Summary

Murine Flexor seneskade og reparation kirurgi

Published: September 19, 2016
doi:

Summary

Bøjesenerne i hånden er almindeligt såret, hvilket fører til nedsat håndfunktion. Imidlertid er arvæv healing svar ikke godt karakteriseret. En musemodel af flexor senen healing demonstreres her. Denne model kan forbedre den overordnede forståelse af helingsprocessen og vurdere terapeutiske metoder til at forbedre heling.

Abstract

Tendon forbinder skeletmuskulatur og knogler, lette bevægelse af næsten hele kroppen. I hånden, bøjesenerne (FTS) muliggøre fleksion af fingrene og generelle håndfunktion. Skader på FTS er fælles, og tilfredsstillende helbredelse er ofte forringet på grund af overskydende arvæv og sammenvoksninger mellem senen og omgivende væv. Men lidt om de molekylære og cellulære komponenter i FT reparation. Med henblik herpå en murin model for FT reparation, der rekapitulerer mange aspekter af heling hos mennesker, herunder nedsat vifte af bevægelse og nedsat mekaniske egenskaber, er blevet udviklet og beskrevet tidligere. Her en grundig demonstration af denne kirurgiske procedure er forudsat, der involverer overskæring og efterfølgende reparation af flexor digitorum longus (FDL) sene i murine bagpote. Denne teknik kan bruges til at foretage afstamning analyse af forskellige celletyper, vurdere virkningerne af gen-gevinst eller tab af funktion, og at teste effekticacy af farmakologiske indgreb i den helbredende proces. Der er dog to primære begrænsninger forbundet med denne model: i) FDL senen i midterdelen af ​​den murine bagpote, hvor overskæring og reparation forekommer, ikke er omgivet af en seneskeden. denne model er derfor ikke højde for den potentielle bidrag kappen til ardannelse processen. ii) For at beskytte integriteten af ​​reparationsstedet, er FT frigivet i myotendinous junction, begrænse den mekaniske kræfter senen, sandsynligvis bidrage til øget ardannelse. Isolering af tilstrækkelige celler fra granulationsvævet af FT under helingsprocessen for flowcytometrisk analyse har vist sig udfordrende; cytologi centrifugering for at koncentrere disse celler er en alternativ metode, der anvendes, og giver mulighed for generering af cellepræparater, hvor immunfluorescerende mærkning kan udføres. Med denne metode bliver kvantificering af celler eller proteiner af interesse under FT healing muligt.

Introduction

Flexor sener i hånden arbejde i koncert med flexor muskler i underarmen og digitale hylstre for at muliggøre bøjning af cifrene og gribe funktion af hånden. Bøjesenerne løber langs palmar aspekt af hånden; denne relativt overfladiske placering resulterer ofte i skader på flexor sener under traumer til hånden. Sener helbrede gennem en arvæv reaktion snarere end regenerering af normalt væv senen 1. Mens dette arvæv giver kontinuitet til senen, er funktionen faldt dramatisk i forhold til sund sene. Tendon-arvæv kompositter er kendetegnet ved svækkede mekaniske egenskaber 1, gør de reparerede sener mere tilbøjelige til at briste. Desuden mangler arvæv organiseringen af ​​det native senecollagen fiberstruktur, hvilket resulterer i en stigning i senen størrelse og bulk. I betragtning af de anatomiske begrænsninger af senen-skede enhed, selv en beskeden stigning i senen størrelse kan drastisk rødUCE den glidende funktion af senen, og derfor ciffer vifte af bevægelse og håndfunktion.

Forud for 1960'erne skader flexor sener, især dem i zone II af hånden, blev ikke rutinemæssigt repareres på grund af de alvorlige komplikationer i healing, der opstod med disse reparationer 2. Dette område af hånden blev benævnt »ingenmandsland« 3. Imidlertid har forbedringer i kirurgiske teknikker, sutur mønstre og fysisk terapi rehabilitering protokoller dramatisk forbedret resultater af flexor senen reparation 2. På trods af disse fremskridt, op til 40% af reparationer resulterer i tilstrækkelig vedhæftning dannelse at hindre håndfunktion 4. Derfor er en biologisk tilgang for at forbedre heling. Desværre, meget lidt er kendt om senen helingsprocessen ved cellulære og molekylære niveau. Således var målet at udvikle en murin model, der kunne bruges til at forbedre den grundlæggende understanding af de cellulære og molekylære bestanddele af flexor seneheling og ardannelse respons, som et middel til at identificere hidtil ukendte terapeutiske mål at forbedre heling.

