotenta stamceller (iPSCs) utgör en källa till patientspecifika vävnader för kliniska tillämpningar och grundforskning. Här presenterar vi ett detaljerat protokoll för att programmera humana perifera mononukleära blodceller (PBMNCs) som erhållits från frysta gula hinnor till virusfria iPSCs använder icke-integrerande episomala plasmider.

Abstract

Somatiska celler kan omprogrammeras till inducerade pluripotenta stamceller (iPSCs) genom att tvinga uttrycket av fyra transkriptionsfaktorer (okt-4, Sox-2, KLF-4, och c-Myc), typiskt uttryckt av humana embryonala stamceller (hESCs) . På grund av deras likhet med hESCs har iPSCs blivit ett viktigt verktyg för potentiella patientspecifika regenerativ medicin, undvika etiska frågor i samband med hESCs. För att erhålla celler som är lämpliga för klinisk applikation, transgen fria iPSCs behöver genereras för att undvika transgenen reaktive, förändrad genexpression och missriktade differentiering. Dessutom är det nödvändigt med en mycket effektiv och billig omprogrammering metod att härleda tillräckliga iPSCs för terapeutiska ändamål. Med tanke på detta behov, är en effektiv icke-integrerande episomal plasmid strategi att föredra val för iPSC härledning. För närvarande är den vanligaste celltypen som används för omprogrammering syften är fibroblaster, isoleringen av som kräver vävnadsbiopsi, en invasive kirurgisk procedur för patienten. Därför representerar humant perifert blod den mest tillgängliga och minst invasiva vävnad för iPSC generationen.

I denna studie, är en kostnadseffektiv och viral fria protokoll med användning av icke-integrerande episomala plasmider rapporterats för generering av iPSCs från humana perifera mononukleära blodceller (PBMNCs) erhållna från frysta gula hinnor efter helblod centrifugering och utan densitetsgradient separation.

Introduction

År 2006, den grupp av Shinya Yamanaka 1 visade för första gången att somatiska celler från vuxna möss och människor kan omvandlas till en pluripotent tillstånd genom ektopisk uttryck för fyra omprogrammering faktorer (okt-4, Sox-2, KLF-4, och c-Myc), alstra de så kallade inducerade pluripotenta stamceller (iPSCs) 2. Patientspecifika iPSCs liknar nära mänskliga embryonala stamceller (hESCs) i fråga om morfologi, spridning och förmåga att differentiera till de typer tre könsceller (mesoderm, endoderm och ektoderm), medan saknar etiska problem som är förknippade med användningen av hESCs och förbikoppling möjlig immunavstötning 3. Således iPSCs visas som en av de viktigaste källorna till patientspecifika celler för grundforskning, läkemedelsscreening, sjukdom modellering, utvärdering av toxicitet, och regenerativ medicin ändamål 4.

Flera tillvägagångssätt har använts för iPSC generationen: virala integrerande vektorer(Retrovirus 5, lentivirus 6), viral icke-integrerande vektorer (adenovirus 7), Sendai-virus 8, BAC transposoner 9, episomala vektorer 10, proteiner 11 eller RNA leverans 12. Även om användningen av virusmedierad metoder kan leda till hög effektivitet omprogrammering, virala vektorer integreras i genomet hos värdceller och därmed potential slumpmässig insertionsmutationer, inte kan uteslutas permanent förändring av genuttryck, och reaktivering av tystade transgener under differentiering 13.

För att göra iPSCs säkrare för regenerativ medicin, har ansträngningar gjorts för att härleda iPSCs utan integration av exogent DNA i cellulära genomer. Även om punktskattepliktiga virala vektorer och transposoner har utvecklats, är det fortfarande oklart om korta vektorsekvenser, som oundvikligen kvar i de omvandlade cellerna efter excision, och transposasgenen uttryck, kan ge upphov till förändring i cellular fungera 13. Trots sin höga omprogrammering effektivitet representerar Sendaivirus en dyr strategi och nå igenom licensproblem med det företag som utvecklat systemet har potential att begränsa dess tillämpning i translationella studier. Dessutom, behovet av direkt införande av proteiner och RNA kräver multipel avgivning av omprogrammering molekyler med de inneboende tekniska begränsningar Detta inför, och den totala effektiviteten omprogrammering är mycket låg 14. Notera kostnadseffektiva virusfria och icke-integrerande metoder baserade på användning av episomala plasmider har framgångsrikt rapporterats för omprogrammering av hudfibroblaster 15. Närmare bestämt i detta arbete beslutade vi att använda kommersiellt tillgängliga integrationsfria episomala plasmider, som tidigare rapporterats 10,15.

