Summary

Los métodos para el aislamiento, cultivo y caracterización funcional de los miocitos del nodo sinusal ratones adultos

Published: October 23, 2016
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Summary

Métodos se demuestran para el aislamiento de miocitos nódulo sinoauricular (SAMs) de ratones adultos para estudios de electrofisiología de pinzamiento zonal o de formación de imágenes. Las células aisladas se pueden utilizar directamente o se pueden mantener en cultivo para permitir la expresión de proteínas de interés, tales como la prensa codificados genéticamente.

Abstract

miocitos nodo sinusal (SAMs) actúan como los marcapasos naturales del corazón, iniciando cada latido del corazón mediante la generación de potenciales de acción espontáneos (APs). Estos puntos de acceso de marcapasos reflejan la actividad coordinada de numerosas corrientes de membrana y el ciclo de calcio intracelular. Sin embargo, los mecanismos precisos que impulsan la actividad de marcapasos espontánea en SAMs siendo difícil de alcanzar. Aguda SAMs aisladas son una preparación esencial para experimentos para diseccionar la base molecular de marcapasos cardíaco. Sin embargo, la anatomía indistinto, microdisección compleja, y las condiciones de digestión enzimática meticulosos han impedido el uso generalizado de forma aguda aislada SAM. Además, los métodos no estaban disponibles hasta hace poco para permitir el cultivo a largo plazo de las SAM para estudios de expresión de proteínas. Aquí nos proporcionan una demostración de protocolo y de vídeo paso a paso para el aislamiento de las SAM de ratones adultos. Un método también se demuestra para el mantenimiento de ratón adulto SAMs in vitro y para expressien de proteínas exógenas a través de la infección adenoviral. Aguda aislados y SAMs cultivadas preparadas mediante estos métodos son adecuados para una variedad de estudios electrofisiológicos y de formación de imágenes.

Introduction

miocitos marcapasos en el nodo sinusal del corazón (miocitos sinoauricular, "SAM") generan, los potenciales de acción espontáneos rítmicos (APs) que se propagan a través del miocardio para iniciar cada latido del corazón. Los experimentos utilizando SAMs aisladas de forma aguda a partir de muchas especies han sido esenciales para el esclarecimiento de los mecanismos que contribuyen a la generación de actividad marcapasos. SAM son cardiomiocitos altamente especializadas que difieren sustancialmente de sus contrapartes en el miocardio auricular y ventricular en términos de morfología, función y expresión de la proteína. El sello distintivo de los puntos de acceso espontáneas en SAMs es una despolarización espontánea durante la diástole que impulsa el potencial de membrana de umbral para activar la siguiente AP 1,2. Este "potencial marcapasos" depende de la actividad coordinada de muchos diferentes corrientes de membrana incluyendo la "divertida actual" (I f), T y de tipo L corrientes de calcio, y el curr intercambiador de sodio-calcioent (I NCX), que es impulsada por la liberación de Ca2 + desde el retículo sarcoplásmico 3,4.

Si bien de forma aguda aislado ratón SAMs son una preparación experimental esencial para el estudio de marcapasos, el aislamiento de SAMs de ratones puede ser un método difícil de adoptar porque la anatomía indistinta y el pequeño tamaño del ratón SAN requiere una microdisección matizada y la enzimática combinada y mecánico la disociación de las células requiere una cuidadosa optimización.

Proporcionamos aquí una demostración de vídeo detallada de un protocolo que ha sido utilizado con éxito para aislar SAMs de ratones adultos para las grabaciones de patch clamp 5-8. Hasta donde sabemos, no existe tal demostración visual disponible de cualquier otra fuente. Además, un nuevo método se demuestra en las que los aislados SAMs de ratones adultos se pueden mantener in vitro durante varios días, lo que permite la introducción de proteínas, codificados genéticamenteLas moléculas indicadoras o ARNi a través de la infección por adenovirus 9.

