Summary

Geminiaturiseerde Glycan Microarray Assay voor het beoordelen van Avidity en specificiteit van influenza A-virus hemagglutinine

Published: May 29, 2016
doi:

Summary

Using a printed glycan microarray strategy, a conventional 96-well plate assay was miniaturized for analysis of influenza A virus hemagglutinin avidity and specificity for sialic acid containing receptors.

Abstract

Influenza A virus (IAV) hemagglutinine herkennen siaalzuren op het celoppervlak als functionele receptoren invoer in cellen te krijgen. Wilde watervogels zijn de natuurlijke reservoir voor IAV, maar IAV kan de soort barrière voor pluimvee, varkens, paarden en mensen te steken. Aviaire virussen herkennen siaalzuur door een α2-3 koppeling (aviaire-type receptoren) om een ​​voorlaatste galactose bevestigd terwijl menselijke virussen bij voorkeur siaalzuur met een α2-6 koppeling (human-type-receptoren) te herkennen. Om te controleren of aviaire virussen zich aanpassen aan de menselijke soort receptoren, kan op verschillende manieren worden gebruikt. Glycan microarrays met diverse bibliotheken van synthetische sialosides worden steeds meer gebruikt om receptorspecificiteit te evalueren. Echter is deze techniek niet gebruikt voor het meten aviditeiten. Meting van de aviditeit wordt gewoonlijk bereikt door het evalueren van de binding van serieel verdunde virus hemagglutinine of glycanen geadsorbeerd conventionele polypropyleen 96-well platen. In deze assay glycanen met α2-3 of α2-6 siaalzuren gekoppeld aan biotine en streptavidine geadsorbeerd aan platen of gekoppeld zijn met polyacrylamide (PAA) die direct adsorberen aan de kunststof. We hebben aanzienlijk verkleind deze test door direct printen-PAA verbonden sialosides en hun niet-PAA gebonden tegenhangers micro-putjes objectglaasjes. Deze set-up, met 48 arrays op een enkele dia, maakt gelijktijdige analyses van 6 glycan bindende eiwitten op 8 verdunningen, ondervragen 6 verschillende glycanen, waaronder twee niet-gesialyleerde controles. Dit is gelijk aan 18x 96-well platen in de traditionele assay plaat. De glycan array-formaat vermindert consumptie van verbindingen en biologische en dus verbetert de efficiëntie.

Introduction

Wilde vogels zijn de natuurlijke reservoir voor iav, maar IAV kan de soort barrière voor gevogelte en zoogdieren, waaronder de mens. Avian IAVS herkennen α2-3 gekoppelde siaalzuren (aviaire-type receptoren), terwijl menselijke virussen binden α2-6 gekoppelde siaalzuren (human-type-receptoren). In staat zijn om efficiënt te repliceren en te verzenden tussen mensen een aviaire IAV moet binden aan menselijke-type receptoren 1.

IAVS verdeeld gebaseerd op serologische dat de antigeniciteit van het hemagglutinine (HA) en neuraminidase (NA) envelopglycoproteïnen karakteriseert. HA bindt aan siaalzuren, terwijl de NA-receptorvernietigend enzym aan het andere uiteinde van de virale levenscyclus en splijt siaalzuur 2. Alle menselijke infecterende virussen, waaronder H1N1, H2N2 en H3N2, hebben een aviaire oorsprong 3. In de afgelopen twee decennia een aantal vogels aan menselijke crossovers hebben voorgedaan, met H5N1, H7N7 en H7N9 zijnde de meest bekende; however, hebben andere subtypen meer sporadisch besmette mensen (H6N1, H7N1, H7N2, H9N2, H10N7, H10N8) 4. Gelukkig lijkt het erop dat geen van deze virussen volledig kunnen aanpassen aan humane type-α2-6 gekoppeld siaalzuur receptoren 5-8 zijn. Aanpassing van aviaire of andere zoönotische virussen replicatie en transmissie in menselijke gastheren tegemoet kan een verwoestende uitwerking op de menselijke gezondheid. Daarom voorafgaande kennis van hoe deze virussen evolueren tot mens-type receptoren binden zal wereldwijd de bewaking van opduikende influenzavirussen helpen.

