Inducerade pluripotenta stamceller (iPSCs) utgör en källa till patientspecifika vävnader för kliniska tillämpningar och grundforskning. Här presenterar vi ett detaljerat protokoll för att programmera humana perifera mononukleära blodceller (PBMNCs) som erhållits från frysta gula hinnor till virusfria iPSCs använder icke-integrerande episomala plasmider.
Somatiska celler kan omprogrammeras till inducerade pluripotenta stamceller (iPSCs) genom att tvinga uttrycket av fyra transkriptionsfaktorer (okt-4, Sox-2, KLF-4, och c-Myc), typiskt uttryckt av humana embryonala stamceller (hESCs) . På grund av deras likhet med hESCs har iPSCs blivit ett viktigt verktyg för potentiella patientspecifika regenerativ medicin, undvika etiska frågor i samband med hESCs. För att erhålla celler som är lämpliga för klinisk applikation, transgen fria iPSCs behöver genereras för att undvika transgenen reaktive, förändrad genexpression och missriktade differentiering. Dessutom är det nödvändigt med en mycket effektiv och billig omprogrammering metod att härleda tillräckliga iPSCs för terapeutiska ändamål. Med tanke på detta behov, är en effektiv icke-integrerande episomal plasmid strategi att föredra val för iPSC härledning. För närvarande är den vanligaste celltypen som används för omprogrammering syften är fibroblaster, isoleringen av som kräver vävnadsbiopsi, en invasive kirurgisk procedur för patienten. Därför representerar humant perifert blod den mest tillgängliga och minst invasiva vävnad för iPSC generationen.
I denna studie, är en kostnadseffektiv och viral fria protokoll med användning av icke-integrerande episomala plasmider rapporterats för generering av iPSCs från humana perifera mononukleära blodceller (PBMNCs) erhållna från frysta gula hinnor efter helblod centrifugering och utan densitetsgradient separation.
År 2006, den grupp av Shinya Yamanaka 1 visade för första gången att somatiska celler från vuxna möss och människor kan omvandlas till en pluripotent tillstånd genom ektopisk uttryck för fyra omprogrammering faktorer (okt-4, Sox-2, KLF-4, och c-Myc), alstra de så kallade inducerade pluripotenta stamceller (iPSCs) 2. Patientspecifika iPSCs liknar nära mänskliga embryonala stamceller (hESCs) i fråga om morfologi, spridning och förmåga att differentiera till de typer tre könsceller (mesoderm, endoderm och ektoderm), medan saknar etiska problem som är förknippade med användningen av hESCs och förbikoppling möjlig immunavstötning 3. Således iPSCs visas som en av de viktigaste källorna till patientspecifika celler för grundforskning, läkemedelsscreening, sjukdom modellering, utvärdering av toxicitet, och regenerativ medicin ändamål 4.
Flera tillvägagångssätt har använts för iPSC generationen: virala integrerande vektorer(Retrovirus 5, lentivirus 6), viral icke-integrerande vektorer (adenovirus 7), Sendai-virus 8, BAC transposoner 9, episomala vektorer 10, proteiner 11 eller RNA leverans 12. Även om användningen av virusmedierad metoder kan leda till hög effektivitet omprogrammering, virala vektorer integreras i genomet hos värdceller och därmed potential slumpmässig insertionsmutationer, inte kan uteslutas permanent förändring av genuttryck, och reaktivering av tystade transgener under differentiering 13.
För att göra iPSCs säkrare för regenerativ medicin, har ansträngningar gjorts för att härleda iPSCs utan integration av exogent DNA i cellulära genomer. Även om punktskattepliktiga virala vektorer och transposoner har utvecklats, är det fortfarande oklart om korta vektorsekvenser, som oundvikligen kvar i de omvandlade cellerna efter excision, och transposasgenen uttryck, kan ge upphov till förändring i cellular fungera 13. Trots sin höga omprogrammering effektivitet representerar Sendaivirus en dyr strategi och nå igenom licensproblem med det företag som utvecklat systemet har potential att begränsa dess tillämpning i translationella studier. Dessutom, behovet av direkt införande av proteiner och RNA kräver multipel avgivning av omprogrammering molekyler med de inneboende tekniska begränsningar Detta inför, och den totala effektiviteten omprogrammering är mycket låg 14. Notera kostnadseffektiva virusfria och icke-integrerande metoder baserade på användning av episomala plasmider har framgångsrikt rapporterats för omprogrammering av hudfibroblaster 15. Närmare bestämt i detta arbete beslutade vi att använda kommersiellt tillgängliga integrationsfria episomala plasmider, som tidigare rapporterats 10,15.
