Summary

Métodos para o isolamento, Cultura e caracterização funcional de SINOATRIAL Nó miócitos de ratos adultos

Published: October 23, 2016
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Summary

Métodos são demonstradas para o isolamento de miócitos do nó sinoatrial (SAM) a partir de ratinhos adultos por patch-clamp electrofisiologia ou imagiologia estudos. As células isoladas podem ser utilizadas directamente ou podem ser mantidas em cultura que permita a expressão de proteínas de interesse, tais como repórteres geneticamente codificados.

Abstract

miócitos nó sinusal (SAMs) atuam como os pacemakers naturais do coração, iniciando cada coração bater através da geração de potenciais de ação espontâneos (APs). Estes APs marcapasso refletem a atividade coordenada de numerosas correntes de membrana e ciclismo de cálcio intracelular. No entanto, os mecanismos precisos que impulsionam a atividade pacemaker espontânea em SAMs ainda imperceptíveis. Agudamente SAMs isolados são uma preparação essencial para experimentos para dissecar a base molecular da pacemaking cardíaca. No entanto, a anatomia indistinta, microdissection complexa, e as condições de digestão enzimática mimado ter evitado o uso difundido de forma aguda isolada SAMs. Além disso, os métodos não estavam disponíveis até recentemente para permitir a cultura de longo prazo de SAM para estudos de expressão proteica. Aqui nós fornecemos um passo-a-passo do protocolo e demonstração de vídeo para o isolamento de SAM a partir de ratinhos adultos. Um método também é demonstrada pela manutenção do rato adulto SAM in vitro e para Expressino de proteínas exógenas via infecção por adenovírus. Agudamente isolados e cultivados SAM preparados através destes métodos são adequados para uma variedade de estudos electrofisiológicos e de imagem.

Introduction

miócitos marcapasso no nó sinusal do coração (miócitos sinoatrial, "SAMs") geram, potenciais espontâneos rítmicas ação (APs) que se propagam através do miocárdio para iniciar a cada batimento cardíaco. Experiências utilizando SAM agudamente isolados a partir de muitas espécies têm sido essenciais para a elucidação dos mecanismos que contribuem para a geração da actividade de pacemaker. SAMs são cardiomiócitos altamente especializados que diferem substancialmente dos seus homólogos na atrial e ventricular miocárdio em termos de morfologia, função e expressão da proteína. A marca da APs espontâneos em SAMs é uma despolarização espontânea durante a diástole que impulsiona o potencial de membrana até o limiar para acionar o próximo AP 1,2. Este "potencial pacemaker" depende da actividade coordenada de muitas correntes diferentes de membrana, incluindo o "engraçado corrente" (I), F e G-T- tipo correntes de cálcio, e o permutador de sódio-cálcio CurrEnt (I NCX), que é accionado por libertação de Ca2 + a partir do retículo sarcoplasmático 3,4.

Enquanto intensamente isolado rato SAMs são uma preparação experimental essencial para o estudo da pacemaking, o isolamento de SAMs de camundongos pode ser um método desafiador para adotar, porque a anatomia indistinta e pequeno tamanho do SAN do mouse requer um microdissection diferenciada ea enzimática combinados e mecânica dissociação das células requer optimização cuidada.

Apresentamos aqui uma demonstração de vídeo detalhada de um protocolo que foi usado com sucesso para isolar SAM a partir de murganhos adultos por gravações patch clamp 5-8. Para nosso conhecimento, não existe tal demonstração visual disponível a partir de qualquer outra fonte. Além disso, um novo método é demonstrado em que SAM isolado a partir de ratinhos adultos podem ser mantidas in vitro durante vários dias, permitindo assim a introdução de proteínas, codificado geneticamentemoléculas repórter ou ARNi via infecção adenoviral 9.

