Bøjesenerne i hånden er almindeligt såret, hvilket fører til nedsat håndfunktion. Imidlertid er arvæv healing svar ikke godt karakteriseret. En musemodel af flexor senen healing demonstreres her. Denne model kan forbedre den overordnede forståelse af helingsprocessen og vurdere terapeutiske metoder til at forbedre heling.
Tendon forbinder skeletmuskulatur og knogler, lette bevægelse af næsten hele kroppen. I hånden, bøjesenerne (FTS) muliggøre fleksion af fingrene og generelle håndfunktion. Skader på FTS er fælles, og tilfredsstillende helbredelse er ofte forringet på grund af overskydende arvæv og sammenvoksninger mellem senen og omgivende væv. Men lidt om de molekylære og cellulære komponenter i FT reparation. Med henblik herpå en murin model for FT reparation, der rekapitulerer mange aspekter af heling hos mennesker, herunder nedsat vifte af bevægelse og nedsat mekaniske egenskaber, er blevet udviklet og beskrevet tidligere. Her en grundig demonstration af denne kirurgiske procedure er forudsat, der involverer overskæring og efterfølgende reparation af flexor digitorum longus (FDL) sene i murine bagpote. Denne teknik kan bruges til at foretage afstamning analyse af forskellige celletyper, vurdere virkningerne af gen-gevinst eller tab af funktion, og at teste effekticacy af farmakologiske indgreb i den helbredende proces. Der er dog to primære begrænsninger forbundet med denne model: i) FDL senen i midterdelen af den murine bagpote, hvor overskæring og reparation forekommer, ikke er omgivet af en seneskeden. denne model er derfor ikke højde for den potentielle bidrag kappen til ardannelse processen. ii) For at beskytte integriteten af reparationsstedet, er FT frigivet i myotendinous junction, begrænse den mekaniske kræfter senen, sandsynligvis bidrage til øget ardannelse. Isolering af tilstrækkelige celler fra granulationsvævet af FT under helingsprocessen for flowcytometrisk analyse har vist sig udfordrende; cytologi centrifugering for at koncentrere disse celler er en alternativ metode, der anvendes, og giver mulighed for generering af cellepræparater, hvor immunfluorescerende mærkning kan udføres. Med denne metode bliver kvantificering af celler eller proteiner af interesse under FT healing muligt.
Flexor sener i hånden arbejde i koncert med flexor muskler i underarmen og digitale hylstre for at muliggøre bøjning af cifrene og gribe funktion af hånden. Bøjesenerne løber langs palmar aspekt af hånden; denne relativt overfladiske placering resulterer ofte i skader på flexor sener under traumer til hånden. Sener helbrede gennem en arvæv reaktion snarere end regenerering af normalt væv senen 1. Mens dette arvæv giver kontinuitet til senen, er funktionen faldt dramatisk i forhold til sund sene. Tendon-arvæv kompositter er kendetegnet ved svækkede mekaniske egenskaber 1, gør de reparerede sener mere tilbøjelige til at briste. Desuden mangler arvæv organiseringen af det native senecollagen fiberstruktur, hvilket resulterer i en stigning i senen størrelse og bulk. I betragtning af de anatomiske begrænsninger af senen-skede enhed, selv en beskeden stigning i senen størrelse kan drastisk rødUCE den glidende funktion af senen, og derfor ciffer vifte af bevægelse og håndfunktion.
Forud for 1960'erne skader flexor sener, især dem i zone II af hånden, blev ikke rutinemæssigt repareres på grund af de alvorlige komplikationer i healing, der opstod med disse reparationer 2. Dette område af hånden blev benævnt »ingenmandsland« 3. Imidlertid har forbedringer i kirurgiske teknikker, sutur mønstre og fysisk terapi rehabilitering protokoller dramatisk forbedret resultater af flexor senen reparation 2. På trods af disse fremskridt, op til 40% af reparationer resulterer i tilstrækkelig vedhæftning dannelse at hindre håndfunktion 4. Derfor er en biologisk tilgang for at forbedre heling. Desværre, meget lidt er kendt om senen helingsprocessen ved cellulære og molekylære niveau. Således var målet at udvikle en murin model, der kunne bruges til at forbedre den grundlæggende understanding af de cellulære og molekylære bestanddele af flexor seneheling og ardannelse respons, som et middel til at identificere hidtil ukendte terapeutiske mål at forbedre heling.
Større dyremodeller har været medvirkende til at fremme forståelse af flexor senen helingsprocessen. Hunde og kaniner undersøgelser har vist både indre og ydre healing evne bøjesenerne 5,6, betydningen af tidlig kontrolleret passiv bevægelse i minimering adhæsionsdannelse forhold til immobilisering 7, samt virkningerne af forskellige sutur mønstre på helingsprocessen 8 9. Desuden har hundemodellen været nyttigt i at teste translationelle vævsmanipulering strategier til forbedring healing 10. Der er imidlertid flere væsentlige fordele ved at anvende en musemodel i forhold til en stor dyremodel, herunder de relative omkostninger, tilgængelighed af murine specifikke reagenser, og den lethed generere global knock-outs eller vævsspecifikke sletning / overekspression konstruktioner. Endvidere er de funktionelle ligheder mellem mennesker og mus med hensyn til bøjesenerne 11 antyder potentiel anvendelighed i udviklingen af en murin model.