Bepaling van de receptor voorkeur werd voor het eerst opgehelderd met behulp van erytrocyten van verschillende soorten en blijft een favoriete test onder griep onderzoekers 9-12. De demonstratie dat vogelvirussen herkennen α2-3 siaalzuur en menselijke virussen α2-6 gekoppeld siaalzuur werd oorspronkelijk gebaseerd op een analyse met gebruik hemagglutinatie van erytrocyten enzymatisch ontworpen om elk van de li bevattennkages 13,14. Hoewel de uitlezing hemagglutinatie, een standaard test voor virologen, zijn de onderliggende glycan structuren niet bepaald, alleen de terminal koppeling. Bovendien, de beperkte beschikbaarheid van de sialyltransferasen, die opnieuw sialylate de cellen is het gebruik van deze test 15-18 beperkt. Vervolgens, indien andere methoden voor-receptor-bindende voorkeuren werden geïntroduceerd met behulp van gesialyleerde glycan structuren gekoppeld aan poly-acrylamide (PAA) of poly-glutamaat (PGA) structuren in-plaat gebaseerde testen 19,20. Verscheidene variaties zijn mogelijk in het bekleden hetzij de glycanen of virussen microtiterplaten, die elk resulteert in een robuuste, betrouwbare en gevoelige ELISA-type assay 21-23. Als alternatief kan biotine-gekoppelde glycanen vervangen PAA / PGA en kan worden geconjugeerd aan streptavidine-beklede platen 2,24. Hoewel een aantal specifieke sera kan worden verlangd, ELISA's zijn standaard en verschillende glycanen gekoppeld aan PAA worden gemakkelijk commercially en niet-commercieel verkrijgbaar (Consortium voor Functional Glycomics (http://www.functionalglycomics.org)).

Glycan microarray technologie naar voren zijn gekomen als een waardevol instrument om receptor specificiteit te bepalen, als meerdere verschillende glycanen worden gespot, en de binding aan een breed scala van verschillende structuren kan binnen één assay 25-29 worden beoordeeld. De binding van IAV deze structuren een beter begrip van de glycan structuren die IAV herkent bij voorkeur 30-33. Glycan microarrays vereisen kleine hoeveelheden van het monster volume tot een bindende analyse uit te voeren en gebruikt slechts minieme hoeveelheden van glycan per spot (2 nl). Echter, deze arrays typisch alleen gebruikt om de specificiteit van glycanen receptoren geëvalueerd. Analyse van meerdere virussen of hemagglutinine proteïnen, op meerdere concentratiebereik kan worden onbetaalbaar door het aantal dia's vereist. Bovendien tot op heden geen relatieve aviditeit assay is ontwikkeld volgens glycan array-technieken.

De lage vereiste monster verschaft door glycan microarray technieken en de gevoeligheid van PAA gekoppelde glycanen in ELISA-gebaseerde testen te combineren, zochten wij een multiwell-glycan array die zou zorgen voor een hoge-doorvoer analyse met gelijke of betere -oplossing vergeleken de traditionele ELISA gebaseerde bepaling. Tegelijkertijd wilden we het bedrag van biologicals en reporter chemicaliën verbruikt een minimum te beperken. Het uiteindelijke resultaat is een geminiaturiseerde aviditeit test specifiek ontwikkeld om toezicht IAV specificiteit en is eveneens toepasbaar op andere glycan bindende eiwitten bepalen. Gebruik een glasplaatje gescheiden in 48 microputjes door een Teflon masker, worden 6 verschillende glycanen gespot in 6 replicaten per putje. De microarray platform biedt dezelfde trends in receptorbinding gezien in de macro ELISA formaat met een aantal voordelen. Deze omvatten (I) drukken van verbinding 6 replicaten, met minimale monster versus het bekleden van meerdere rijen ina plaat, met behulp van 100 pl per putje; (II) meerdere verschillende verbindingen geanalyseerd gelijktijdig in één goed, met inbegrip van controles; (III) een enorme afname incubatievolume en; (IV) een groter dynamisch bereik met een fluorescente uitlezing. Eén dia kan worden berekend gelijk aan 18x 96-well platen zijn.