Hittills hudfibroblaster representerar de mest populära donator celltyp 5. Men andra cellkällor varit successfully omprogrammeras till iPSCs inklusive keratinocyter 16, benmärgs mesenkymala stamceller 17, fett stromaceller 18, folliklar håret 19 och tandmassaceller 20. Isoleringen av dessa celler kräver kirurgiska ingrepp, och flera veckor behövs för in vitro-cellexpansion i syfte att upprätta en primär cellkultur.

Mot bakgrund av detta är valet av start celltyp kritisk och det är lika viktigt att kunna producera iPSCs från lättillgängliga och mindre invasiva vävnader såsom blod. Båda navelsträngsblod mononukleära celler (CBMNCs) 21,22 och perifera mononukleära blodceller (PBMNCs) 14,22-24 representerar lämpliga källor av celler för härledning av iPSCs.

Även om effektiviteten hos vuxna PBMNC omprogrammering är 20-50 gånger lägre än den för CBMNCs 22, de förblir det bekväm celltyp för provtagning ändamål. IFaktum är PBMNC provtagning fördelen av att vara minimalt invasiva, och dessutom dessa celler inte kräver omfattande expansion in vitro innan omprogrammering experiment. Hittills har olika protokoll rapporterat att PBMNCs efter densitetsgradient separation kan frysas och tinas dagar till flera månader efter frysning och expanderades för några dagar innan omprogrammering i iPSCs 22,23. Icke desto mindre, så långt vi är medvetna inga rapporter har beskrivit omprogrammering av PBMNCs från frysta gula hinnor. Viktigt frysta gula hinnor samlats utan densitetsgradient separation representerar de vanligaste blodprover lagras i storskaliga biobanker från befolkningsstudier, vilket motsvarar en lättillgänglig pool av material för iPSC produktion som undviker ytterligare provtagning.

Häri rapporterar vi för första gången genereringen av virusfria iPSCs från humana frysta buffy coats, baserad på en tidigare beskriven protokoll 22. IDessutom gjordes iPSCs genereras från frysta PBMNCs erhållna efter densitetsgradient separation, såsom en styrprotokoll för de icke-densitetsgradient renade PBMNC resultat.

Protocol

Perifera mononukleära blodceller (PBMNCs) isolerades från humana perifera blodprover från friska donatorer efter undertecknade informerat samtycke och godkännande av etisk kommitté i provinsen Sydtyrolen. Experiment utfördes i enlighet med de principer som uttrycks i Helsingforsdeklarationen. Alla data samlades in och analyserades anonymt. 1. Isolering av perifera mononukleära blodceller (PBMNCs) PBMNCs erhållen från buffy coats efter helblod centrifugering, utan densitet…

Representative Results

I denna studie en enkel och effektiv protokoll för generering av virusfria iPSCs genom omprogrammering av PBMNCs isolerade från frysta gula hinnor efter helblod centrifugering och jämförelse med omprogrammering av PBMNCs erhållna efter densitetsgradient separation rapporterats. Figur 1A visar en schematisk representation av den detaljerade protokoll. Efter upptining, de isolerade PBMNCs, som visar en typisk rund form, expanderas i specifik blododlingsmedium för 14 dagar (Figur 1B)…

Discussion

Förr i tiden, det enda sättet att få mänskliga pluripotenta stamceller som bär en viss genetisk mutation var att rekrytera föräldrar som genomgår preimplantatorisk genetisk diagnostik och skapa embryonala stamceller från sina kasserade blastocyster 31,32. Med hjälp av en omprogrammering tillvägagångssätt, kan forskarna nu generera iPSCs från patienter som bär nästan alla genotyp. Möjligheten att starta från en patientspecifik cellinjen och en lättillgänglig källa är mycket viktigt efters…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

The study was supported by the Ministry of Health and Department of Educational Assistance, University and Research of the Autonomous Province of Bolzano and the South Tyrolean Sparkasse Foundation.