Større dyremodeller har været medvirkende til at fremme forståelse af flexor senen helingsprocessen. Hunde og kaniner undersøgelser har vist både indre og ydre healing evne bøjesenerne 5,6, betydningen af tidlig kontrolleret passiv bevægelse i minimering adhæsionsdannelse forhold til immobilisering 7, samt virkningerne af forskellige sutur mønstre på helingsprocessen 8 9. Desuden har hundemodellen været nyttigt i at teste translationelle vævsmanipulering strategier til forbedring healing 10. Der er imidlertid flere væsentlige fordele ved at anvende en musemodel i forhold til en stor dyremodel, herunder de relative omkostninger, tilgængelighed af murine specifikke reagenser, og den lethed generere global knock-outs eller vævsspecifikke sletning / overekspression konstruktioner. Endvidere er de funktionelle ligheder mellem mennesker og mus med hensyn til bøjesenerne 11 antyder potentiel anvendelighed i udviklingen af en murin model.

Udvikling af en musemodel af flexor senen overskæring og reparation efterligner mange aspekter af klinisk helbredelse, herunder dannelsen af ​​rigelige arvæv og forringede mekaniske egenskaber. Den her beskrevne model er ikke en sand sammenfatning af klinisk praksis på grund af overskæring af FDL på myotendinous krydset for at beskytte reparationsstedet. Endvidere hindrer model ikke højde for bidraget fra seneskede celler til den helbredende reaktion, da der ikke er seneskeden dækker midterdelen af ​​senen hvor reparationen forekommer. Trods disse begrænsninger, denne model har den fordel genererende vifte af bevægelse-begrænsende adhæsioner, der endnu ikke er påvist i murine modeller at flere Closely tilnærme den kliniske scenarium. Denne model er blevet anvendt til at vurdere knock-out musemodeller 12,13, og at teste forskellige farmakologiske metoder til forbedring healing 14-17. Histologiske analyser af denne model, ved hjælp af immunhistokemi og in situ hybridisering, kan tilvejebringe vigtig indsigt i til lokalisering af vigtige gener og proteiner under heling. Imidlertid histologi giver kun et tværsnit rumlig analyse og tillader ikke kvantificering hele væv. Flowcytometri repræsenterer en mere kvantitativ tilgang, men kun et meget begrænset antal celler kan isoleres fra den helbredende senen væv i musemodellen, og dette tal reduceres yderligere under fiksering, permeabilisering, og vasketrin. Tage dette i at konto, flowcytometri bliver en umulig tilgang på grund af antallet af dyr, der ville være påkrævet. En alternativ metode er nødvendig for at bevare de fleste af denne småcellet population med henblikTil yderligere karakterisering af milieu healing. Den anvendte metode til at opnå dette, er vist her, involverer koncentration af de isolerede celler via cytologi centrifugering på et objektglas, efterfulgt af immuncytokemi. I den foreliggende undersøgelse edu (5-ethynyl-2'-deoxyuridin, et thymidin-analog) inkorporering og efterfølgende mærkning blev anvendt til at bestemme den relative proliferativ tilstand af celler ved den helbredende site. Denne metode kan anvendes til at teste effektiviteten af ​​farmakologiske behandlinger på celleproliferation, gen knock-out eller overekspression, eller til at identificere og kvantificere forskellige cellepopulationer.