Hittills hudfibroblaster representerar de mest populära donator celltyp 5. Men andra cellkällor varit successfully omprogrammeras till iPSCs inklusive keratinocyter 16, benmärgs mesenkymala stamceller 17, fett stromaceller 18, folliklar håret 19 och tandmassaceller 20. Isoleringen av dessa celler kräver kirurgiska ingrepp, och flera veckor behövs för in vitro-cellexpansion i syfte att upprätta en primär cellkultur.
Mot bakgrund av detta är valet av start celltyp kritisk och det är lika viktigt att kunna producera iPSCs från lättillgängliga och mindre invasiva vävnader såsom blod. Båda navelsträngsblod mononukleära celler (CBMNCs) 21,22 och perifera mononukleära blodceller (PBMNCs) 14,22-24 representerar lämpliga källor av celler för härledning av iPSCs.
Även om effektiviteten hos vuxna PBMNC omprogrammering är 20-50 gånger lägre än den för CBMNCs 22, de förblir det bekväm celltyp för provtagning ändamål. IFaktum är PBMNC provtagning fördelen av att vara minimalt invasiva, och dessutom dessa celler inte kräver omfattande expansion in vitro innan omprogrammering experiment. Hittills har olika protokoll rapporterat att PBMNCs efter densitetsgradient separation kan frysas och tinas dagar till flera månader efter frysning och expanderades för några dagar innan omprogrammering i iPSCs 22,23. Icke desto mindre, så långt vi är medvetna inga rapporter har beskrivit omprogrammering av PBMNCs från frysta gula hinnor. Viktigt frysta gula hinnor samlats utan densitetsgradient separation representerar de vanligaste blodprover lagras i storskaliga biobanker från befolkningsstudier, vilket motsvarar en lättillgänglig pool av material för iPSC produktion som undviker ytterligare provtagning.
Häri rapporterar vi för första gången genereringen av virusfria iPSCs från humana frysta buffy coats, baserad på en tidigare beskriven protokoll 22. IDessutom gjordes iPSCs genereras från frysta PBMNCs erhållna efter densitetsgradient separation, såsom en styrprotokoll för de icke-densitetsgradient renade PBMNC resultat.
Förr i tiden, det enda sättet att få mänskliga pluripotenta stamceller som bär en viss genetisk mutation var att rekrytera föräldrar som genomgår preimplantatorisk genetisk diagnostik och skapa embryonala stamceller från sina kasserade blastocyster 31,32. Med hjälp av en omprogrammering tillvägagångssätt, kan forskarna nu generera iPSCs från patienter som bär nästan alla genotyp. Möjligheten att starta från en patientspecifik cellinjen och en lättillgänglig källa är mycket viktigt efters…
The authors have nothing to disclose.
The study was supported by the Ministry of Health and Department of Educational Assistance, University and Research of the Autonomous Province of Bolzano and the South Tyrolean Sparkasse Foundation.
Sodium Citrate buffered Venosafe Plastic Tube | Terumo | VF-054SBCS07 | |
Ammodium chloride | Sigma-Aldrich | A9434 | |
Potassium bicarbonate | Sigma-Aldrich | 60339 | |
EDTA disodium powder | Sigma-Aldrich | E5134 | 0.5 M solution |
Ficoll-Paque Premium | GE Healthcare Life Sciences | 17-5442-02 | Polysucrose solution for density gradient centrifugation |
Iscove's modified Dulbecco's medium (IMDM) | Gibco | 21056-023 | No phenol red |
Ham's F-12 | Mediatech | 10-080-CV | |
Insulin-Transferrin-Selenium-Ethanolamine (ITS -X) | Gibco | 51500-056 | 1X (Stock: 100X) |
Chemically Defined Lipid Concentrate | Gibco | 11905031 | 1X (Stock: 100X) |
Bovine Serum Albumin (BSA) | Sigma-Aldrich | A9418 | |
L-Ascorbic acid 2-phosphate sesquimagnesium salt hydrate | Sigma-Aldrich | A8960 | |
1-Thioglycerol | Sigma-Aldrich | M6145 | Final Concentration at 200 µM |
Recombinant Human Stem Cell Factor (SCF) | PeproTech | 300-07 | 100 ng/ml (Stock:100 µg/ml) |