Materials

Sodium Citrate buffered Venosafe Plastic Tube Terumo VF-054SBCS07
Ammodium chloride Sigma-Aldrich A9434
Potassium bicarbonate Sigma-Aldrich 60339
EDTA disodium powder Sigma-Aldrich E5134 0.5 M solution
Ficoll-Paque Premium  GE Healthcare Life Sciences 17-5442-02 Polysucrose solution for density gradient centrifugation
Iscove's modified Dulbecco's medium (IMDM)  Gibco 21056-023 No phenol red
Ham's F-12 Mediatech 10-080-CV
Insulin-Transferrin-Selenium-Ethanolamine (ITS -X) Gibco 51500-056  1X (Stock: 100X)
Chemically Defined Lipid Concentrate Gibco 11905031 1X (Stock: 100X)
Bovine Serum Albumin (BSA) Sigma-Aldrich A9418
L-Ascorbic acid 2-phosphate sesquimagnesium salt hydrate Sigma-Aldrich A8960
1-Thioglycerol Sigma-Aldrich M6145 Final Concentration at 200 µM
Recombinant Human Stem Cell Factor (SCF) PeproTech 300-07 100 ng/ml (Stock:100 µg/ml) 
Recombinant Human Interleukin-3 (IL-3) PeproTech 200-03 10 ng/ml (Stock: 10 µg/ml)
Recombinant Human Insulin-like Growth Factor (IGF-1) PeproTech 100-11 40 ng/ml (Stock: 40 µg/ml)
Recombinant Human Erythropoietin (EPO) R&D Systems  287-TC-500 2 U/ml (Stock: 50 U/ml)
Dexamethasone  Sigma-Aldrich D2915 1 μM (Stock: 1 mM)
Human Holo-Transferrin R&D Systems  2914-HT 100 μg/ml (Stock: 20 mg/ml)
Amniomax II Gibco 11269016 Medium for cytogenetic analysis
mTeSR1 StemCell Technologies 5850 Medium for iPSC feeder-free culture
Knockout DMEM Gibco 10829-018
Knockout Serum Replacement Gibco 10828-028
Penicillin-Streptomycin (10,000 U/mL) Gibco 15140-122
L-Glutamine (200 mM) Gibco 25030-024
MEM Non-Essential Amino Acids Solution (100X) Gibco 11140-050
2-Mercaptoethanol  Gibco 31350-010 0.1 mM (Stock: 50 mM)
Sodium Butyrate Sigma-Aldrich B5887 0.25 mM (Stock: 0.5 M)
Recombinant Human FGF basic, 145 aa  R&D Systems  4114-TC 10 ng/ml (Stock: 10 µg/ml)
Y-27632 dihydrochloride Sigma-Aldrich Y0503  10 µM (Stock: 10 mM)
Fetal Defined Bovine Serum Hyclone SH 30070.03
EmbryoMax 0.1% Gelatin Solution Merck-Millipore ES-006-B
Matrigel Basement Membrane Matrix Growth Factor Reduced BD Biosciences 354230
Collagenase, Type IV Gibco 17104-019 1 mg/ml (Stock: 10 mg/ml)
Accutase PAA Laboratories GmbH L11-007 Cell detachment solution
Mouse Embryonic Fibroblast (CF1) Global Stem GSC-6201G 1*106 cells/6 well plate
Plasmid pCXLE-hOCT3/4-shp53-F Addgene  27077 1 µg (Stock: 1 µg/µl)
Plasmid pCXLE-hSK Addgene  27078 1 µg (Stock: 1 µg/µl)
Plasmid pCXLE-hUL Addgene  27080 1 µg (Stock: 1 µg/µl)
Plasmid pCXLE-EGFP Addgene  27082 1 µg (Stock: 1 µg/µl)
Alkaline Phosphatase Staining Kit Stemgent 00-0009
Anti-Stage-Specific Embryonic Antigen-4 (SSEA-4) Antibody Merck-Millipore MAB4304 1/250
Anti-TRA-1-60 Antibody Merck-Millipore MAB4360 1/250
Anti-TRA-1-81 Antibody Merck-Millipore MAB4381 1/250
Anti-Oct-3/4 Antibody Santa Cruz Biotechnology sc-9081 1/500
Anti-Nanog Antibody Santa Cruz Biotechnology sc-33759 1/500
Anti-Troponin I Antibody Santa Cruz Biotechnology sc-15368 1/500
Anti-α-Actinin (Sarcomeric) Antibody Sigma-Aldrich A7732 1/250
Neuronal Class III ß-Tubulin (TUJ1) Antibody Covance Research Products Inc  MMS-435P-100 1/500
Anti-Tyrosine Hydroxylase (TH) Antibody Calbiochem 657012 1/200
Alexa Fluor 488 Goat Anti-Mouse  Molecular Probes A-11029 1/1000
Alexa Fluor 555 Goat Anti-Rabbit Molecular Probes A-21429 1/1000
Ultra-Low Attachment Cell Culture 6-well plate Corning 3471
Trizol Reagent Ambion 15596-018  reagent for RNA extraction
SuperScript VILO cDNA Synthesis Kit Invitrogen 11754050 Reverse transcriptase kit
iTaq Universal SYBR Green Supermix Bio-Rad 172-5124
CFX96 Real-Time PCR Detection System Bio-Rad 185-5195
Experion Automated Electrophoresis System Bio-Rad 700-7000 Instrument to check RNA integrity
Experion RNA Highsense Analysis kit Bio-Rad 7007105 Reagent kit to check RNA integrity
Dissecting microscope (SteREO Discovery V12 ) Zeiss 495007
NeonTransfection System 100 µL Kit Invitrogen MPK10025 Reagent kit for electroporation
Neon Transfection System Invitrogen MPK5000 Instrument used for electroporation
NanoDrop UV/Vis Spectrophotometer Thermo Scientific ND-2000 Instrument for DNA/RNA quantification
EndoFree Plasmid Maxi Kit Qiagen 12362 Plasmid purification kit

