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방법 논문

뇌 조각에서 전체 셀 패치 클램프 녹음

61.5K 조회수

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DOI:

10.3791/54024

⸱

2016년 6월 15일

 ,  , 

이 논문에서

요약

이 프로토콜은 전체 셀 패치 클램프 녹음을 수행하기위한 기본 절차 단계를 설명합니다. 이 기술은 신경 세포의 전기적 동작의 연구를 허용하고, 뇌 조각에서 수행하는 경우, 여전히 상대적으로 잘 보존 된 뇌 회로에 통합되어 신경 세포에서 다양한 신경 기능의 평가를 할 수 있습니다.

초록

전체 셀 패치 클램프 기록은 신경 세포의 상당한 부분의 전기적 특성의 조사를 허용하는 전기 생리 기술이다. 이러한 구성에서, 마이크로 피펫은 이전에 사용 된 세포 날카로운 전극 기록 방법보다 더욱 정확한 이온 전류 측정 전류 누설을 방지함으로써 제공 세포막에 밀착된다. 고전적으로, 전체 셀 기록 세포 배양 모델 해리 신경 뇌 조각 뉴런 제제를 포함하는 다양한 형태의 신경 세포에서 수행하고, 그대로 마취 또는 웨이크 동물 일 수있다. 요약하면,이 기술은 대단히 흥분 세포의 수동 및 능동 생물 물리학 적 특성의 이해에 기여하고있다. 이 기술의 주요 장점은 조작 (예, 약물은 실험자 유도 가소성)는 특정한 신경 기능 또는 C를 변경할 수있는 방법의 특정 정보를 제공하는 것이다실시간 hannels. 또한 세포막의 중요한 개구 내부 피펫 용액 자유롭게 도입하는 약물, 예를 들어 작용제 또는 특정 세포 단백질의 길항제를위한 수단을 제공하며 인접 셀의 기능을 변경하지 않고 이러한 대상을 조작하는 세포질 내로 확산 할 수있다. 전체 셀 기록에 초점이 문서는 뇌 조각의 뉴런에 생리 학적으로 관련 맥락에서, 즉 상대적으로 잘 보존 된 뇌 회로에 신경을 기록하는 장점을 가지고 준비를 시행 하였다. 특히, 적절한 약리학과 결합 될 때, 이러한 기술은 학습, 약물 남용에 대한 노출, 스트레스 등의 경험 중 어느 방식에 따른 구체적인 neuroadaptations 발생을 식별 할 수있는 강력한 도구이다. 요약하면, 뇌 조각에서 전체 셀 패치 클램프 녹음은 생체 준비를 오래 지속 변화를 측정 할 수있는 수단을 제공신경 기능에 해당 그대로 깨어 동물에서 개발했습니다.

서론

패치 클램프 기술은, 1970 년대 후반에 개발 1,2-되었습니다 전기 생리 기술은 실시간 조직에서 단일 또는 다중 이온 채널의 기능을 연구하기위한 기본 툴이다. 달성 될 수있는 다른 패치 구성 중에서, 전체 셀 패치 클램프 기록은 뉴런의 주요부의 전기적 성질의 조사를 허용한다. 고전적으로,이 기술은 시험 관내에서 두 뇌 조각 갓 해리 뉴런 또는 세포 배양 모델 (3)에 행해진 다. 뇌 조각 뉴런에서 수행하는 경우,이 기술은 여러 가지 장점을 제공한다. 특히, (I) 신경 세포는 다소 상대적으로 보존 된 뇌 회로에 기록되고, 세포 배양 용 제제에 비해 3 생리 관련이있는 환경을 제공한다. 이것은 급성 pharmacolog 임의의 유형에 의해 유발되는 세포 및 분자 사건을 초기에 포착, 또는 실시간으로 모니터링 할 수있게iCal의 조작 - 생체 내 조건의 전형적인 사용하여 달성 될 수없는 시간 해상도; 시각적으로 뇌 조각에 뇌 영역을 식별에 (II) 기능은 모두가 형광 마커를 표현 할 때 뇌 영역은 공부에 대한 특정 신경 세포에 대한 높은 지역 특이성 3 수 있습니다; (ⅲ) (세포 내 레코딩을위한 날카로운 마이크로 피펫으로 막을 천공 대조적으로) 원형질막의 상당 부분을 열어 세포의....