Recombinant Human Interleukin-3 (IL-3) | PeproTech | 200-03 | 10 ng/ml (Stock: 10 µg/ml) |
Recombinant Human Insulin-like Growth Factor (IGF-1) | PeproTech | 100-11 | 40 ng/ml (Stock: 40 µg/ml) |
Recombinant Human Erythropoietin (EPO) | R&D Systems | 287-TC-500 | 2 U/ml (Stock: 50 U/ml) |
Dexamethasone | Sigma-Aldrich | D2915 | 1 μM (Stock: 1 mM) |
Human Holo-Transferrin | R&D Systems | 2914-HT | 100 μg/ml (Stock: 20 mg/ml) |
Amniomax II | Gibco | 11269016 | Medium for cytogenetic analysis |
mTeSR1 | StemCell Technologies | 5850 | Medium for iPSC feeder-free culture |
Knockout DMEM | Gibco | 10829-018 | |
Knockout Serum Replacement | Gibco | 10828-028 | |
Penicillin-Streptomycin (10,000 U/mL) | Gibco | 15140-122 | |
L-Glutamine (200 mM) | Gibco | 25030-024 | |
MEM Non-Essential Amino Acids Solution (100X) | Gibco | 11140-050 | |
2-Mercaptoethanol | Gibco | 31350-010 | 0.1 mM (Stock: 50 mM) |
Sodium Butyrate | Sigma-Aldrich | B5887 | 0.25 mM (Stock: 0.5 M) |
Recombinant Human FGF basic, 145 aa | R&D Systems | 4114-TC | 10 ng/ml (Stock: 10 µg/ml) |
Y-27632 dihydrochloride | Sigma-Aldrich | Y0503 | 10 µM (Stock: 10 mM) |
Fetal Defined Bovine Serum | Hyclone | SH 30070.03 | |
EmbryoMax 0.1% Gelatin Solution | Merck-Millipore | ES-006-B | |
Matrigel Basement Membrane Matrix Growth Factor Reduced | BD Biosciences | 354230 | |
Collagenase, Type IV | Gibco | 17104-019 | 1 mg/ml (Stock: 10 mg/ml) |
Accutase | PAA Laboratories GmbH | L11-007 | Cell detachment solution |
Mouse Embryonic Fibroblast (CF1) | Global Stem | GSC-6201G | 1*106 cells/6 well plate |
Plasmid pCXLE-hOCT3/4-shp53-F | Addgene | 27077 | 1 µg (Stock: 1 µg/µl) |
Plasmid pCXLE-hSK | Addgene | 27078 | 1 µg (Stock: 1 µg/µl) |
Plasmid pCXLE-hUL | Addgene | 27080 | 1 µg (Stock: 1 µg/µl) |
Plasmid pCXLE-EGFP | Addgene | 27082 | 1 µg (Stock: 1 µg/µl) |
Alkaline Phosphatase Staining Kit | Stemgent | 00-0009 | |
Anti-Stage-Specific Embryonic Antigen-4 (SSEA-4) Antibody | Merck-Millipore | MAB4304 | 1/250 |
Anti-TRA-1-60 Antibody | Merck-Millipore | MAB4360 | 1/250 |
Anti-TRA-1-81 Antibody | Merck-Millipore | MAB4381 | 1/250 |
Anti-Oct-3/4 Antibody | Santa Cruz Biotechnology | sc-9081 | 1/500 |
Anti-Nanog Antibody | Santa Cruz Biotechnology | sc-33759 | 1/500 |
Anti-Troponin I Antibody | Santa Cruz Biotechnology | sc-15368 | 1/500 |
Anti-α-Actinin (Sarcomeric) Antibody | Sigma-Aldrich | A7732 | 1/250 |
Neuronal Class III ß-Tubulin (TUJ1) Antibody | Covance Research Products Inc | MMS-435P-100 | 1/500 |
Anti-Tyrosine Hydroxylase (TH) Antibody | Calbiochem | 657012 | 1/200 |
Alexa Fluor 488 Goat Anti-Mouse | Molecular Probes | A-11029 | 1/1000 |
Alexa Fluor 555 Goat Anti-Rabbit | Molecular Probes | A-21429 | 1/1000 |
Ultra-Low Attachment Cell Culture 6-well plate | Corning | 3471 | |
Trizol Reagent | Ambion | 15596-018 | reagent for RNA extraction |
SuperScript VILO cDNA Synthesis Kit | Invitrogen | 11754050 | Reverse transcriptase kit |
iTaq Universal SYBR Green Supermix | Bio-Rad | 172-5124 | |
CFX96 Real-Time PCR Detection System | Bio-Rad | 185-5195 | |
Experion Automated Electrophoresis System | Bio-Rad | 700-7000 | Instrument to check RNA integrity |
Experion RNA Highsense Analysis kit | Bio-Rad | 7007105 | Reagent kit to check RNA integrity |
Dissecting microscope (SteREO Discovery V12 ) | Zeiss | 495007 | |
NeonTransfection System 100 µL Kit | Invitrogen | MPK10025 | Reagent kit for electroporation |
Neon Transfection System | Invitrogen | MPK5000 | Instrument used for electroporation |
NanoDrop UV/Vis Spectrophotometer | Thermo Scientific | ND-2000 | Instrument for DNA/RNA quantification |
EndoFree Plasmid Maxi Kit | Qiagen | 12362 | Plasmid purification kit |