Udvikling af en musemodel af flexor senen overskæring og reparation efterligner mange aspekter af klinisk helbredelse, herunder dannelsen af rigelige arvæv og forringede mekaniske egenskaber. Den her beskrevne model er ikke en sand sammenfatning af klinisk praksis på grund af overskæring af FDL på myotendinous krydset for at beskytte reparationsstedet. Endvidere hindrer model ikke højde for bidraget fra seneskede celler til den helbredende reaktion, da der ikke er seneskeden dækker midterdelen af senen hvor reparationen forekommer. Trods disse begrænsninger, denne model har den fordel genererende vifte af bevægelse-begrænsende adhæsioner, der endnu ikke er påvist i murine modeller at flere Closely tilnærme den kliniske scenarium. Denne model er blevet anvendt til at vurdere knock-out musemodeller 12,13, og at teste forskellige farmakologiske metoder til forbedring healing 14-17. Histologiske analyser af denne model, ved hjælp af immunhistokemi og in situ hybridisering, kan tilvejebringe vigtig indsigt i til lokalisering af vigtige gener og proteiner under heling. Imidlertid histologi giver kun et tværsnit rumlig analyse og tillader ikke kvantificering hele væv. Flowcytometri repræsenterer en mere kvantitativ tilgang, men kun et meget begrænset antal celler kan isoleres fra den helbredende senen væv i musemodellen, og dette tal reduceres yderligere under fiksering, permeabilisering, og vasketrin. Tage dette i at konto, flowcytometri bliver en umulig tilgang på grund af antallet af dyr, der ville være påkrævet. En alternativ metode er nødvendig for at bevare de fleste af denne småcellet population med henblikTil yderligere karakterisering af milieu healing. Den anvendte metode til at opnå dette, er vist her, involverer koncentration af de isolerede celler via cytologi centrifugering på et objektglas, efterfulgt af immuncytokemi. I den foreliggende undersøgelse edu (5-ethynyl-2'-deoxyuridin, et thymidin-analog) inkorporering og efterfølgende mærkning blev anvendt til at bestemme den relative proliferativ tilstand af celler ved den helbredende site. Denne metode kan anvendes til at teste effektiviteten af farmakologiske behandlinger på celleproliferation, gen knock-out eller overekspression, eller til at identificere og kvantificere forskellige cellepopulationer.
Den kirurgiske procedure for en murin model for fuldstændig overskæring og reparation af flexor digitorum longus senen præsenteres i denne undersøgelse. Desuden en ny anvendelse af koncentrere små cellepopulationer med cytologi centrifuge er påvist, der giver mulighed for kvantitativ immunocytokemisk analyse af den cellulære miljø under flexor senen healing. Denne model af flexor senen reparation demonstrerer en reproducerbar helbredende reaktion, som kan anvendes til at vurdere ændringer i helingsprocessen ved…
The authors have nothing to disclose.
Dette arbejde blev delvist støttet af American Society for Kirurgi af Hand Pilot Award og NIH / NIAMS 1K01AR068386-01 (til AEL) og NIAMS / NIH P30AR061307.
Surgical preparation | |||
C57BL/6J mice | Jackson Laboratories | 000664 | |
Ketamine | Hospira | NDC# 0409-2051-05 | |
Xylazine | Lloyd Inc. | NDC# 61311-482-10 | |
Buprenorphine | Par Pharmaceutical Inc. | NDC# 42023-179-10 | |
0.9% sodium chloride irrigation | Hospira | NDC# 0409-6138-03 | For preparation of ketamine/xylazine and buprenorphine solutions |
1ml syringe | BD | 309659 | |
30G needle | BD | 305106 | |
Povidone-Iodine solution | Aplicare | 82-226 | |
70% ethanol | |||
Puralube vet opthalmic ointment | Dechra Veterinary Products | NDC# 17033-211-38 | |
Name | Company | Catalog Number | Comments |
Surgical tools | |||
Portable balance 200g | Ohaus | SP202 | |
Spring scissors | Fine Science Tools | 15124-12 | |
Dumont #5 forceps | Fine Science Tools | 11251-30 | |
Needle holders | Fine Science Tools | 91201-13 | |
Micro spring scissors | Fine Science Tools | 15003-08 | |
Micro needle holders | Fine Science Tools | 12061-02 | |
5-0 nylon sutures | Ethicon | 668G | |
8-0 microsurgery nylon sutures | Ethicon | 2808G | |
Lab-Line histology slide warmer | Barnstead International | 26025 | |
Name | Company | Catalog Number | Comments |
Cytospin method | |||
Collagenase Type I, lyophilized | Life Technologies | 1700-017 | |
Bovine Serum Albumin | Cell Signaling Technologies | 9998S | |
1X PBS | Thermo Fisher | 10010-023 | |
Cytology funnels | Fisher HealthCare | 10-354 | |
HistoBond+ microscope slides | VWR | 16005-110 | |
Cytospin 2 centrifuge | Shandon | SH-CYTO2 | |
Name | Company | Catalog Number | Comments |
Immunocytochemistry | |||
Slide staining tray with black lid | IHC World | M920-2 | |
Click-iT Plus EdU Imaging Kit | Life Technologies | C10639 | Includes EdU and Hoeschst 33342 |
Immedge hydrophobic barrier pen | Vector Laboratories | H-4000 | |
ProLong Diamond mounting medium | Thermo Fisher | P36970 | |
Glass coverslips 24x50mm #1.5 | |||
Clear nail polish |