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프로토콜

모든 실험은 UT 남서부 기관 동물 보호 및 사용위원회의 승인 된 프로토콜에 따라 수행하였고, 실험 동물에 의해 경험 응력 불편과 고통을 최소화하도록 선택되었다.

1. 솔루션

참고 : 사전에 마이크로 피펫 내부 솔루션을 준비합니다. 가장 기초적인 실험을 위해, 용액의 두 종류가 충분해야 : CS + 및 K + 기반 기반 솔루션.

  1. 전압 클램프 실험에 사용 고사 + 기반 솔루션 (예를 들어, 고사 + 글루코 네이트 솔루션 자료 참조). RT에서 준비합니다.
    1. 3.54 g의 CsOH (~ 2.01 ml)로 4.62 g의 D-글루 콘산 (~ 3.696 ml)에 혼합하여 117 mM의 CS-이 품목 솔루션을 준비합니다.
    2. DDH 2 O 90 ML을 추가하고 30 분 동안 평형 수 있습니다.
    3. 0.4 밀리미터 EGTA = 15.2 mg의; 2.8 mM의 염화나트륨 = 16.4 mg을, 고체 성분 (20 mM의 HEPES = 0.476 g 추가 5 MM의 테트라 에틸을 (TEA) 클로라이드 = 83 mg)을 얻었다.
    4. ~ 97 ml에 DDH ....

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결과

온도 용이 실험자에 의해 제어되는 요소는, 이온 채널과 수용체의 생물 리 학적 특성에 영향을 미치는, 이로써 시냅스 전류 (PSC를) (EPSC 및 IPSCs) 스파이크를 유발하는 신경 기능의 파형.도 3 도 4는 신경 세포에 소성 온도의 영향을 각각 유발 EPSCs (eEPSCs)의 기울기를 나타낸다. 소성 패턴 (도 3)는 초과되어 조정 개구 특정 전압 - 게이트 이온 채널을 폐쇄함으로써 형성된다 (즉, 1 차 스파이크 레이턴시, 수, 주파수 및 활동 전위 파형 스파이크) (NA +, 칼슘 + 및 K +), 온도에 민감한 공정. 평균 스파이크 수는 온도에 따라 증가하는 방법 3은 그림. 스파이크 freque하지만 여기에 설명 된 실험 조건 (MSNs 녹.......

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토론

이 프로토콜은 뇌 조각의 뉴런에서 전체 셀 패치 클램프 실험을 수행하기위한 기본 절차를 설명합니다. 그러나,이 기술의 복잡성 전위 감도 완전이 문서에서 설명 될 수 없다. 여기, 우리는 가장 기본적인 단계를 묘사하고 성공적이고 엄격한 전체 세포 녹음을 달성하기위한 제어해야합니다 중요한 매개 변수를 강조하기 위해 노력했다. 더 이론적 인 학습, 많은 책과 기사는 뇌 조각 3,21-24과 세포 생존 능력을 강화하기 위해 25 ~ 27을 사용하는 솔루션을 구체화 할 수 있습니다 방법 모두에서 전체 셀 패치 클램프 녹음에 발표되었다. 정기적으로 적절한 녹음을 수행하기 위해 집중적 인 연습을 통해 기술 능력의 향상이 필요합니다. 시냅스 기능과 고유 excitabi의 변화에​​ 대한 중요한 정보를 제공하는 단계의 적절한 응용 프로그램이 언급​​과 그럼에도 불구하고, 세포가 패치 할 수있는 시간 사후,lity.

일반적으로, 신중 모두 ACSF 내부 .......

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공개 사항

저자의 아무도는 경쟁의 이익 또는 충돌하는 이해 관계가 없습니다.