Protocol

Universitetet Komité for Dyrs Forskning ved University of Rochester godkendt alle dyreforsøg. Ti-12 uger gamle C57BL / 6J mus blev anvendt. 1. Forberedelse af dyr for Flexor sene kirurgi (~ 15 min) Autoklave kirurgiske instrumenter til at sterilisere, bære sterile handsker overalt, og opretholde en steril drift felt. Anesthetize mus via intraperitoneal injektion (ip) med et volumen af ​​ketamin (80 mg / kg) og xylazin (10 mg / kg) svarende til legemsvægt. Bekræf…

Representative Results

Flexor digitorum longus (FDL) muskel, beliggende i læggen, virker til at bøje cifrene i muse bagpote via flexor senen (skitseret i blåt i figur 1A, og vist histologisk i figur 2A), der løber proksimalt fra den myotendinous krydset og ender i de distale phalanges. I denne model af flexor senen healing er FDL senen transekteret og repareret på midten af foden, proksimalt til forgreningen på cifrene i bagpoten (røde pile, figur 1A). …

Discussion

Den kirurgiske procedure for en murin model for fuldstændig overskæring og reparation af flexor digitorum longus senen præsenteres i denne undersøgelse. Desuden en ny anvendelse af koncentrere små cellepopulationer med cytologi centrifuge er påvist, der giver mulighed for kvantitativ immunocytokemisk analyse af den cellulære miljø under flexor senen healing. Denne model af flexor senen reparation demonstrerer en reproducerbar helbredende reaktion, som kan anvendes til at vurdere ændringer i helingsprocessen ved…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Dette arbejde blev delvist støttet af American Society for Kirurgi af Hand Pilot Award og NIH / NIAMS 1K01AR068386-01 (til AEL) og NIAMS / NIH P30AR061307.

Materials

Surgical preparation
C57BL/6J mice  Jackson Laboratories 000664
Ketamine Hospira NDC# 0409-2051-05
Xylazine Lloyd Inc. NDC# 61311-482-10
Buprenorphine Par Pharmaceutical Inc. NDC# 42023-179-10
0.9% sodium chloride irrigation Hospira NDC# 0409-6138-03 For preparation of ketamine/xylazine and buprenorphine solutions
1ml syringe BD 309659
30G needle BD 305106
Povidone-Iodine solution Aplicare 82-226
70% ethanol
Puralube vet opthalmic ointment Dechra Veterinary Products NDC# 17033-211-38
Name Company Catalog Number Comments
Surgical tools
Portable balance 200g Ohaus SP202
Spring scissors Fine Science Tools 15124-12
Dumont #5 forceps Fine Science Tools 11251-30
Needle holders Fine Science Tools 91201-13
Micro spring scissors Fine Science Tools 15003-08
Micro needle holders Fine Science Tools 12061-02
5-0 nylon sutures Ethicon 668G
8-0 microsurgery nylon sutures Ethicon 2808G
Lab-Line histology slide warmer Barnstead International 26025
Name Company Catalog Number Comments
Cytospin method
Collagenase Type I, lyophilized Life Technologies  1700-017
Bovine Serum Albumin Cell Signaling Technologies 9998S
1X PBS Thermo Fisher 10010-023
Cytology funnels Fisher HealthCare 10-354
HistoBond+ microscope slides VWR 16005-110
Cytospin 2 centrifuge Shandon SH-CYTO2
Name Company Catalog Number Comments
Immunocytochemistry
Slide staining tray with black lid IHC World M920-2
Click-iT Plus EdU Imaging Kit Life Technologies  C10639 Includes EdU and  Hoeschst 33342
Immedge hydrophobic barrier pen Vector Laboratories H-4000
ProLong Diamond mounting medium Thermo Fisher P36970
Glass coverslips 24x50mm #1.5
Clear nail polish