Protocol

Todos os procedimentos com animais foram realizados de acordo com protocolos aprovados pelo Comitê de Cuidado e Uso Institucional Animal da Universidade do Colorado Anschutz Medical Campus. O protocolo padrão abaixo foi optimizada usando macho C57BL 6J / de 2-3 meses de idade. 1. Prepare Stocks e Suprimentos Solução em adiantado de Experimentos NOTA: Consulte a Tabela de Materiais para equipamentos e materiais necessários. Prepare…

Representative Results

Os protocolos descritos aqui foram anteriormente empregues para isolar SAM espontaneamente activa a partir de ratinhos adultos que são adequadas para uma variedade de diferentes estudos de patch braçadeira 5-8. Além disso, os protocolos para permitir SAM isoladas que podem ser mantidas em cultura durante até uma semana. A transferência de genes para as células em cultura pode ser realizada através de infecção adenoviral 9. Os resultados apresentados nesta s…

Discussion

Este artigo apresenta protocolos detalhados para o isolamento e cultura de totalmente diferenciadas miócitos nó sinusal de ratos adultos. O protocolo de isolamento produz de forma confiável SAMs rato espontaneamente activos adequados para qualquer análise eletrofisiológica imediato ou cultura subsequente. Protocolos semelhantes foram relatados por muitos outros grupos (por exemplo, ver referências 11,12,10,13-17). No entanto, o nosso protocolo para a manutenção do rato adulto in vitro SAM pre…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

We thank Dr. Christian Rickert for critical reading of the manuscript. This work was supported by a grant from the National Heart Lung and Blood Institute (R01-HL088427) to CP. EJS was supported by 5T32-AG000279 from the National Institute on Aging. The content is solely the responsibility of the authors and does not necessarily represent the official views of the National Institutes of Health.

Materials

Sylgruard/Elastomer Kit Dow Corning 184 SIL ELAST KIT 0.5KG
Borosilicate 9" pasteur pipettes Fisher Scientific 13-678-20C
Small, round bottomed culture tubes Fisher Scientific 352059
Large, round bottomed culture tubes Corning 14-959-11B
Elastase Worthington Biochemical LS002279
Liberase TM Roche 5401119001  Tissue dissociation solution
Heparin SAGENT Pharmaceuticals  NDC 25021-400-10
Mouse Laminin Corning CB-354232
12 mm round glass coverslips Fisher  12-545-80
24-well culture plate Fisher 08-772-1
Ad-mCherry Vector Biolabs 1767
Ad-eGFP Vector Biolabs 1060
Plastic, disposable transfer pipette Fisher Scientific
Micro scissors Fisher Scientific 17-467-496
Dumont #4 Forceps Roboz Instruments RS-4904
Tissue Forceps Roboz Instruments RS-8164
Dissecting Iris Scissors WPI, Inc. 501264
Dissecting Pins Fine Science Tools 26002-20
NaCl Sigma 71376
KCl Sigma 60128
KH2PO4 Sigma 60353
HEPES Sigma 54457
glucose Sigma G0350500
MgCl2 Sigma M8266
CaCl2 Sigma C1016
taurine Sigma T0625
BSA Sigma A2153
K-glutamate Sigma G1501
K-aspartate Sigma A6558
MgSO4 Sigma M7506
creatine Sigma C0780
EGTA Sigma E3889
Mg-ATP Sigma A9187
Amphotericin-B Fisher Scientific 1397-89-3
Isoproterenol Calbiochem 420355
Media199 Sigma M4530
2,3-butanedione monoxime (BDM) Sigma B0753
Fetal Bovine Serum (FBS) Sigma SH30071
Bovine Serum Albumin (BSA) Sigma A5611
Insulin   Sigma I3146
Transferrin Sigma I3146
Selenium Sigma I3146
Penicillin GE Healthcare SV30010
Streptomycin Hyclone SV30010

References

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Sharpe, E. J., St. Clair, J. R., Proenza, C. Methods for the Isolation, Culture, and Functional Characterization of Sinoatrial Node Myocytes from Adult Mice. J. Vis. Exp. (116), e54555, doi:10.3791/54555 (2016).

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