Het volgende protocol, elk laboratorium kunnen fabriceren en analyseren bevlekte microarrays moeten kunnen deze geminiaturiseerde ELISA format vervaardigen.

Protocol

Opmerking: Alle stappen worden uitgevoerd bij kamertemperatuur tenzij anders aangegeven. 1. Array Construction Glycan Voorbereiding en Plate Setup Bereid een voorraad van de boekdrukkunst buffer. Maak eerst 500 ml van een 150 mM voorraadoplossing van dibasisch natriumfosfaat. Zorg er ook 50 ml van een 150 mM voorraadoplossing monobasisch natriumfosfaat oplossing. In een kolf met een magnetische roerstaaf en pH meter langzaam Titreer dibasisch natriumfosfaat oplossing met de monobasische oplos…

Representative Results

Printing, Scanning & Data analyse Om een ​​goede afdrukken te waarborgen, is het essentieel om de juiste uitlijning van de gevlekte net binnen de teflon masker, dat elke array op de dia bakent hebben. Tijdens het afdrukken, vanwege de aard van de teflonlaag kan vlekken niet met het blote oog de MPX dia. Aandacht wordt besteed dan aan het uiterlijk van de pre-vlekken op de poly-L-lysine gecoate glaasjes. Direct na het a…

Discussion

Het beoordelen van IAV receptor specificiteit is een belangrijke stap in het analyseren van mogelijke pandemie van aviaire virussen. Siaalzuur erkenning door het virus is gekoppeld aan verschillende biologische eigenschappen zoals binding aan en afgifte uit de cel. Kennis van die aminozuur mutaties nodig zijn voor aviaire virussen te bereiken α2-6 binding en steek de soort barrière maakt pandemie. Verschillende assays worden toegepast om receptor specificiteit te bepalen; echter allemaal hun nadelen, met alleen meten …

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Dit werk werd gedeeltelijk ondersteund door de Scripps Microarray Core Facility, en een contract van de Centers for Disease Control (JCP). RPdV is een ontvanger van een Rubicon en VENI-subsidie ​​van de Nederland Organisatie voor Wetenschappelijk Onderzoek (NWO). Het Consortium voor Functional Glycomics (http://www.functionalglycomics.org/) gefinancierd door NIGMS subsidie ​​GM62116 (JCP) die verschillende glycanen gebruikt in deze studie. Dit is publicatie 29113 van het Scripps Research Institute.

Materials

NEXTERION® Slide H MPX-48  Schott 1091525 Microwell slides
ProScanArray Plus  PerkinElmer discontinued confocal microarray scanner
Innoscan 1100AL Scanner/Mapix Software Innopsys confocal microarray scanner
MicroGrid II  Digilab microaray printer
SNA Vector Labs B-1305  Plant Lectin
ECA Vector Labs B-1145  Plant Lectin
Anti-Strep Antibody IBA 2-1509-001  Anitbody for HA binding
Anti-Mouse Alexa-647 Life A-21235 Anitbody for HA binding
Tween-20 Sigma P2287  detergent
di-basic Sodium Phosphate Sigma 255793 printing buffer component
mono-basic Sodium phosphate Sigma 229903  printing buffer component
poly-l-lysine solution Sigma P8920  pre-spotting slide component
sodium hydroxide Sigma 221465 pre-spotting slide component
ethanol Sigma 493546 pre-spotting slide component
phosphate buffered saline Corning 46-013-CM incubation/washing buffer
SMP4B pins Telechem SMP4B printing pin
Compressed Nitrogen (Grade5) Praxair UN1066 general dusting/drying tool
Boric Acid Sigma B6768-500G Slide blocking reagent
ethanolamine Sigma E9508-500ML Slide blocking reagent
Atto 488 AttoTec AD 488-91 Gridmarker on array
PAA-LNLN Consortium for Functional Glycomics PA368 Spotted glycans
PAA-3SLNLN Consortium for Functional Glycomics PA362 Spotted glycans
PAA-6SLNLN Consortium for Functional Glycomics PA343 Spotted glycans
LNLN Consortium for Functional Glycomics Te98 Spotted glycans
3SLNLN Consortium for Functional Glycomics Te175 Spotted glycans
6SLNLN Consortium for Functional Glycomics Te176 Spotted glycans
384-well microtiter plate Matrix TechCorp 4361 Printing plate
VWR lab marker VWR 52877-150 Slide Numbering
Wheaton slide staining dish Sigma Z103969-1EA Blocking and Drying