감사의 글

이 연구는 UT 사우스 웨스턴 시작 기금 (SK)에 의해 지원되었다.

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재료

이 논문에 사용된 재료 목록
이름회사카탈로그 번호댓글
절연 펄스 자극 생성기A.M.P.IMaster-8
절연 유닛 (ISO-Flex)A.M.P.IISO-Flex
컴퓨터 제어 증폭기 분자 장치Multiclamp 700B
디지털 수집 시스템분자 장치Digidata 1500
현미경OlympusBX-51
MicromanipulatorSutter InstrumentsMPC-200
챔버 및 인라인 히터Warner InstrumentsTC-344B
VibratomeSlicer Leica VT1000 S
마이크로 피펫 풀러NarishigePC-10
이미징 카메라Q 이미징QIClick-F-M-12
Narishige 피펫 풀러 PC-10NarishigePC-10
유리 모세관WPI TW150F-3
슬라이스 홀드 다운 (하프)Warner Instruments64-0255
Slice 챔버워너 인스트루먼트RC-26
비금속 주사기 바늘세계 정밀 기기MF28G67-5
주사기 필터Nalgene176-0045
글루 건홈 디포다양한
가스 분산 튜브Ace Glass Inc.다양한
참수 가위Home Depot100649198
메스 핸들 #3세계 정밀 기기500236
작은 직선 날카로운 팁 가위세계 정밀 기기14218
용기 캐끰레이션 펜셉스 World Precision Instruments500453
곡선형 지혈 겸자World Precision Instruments501288
이코노미 핀셋 #3World Precision Instruments501976-6
주Fisher Scientific14357Q
스쿱 주걱Fisher Scientific14-357Q
페트리 접시Fisher Scientific08-747B
여과지Lab DepotCFP1-110
Solutions
Cs-Gluconate 내부 용액 (pH 7.2– 7.3, 280– 290 mOsm)
D-gluconic acid 50% 시그마 Aldrich/다양한G1951
Cesium-OH (CsOH) 50% 시그마 알드리치/다양한232041
NaCl, 2.8mM시그마 알드리치/다양한S7653
HEPES, 20mM시그마 알드리치/다양한H3375
EGTA, 0.4mM시그마 알드리치/다양한E4378
테트라에틸암모늄-Cl, 5mM시그마 알드리치/다양한T2265
Na2GTP, 0.3mM시그마 Aldrich/variousG8877
MgATP, 2 mMSigma Aldrich/variousA9187
K-Gluconate 내부 용액 (pH 7.2– 7.3, 280– 290 mOsm)
K D-gluconate, 120 mMSigma Aldrich/variousG4500
KCl, 20 mMSigma Aldrich/variousP3911
HEPES, 10 mMSigma Aldrich/variousH3375
EGTA, 0.2 mMSigma Aldrich/variousE4378
MgCl2Sigma Aldrich/variousM8266
Na2GTP, 0.3 mMSigma Aldrich/variousG8877
MgATP, 2 mMSigma Aldrich/variousA9187
Standard artificial cerebrospinal fluid (ACSF, osmolarity ≈ 300-310 mOsm)
KCl, 2.5 mMSigma Aldrich/variousP3911
NaCl, 119 mMSigma Aldrich/ 다양한S7653
NaH2PO4• H2O, 1 mMSigma Aldrich/variousS9638
NaHCO3, 26.2 mMSigma Aldrich/variousS8875
Glucose, 11 mMSigma Aldrich/variousG8270
MgSO4-7H2O, 1.3 mMSigma Aldrich/various230391
CaCl2- 2H2O, 2.5 mMSigma Aldrich/variousC3881
용액 준비에 사용되는 추가 화합물
KOH다양한
Kynurenic acidSigma Aldrich/variousK3375
걱

참고문헌

  1. Neher, E., Sakmann, B. Single-channel currents recorded from membrane of denervated frog muscle fibres. Nature. 260 (5554), 799-802 (1976).
  2. Sakmann, B., Neher, E. Patch clamp techniques for studying ionic channels in excitable membranes. Annu Rev Physiol....

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