References

  1. Takahashi, K., Yamanaka, S. Induction of pluripotent stem cells from mouse embryonic and adult fibroblast cultures by defined factors. Cell. 126 (4), 663-676 (2006).
  2. Takahashi, K., Okita, K., Nakagawa, M., Yamanaka, S. Induction of pluripotent stem cells from fibroblast cultures. Nat. Protoc. 2 (12), 3081-3089 (2007).
  3. Drews, K., Jozefczuk, J., Prigione, A., Adjaye, J. Human induced pluripotent stem cells–from mechanisms to clinical applications. J. Mol. Med. (Berl). 90 (7), 735-745 (2012).
  4. Bayart, E., Cohen-Haguenauer, O. Technological overview of iPS induction from human adult somatic cells). Curr. Gene Ther. 13 (2), 73-92 (2013).
  5. Takahashi, K., et al. Induction of pluripotent stem cells from adult human fibroblasts by defined factors. Cell. 131 (5), 861-872 (2007).
  6. Sommer, A. G., et al. Generation of human induced pluripotent stem cells from peripheral blood using the STEMCCA lentiviral vector. J. Vis. Exp. (68), e4327 (2012).
  7. Zhou, W., Freed, C. R. Adenoviral gene delivery can reprogram human fibroblasts to induced pluripotent stem cells. Stem Cells. 27 (11), 2667-2674 (2009).
  8. Lieu, P. T., Fontes, A., Vemuri, M. C., Macarthur, C. C. Generation of induced pluripotent stem cells with CytoTune, a non-integrating Sendai virus. Methods Mol. Biol. 997, 45-56 (2013).
  9. Woltjen, K., et al. piggyBac transposition reprograms fibroblasts to induced pluripotent stem cells. Nature. 458 (7239), 766-770 (2009).
  10. Okita, K., et al. A more efficient method to generate integration-free human iPS cells. Nat. Methods. 8 (5), 409-412 (2011).
  11. Kim, D., et al. Generation of human induced pluripotent stem cells by direct delivery of reprogramming proteins. Cell. Stem Cell. 4 (6), 472-476 (2009).
  12. Warren, L., Ni, Y., Wang, J., Guo, X. Feeder-free derivation of human induced pluripotent stem cells with messenger RNA. Sci. Rep. 2, 657 (2012).
  13. Stadtfeld, M., Hochedlinger, K. Induced pluripotency: history, mechanisms, and applications. Genes Dev. 24 (20), 2239-2263 (2010).
  14. Chou, B. K., et al. Efficient human iPS cell derivation by a non-integrating plasmid from blood cells with unique epigenetic and gene expression signatures. Cell Res. 21 (3), 518-529 (2011).
  15. Kim, C., et al. Studying arrhythmogenic right ventricular dysplasia with patient-specific iPSCs. Nature. 494 (7435), 105-110 (2013).
  16. Aasen, T., et al. Efficient and rapid generation of induced pluripotent stem cells from human keratinocytes. Nat. Biotechnol. 26 (11), 1276-1284 (2008).
  17. Streckfuss-Bomeke, K., et al. Comparative study of human-induced pluripotent stem cells derived from bone marrow cells, hair keratinocytes, and skin fibroblasts. Eur. Heart J. 34 (33), 2618-2629 (2013).
  18. Miyoshi, N., et al. Reprogramming of mouse and human cells to pluripotency using mature microRNAs. Cell. Stem Cell. 8 (6), 633-638 (2011).
  19. Wang, Y., et al. Induced pluripotent stem cells from human hair follicle mesenchymal stem cells. Stem Cell. Rev. 9 (4), 451-460 (2013).