References

  1. Tumpey, T. M., et al. A two-amino acid change in the hemagglutinin of the 1918 influenza virus abolishes transmission. Science. 315 (5812), 655-659 (2007).
  2. Xu, R., et al. Functional balance of the hemagglutinin and neuraminidase activities accompanies the emergence of the 2009 H1N1 influenza pandemic. J Virol. 86 (17), 9221-9232 (2012).
  3. Bouvier, N. M., Palese, P. The biology of influenza viruses. Vaccine. 26, D49-D53 (2008).
  4. Freidl, G. S., et al. Influenza at the animal-human interface: a review of the literature for virological evidence of human infection with swine or avian influenza viruses other than A(H5N1). Euro Surveill. 19 (18), (2014).
  5. Xu, R., et al. Preferential recognition of avian-like receptors in human influenza A H7N9 viruses. Science. 342 (6163), 1230-1235 (2013).
  6. Paulson, J. C., de Vries, R. P. H5N1 receptor specificity as a factor in pandemic risk. Virus Res. 178 (1), 99-113 (2013).
  7. Tzarum, N., et al. Structure and receptor binding of the hemagglutinin from a human H6N1 influenza virus. Cell Host Microbe. 17 (3), 369-376 (2015).
  8. Zhang, H., et al. A Human-Infecting H10N8 Influenza Virus Retains a Strong Preference for Avian-type Receptors. Cell Host Microbe. 17 (3), 377-384 (2015).
  9. Carroll, S. M., Higa, H. H., Paulson, J. C. Different cell-surface receptor determinants of antigenically similar influenza virus hemagglutinins. J Biol Chem. 256 (16), 8357-8363 (1981).
  10. Gambaryan, A. S., et al. Specification of receptor-binding phenotypes of influenza virus isolates from different hosts using synthetic sialylglycopolymers: non-egg-adapted human H1 and H3 influenza A and influenza B viruses share a common high binding affinity for 6′-sialyl(N-acetyllactosamine). Virology. 232 (2), 345-350 (1997).
  11. Rogers, G. N., D’Souza, B. L. Receptor binding properties of human and animal H1 influenza virus isolates. Virology. 173 (1), 317-322 (1989).
  12. Rogers, G. N., et al. Single amino acid substitutions in influenza haemagglutinin change receptor binding specificity. Nature. 304 (5921), 76-78 (1983).
  13. Paulson, J. C., Rogers, G. N. Resialylated erythrocytes for assessment of the specificity of sialyloligosaccharide binding proteins. Methods Enzymol. 138, 162-168 (1987).
  14. Paulson, J. C., Sadler, J. E., Hill, R. L. Restoration of specific myxovirus receptors to asialoerythrocytes by incorporation of sialic acid with pure sialyltransferases. J Biol Chem. 254 (6), 2120-2124 (1979).
  15. Chutinimitkul, S., et al. In vitro assessment of attachment pattern and replication efficiency of H5N1 influenza A viruses with altered receptor specificity. J Virol. 84 (13), 6825-6833 (2010).
  16. Glaser, L., et al. A single amino acid substitution in 1918 influenza virus hemagglutinin changes receptor binding specificity. J Virol. 79 (17), 11533-11536 (2005).
  17. Herfst, S., et al. Airborne transmission of influenza A/H5N1 virus between ferrets. Science. 336 (6088), 1534-1541 (2012).
  18. Nobusawa, E., Ishihara, H., Morishita, T., Sato, K., Nakajima, K. Change in receptor-binding specificity of recent human influenza A viruses (H3N2): a single amino acid change in hemagglutinin altered its recognition of sialyloligosaccharides. Virology. 278 (2), 587-596 (2000).