Protocol

Todos los procedimientos con animales se realizaron de acuerdo con los protocolos aprobados por el Cuidado y Uso de Animales Institucional de la Universidad de Colorado Anschutz Medical Campus. El protocolo estándar por debajo se ha optimizado el uso de macho C57BL / 6J de 2-3 meses de edad. 1. Preparar existencias y suministros de soluciones en anticipación de Experimentos NOTA: Consulte la Tabla materiales para el equipo y los …

Representative Results

Los protocolos descritos aquí se han empleado anteriormente para aislar SAMs espontáneamente activo a partir de ratones adultos que son adecuados para una variedad de estudios de fijación diferente de parche 5-8. Además, los protocolos permiten SAMs aislados que se pueden mantener en cultivo durante hasta una semana. La transferencia de genes en las células cultivadas se puede lograr a través de la infección adenoviral 9. Los resultados presentados en esta se…

Discussion

Este artículo presenta los protocolos detallados para el aislamiento y cultivo de miocitos completamente diferenciadas nodo sinusal a partir de ratones adultos. El protocolo de aislamiento produce de forma fiable SAMs espontáneamente activas de ratón adecuados, ya sea para el análisis electrofisiológico inmediata o posterior cultivo. Protocolos similares han sido reportados por muchos otros grupos (por ejemplo, véanse las referencias 11,12,10,13-17). Sin embargo, nuestro protocolo para el mantenimiento …

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

We thank Dr. Christian Rickert for critical reading of the manuscript. This work was supported by a grant from the National Heart Lung and Blood Institute (R01-HL088427) to CP. EJS was supported by 5T32-AG000279 from the National Institute on Aging. The content is solely the responsibility of the authors and does not necessarily represent the official views of the National Institutes of Health.

Materials

Sylgruard/Elastomer Kit Dow Corning 184 SIL ELAST KIT 0.5KG
Borosilicate 9" pasteur pipettes Fisher Scientific 13-678-20C
Small, round bottomed culture tubes Fisher Scientific 352059
Large, round bottomed culture tubes Corning 14-959-11B
Elastase Worthington Biochemical LS002279
Liberase TM Roche 5401119001  Tissue dissociation solution
Heparin SAGENT Pharmaceuticals  NDC 25021-400-10
Mouse Laminin Corning CB-354232
12 mm round glass coverslips Fisher  12-545-80
24-well culture plate Fisher 08-772-1
Ad-mCherry Vector Biolabs 1767
Ad-eGFP Vector Biolabs 1060
Plastic, disposable transfer pipette Fisher Scientific
Micro scissors Fisher Scientific 17-467-496
Dumont #4 Forceps Roboz Instruments RS-4904
Tissue Forceps Roboz Instruments RS-8164
Dissecting Iris Scissors WPI, Inc. 501264
Dissecting Pins Fine Science Tools 26002-20
NaCl Sigma 71376
KCl Sigma 60128
KH2PO4 Sigma 60353
HEPES Sigma 54457
glucose Sigma G0350500
MgCl2 Sigma M8266
CaCl2 Sigma C1016
taurine Sigma T0625
BSA Sigma A2153
K-glutamate Sigma G1501
K-aspartate Sigma A6558
MgSO4 Sigma M7506
creatine Sigma C0780
EGTA Sigma E3889
Mg-ATP Sigma A9187
Amphotericin-B Fisher Scientific 1397-89-3
Isoproterenol Calbiochem 420355
Media199 Sigma M4530
2,3-butanedione monoxime (BDM) Sigma B0753
Fetal Bovine Serum (FBS) Sigma SH30071
Bovine Serum Albumin (BSA) Sigma A5611
Insulin   Sigma I3146
Transferrin Sigma I3146
Selenium Sigma I3146
Penicillin GE Healthcare SV30010
Streptomycin Hyclone SV30010

References

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Sharpe, E. J., St. Clair, J. R., Proenza, C. Methods for the Isolation, Culture, and Functional Characterization of Sinoatrial Node Myocytes from Adult Mice. J. Vis. Exp. (116), e54555, doi:10.3791/54555 (2016).

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