References

  1. Lin, T. Biomechanics of tendon inury and repair. J Biomech. 37, 865-877 (2004).
  2. Strickland, J. W. Development of flexor tendon surgery: twenty-five years of progress. J Hand Surg [Am]. 25, 214-235 (2000).
  3. Bunnell, S. Repair of tendons in the fingers and description of two new instruments. Surg Gynecol Obstet. 26, 103-110 (1918).
  4. Aydin, A., et al. Single-stage flexor tendoplasty in the treatment of flexor tendon injuries. Acta Orthop Traumatol Turc. 38, 54-59 (2004).
  5. Gelberman, R. H., Steinberg, D., Amiel, D., Akeson, W. Fibroblast chemotaxis after tendon repair. J Hand Surg Am. 16, 686-693 (1991).
  6. Lundborg, G., Rank, F. Experimental intrinsic healing of flexor tendons based upon synovial fluid nutrition. J Hand Surg Am. 3, 21-31 (1978).
  7. Aoki, M., Kubota, H., Pruitt, D. L., Manske, P. R. Biomechanical and histologic characteristics of canine flexor tendon repair using early postoperative mobilization. J Hand Surg Am. 22, 107-114 (1997).
  8. Kim, H. M., et al. Technical and biological modifications for enhanced flexor tendon repair. J Hand Surg Am. 35, 1031-1037 (2010).
  9. Aoki, M., Manske, P. R., Pruitt, D. L., Kubota, H., Larson, B. J. Work of flexion after flexor tendon repair according to the placement of sutures. Clin Orthop Relat Res. , 205-210 (1995).
  10. Zhao, C., et al. Award for Outstanding Orthopaedic Research: Engineering flexor tendon repair with lubricant, cells, and cytokines in a canine model. Clin Orthop Relat Res. 472, 2569-2578 (2014).
  11. Wong, J., Bennett, W., Ferguson, M. W., McGrouther, D. A. Microscopic and histological examination of the mouse hindpaw digit and flexor tendon arrangement with 3D reconstruction. J Anat. 209, 533-545 (2006).
  12. Katzel, E. B., et al. Impact of Smad3 loss of function on scarring and adhesion formation during tendon healing. J. Orthop. Res. 29, 684-693 (2011).
  13. Loiselle, A. E., et al. Bone marrow-derived matrix metalloproteinase-9 is associated with fibrous adhesion formation after murine flexor tendon injury. PloS one. 7, e40602 (2012).
  14. Lee, D. J., et al. Parathyroid hormone 1-34 enhances extracellular matrix deposition and organization during flexor tendon repair. J Orthop Res. 33, 17-24 (2015).
  15. Geary, M. B., et al. Systemic EP4 Inhibition Increases Adhesion Formation in a Murine Model of Flexor Tendon Repair. PloS one. 10, e0136351 (2015).
  16. Loiselle, A. E., et al. Development of antisense oligonucleotide (ASO) technology against Tgf-beta signaling to prevent scarring during flexor tendon repair. J Orthop Res. 33, 859-866 (2015).
  17. Orner, C. A., Geary, M. B., Hammert, W. C., O’Keefe, R. J., Loiselle, A. E. Low-dose and short-duration Matrix Metalloproteinase 9 Inhibition does not affect adhesion formation during murine flexor tendon healing. Plast Reconstr Surg. , (2016).
  18. Loiselle, A. E., et al. Remodeling of murine intrasynovial tendon adhesions following injury: MMP and neotendon gene expression. J Orthop Res. 27, 833-840 (2009).
  19. Tsubone, T., et al. Effect of TGF-beta inducible early gene deficiency on flexor tendon healing. J Orthop Res. 24, 569-575 (2006).
  20. Beason, D. P., Kuntz, A. F., Hsu, J. E., Miller, K. S., Soslowsky, L. J. Development and evaluation of multiple tendon injury models in the mouse. J Biomech. 45, 1550-1553 (2012).
  21. David, M. A., et al. Tendon repair is compromised in a high fat diet-induced mouse model of obesity and type 2 diabetes. PloS one. 9, e91234 (2014).
  22. Wong, J. K., et al. The cellular biology of flexor tendon adhesion formation: an old problem in a new paradigm. Am J Pathol. 175, 1938-1951 (2009).
check_url/kr/54433?article_type=t

Play Video

Cite This Article
Ackerman, J. E., Loiselle, A. E. Murine Flexor Tendon Injury and Repair Surgery. J. Vis. Exp. (115), e54433, doi:10.3791/54433 (2016).

View Video