  19. Gambaryan, A. S., Matrosovich, M. N. A solid-phase enzyme-linked assay for influenza virus receptor-binding activity. J Virol Methods. 39 (1-2), 111-123 (1992).
  20. Totani, K., et al. Chemoenzymatic synthesis and application of glycopolymers containing multivalent sialyloligosaccharides with a poly(L-glutamic acid) backbone for inhibition of infection by influenza viruses. Glycobiology. 13 (5), 315-326 (2003).
  21. Gambaryan, A., et al. Receptor specificity of influenza viruses from birds and mammals: new data on involvement of the inner fragments of the carbohydrate chain. Virology. 334 (2), 276-283 (2005).
  22. Ito, T., et al. Receptor specificity of influenza A viruses correlates with the agglutination of erythrocytes from different animal species. Virology. 227 (2), 493-499 (1997).
  23. Watanabe, Y., et al. Acquisition of human-type receptor binding specificity by new H5N1 influenza virus sublineages during their emergence in birds in Egypt. PLoS Pathog. 7 (5), e1002068 (2011).
  24. Chandrasekaran, A., et al. Glycan topology determines human adaptation of avian H5N1 virus hemagglutinin. Nat Biotechnol. 26 (1), 107-113 (2008).
  25. Blixt, O., et al. Printed covalent glycan array for ligand profiling of diverse glycan binding proteins. Proc Natl Acad Sci U S A. 101 (49), 17033-17038 (2004).
  26. Childs, R. A., et al. Receptor-binding specificity of pandemic influenza A (H1N1) 2009 virus determined by carbohydrate microarray. Nat Biotechnol. 27 (9), 797-799 (2009).
  27. Nycholat, C. M., et al. Recognition of Sialylated Poly-N-acetyllactosamine Chains on N- and O-Linked Glycans by Human and Avian Influenza A Virus Hemagglutinins. Angew Chem Int Ed Engl. , (2012).
  28. Rillahan, C. D., Paulson, J. C. Glycan microarrays for decoding the glycome. Annu Rev Biochem. 80, 797-823 (2011).
  29. Song, X., et al. A sialylated glycan microarray reveals novel interactions of modified sialic acids with proteins and viruses. J Biol Chem. 286 (36), 31610-31622 (2011).
  30. Gulati, S., et al. Human H3N2 Influenza Viruses Isolated from 1968 To 2012 Show Varying Preference for Receptor Substructures with No Apparent Consequences for Disease or Spread. PLoS One. 8 (6), (2013).
  31. Stevens, J., Blixt, O., Paulson, J. C., Wilson, I. A. Glycan microarray technologies: tools to survey host specificity of influenza viruses. Nat Rev Microbiol. 4 (11), 857-864 (2006).
  32. de Vries, R. P., et al. Evolution of the hemagglutinin protein of the new pandemic H1N1 influenza virus: maintaining optimal receptor binding by compensatory substitutions. J Virol. 87 (24), 13868-13877 (2013).
  33. Yang, H., et al. Structure and receptor binding preferences of recombinant human A(H3N2) virus hemagglutinins. Virology. 477, 18-31 (2015).
  34. de Vries, R. P., et al. The influenza A virus hemagglutinin glycosylation state affects receptor-binding specificity. Virology. 403 (1), 17-25 (2010).
check_url/kr/53847?article_type=t

Play Video

Cite This Article
McBride, R., Paulson, J. C., de Vries, R. P. A Miniaturized Glycan Microarray Assay for Assessing Avidity and Specificity of Influenza A Virus Hemagglutinins. J. Vis. Exp. (111), e53847, doi:10.3791/53847 (2016).

View Video