  20. Beltrao-Braga, P. C., et al. Feeder-free derivation of induced pluripotent stem cells from human immature dental pulp stem cells. Cell Transplant. 20 (11-12), 1707-1719 (2011).
  21. Haase, A., et al. Generation of induced pluripotent stem cells from human cord blood. Cell. Stem Cell. 5 (4), 434-441 (2009).
  22. Dowey, S. N., Huang, X., Chou, B. K., Ye, Z., Cheng, L. Generation of integration-free human induced pluripotent stem cells from postnatal blood mononuclear cells by plasmid vector expression. Nat. Protoc. 7 (11), 2013-2021 (2012).
  23. Staerk, J., et al. Reprogramming of human peripheral blood cells to induced pluripotent stem cells. Cell. Stem Cell. 7 (1), 20-24 (2010).
  24. Geti, I., et al. A practical and efficient cellular substrate for the generation of induced pluripotent stem cells from adults: blood-derived endothelial progenitor cells. Stem Cells Transl. Med. 1 (12), 855-865 (2012).
  25. Strober, W. Trypan blue exclusion test of cell viability. Curr Protoc Immunol. , Appendix 3-Appendix 3B (2001).
  26. Hasegawa, K., et al. Comparison of reprogramming efficiency between transduction of reprogramming factors, cell-cell fusion, and cytoplast fusion. Stem Cells. 28 (8), 1338-1348 (2010).
  27. Desjardins, P., Conklin, D. NanoDrop microvolume quantitation of nucleic acids. J Vis Exp. (45), 2565 (2010).
  28. Fleige, S., Pfaffl, M. W. RNA integrity and the effect on the real-time qRT-PCR performance. Mol Aspects Med. 27 (2-3), 126-129 (2006).
  29. Meraviglia, V., et al. Human chorionic villus mesenchymal stromal cells reveal strong endothelial conversion properties. Differentiation. 83 (5), 260-270 (2012).
  30. Caspersson, T., Zech, L., Johansson, C. Analysis of human metaphase chromosome set by aid of DNA-binding fluorescent agents. Exp Cell Res. 253 (2), 302-304 (1999).
  31. Alikani, M., Munne, S. Nonviable human pre-implantation embryos as a source of stem cells for research and potential therapy. Stem Cell. Rev. 1 (4), 337-343 (2005).
  32. Tropel, P., et al. High-efficiency derivation of human embryonic stem cell lines following pre-implantation genetic diagnosis. In Vitro Cell. Dev. Biol. Anim. 46 (3-4), 376-385 (2010).
  33. Hanna, J., et al. Direct cell reprogramming is a stochastic process amenable to acceleration. Nature. 462 (72-73), 595-601 (2009).
  34. Li, H., et al. The Ink4/Arf locus is a barrier for iPS cell reprogramming. Nature. 460 (7259), 1136-1139 (2009).
  35. Kim, K., et al. Epigenetic memory in induced pluripotent stem cells. Nature. 467 (7313), 285-290 (2010).
  36. Lindner, S. E., Sugden, B. The plasmid replicon of Epstein-Barr virus: mechanistic insights into efficient, licensed, extrachromosomal replication in human cells. Plasmid. 58 (1), 1-12 (2007).
check_url/kr/52885?article_type=t

Play Video

Cite This Article
Meraviglia, V., Zanon, A., Lavdas, A. A., Schwienbacher, C., Silipigni, R., Di Segni, M., Chen, H. V., Pramstaller, P. P., Hicks, A. A., Rossini, A. Generation of Induced Pluripotent Stem Cells from Frozen Buffy Coats using Non-integrating Episomal Plasmids. J. Vis. Exp. (100), e52885, doi:10.3791/52885 (2015).

View Video