여기에서는 임피던스 세포 분광법을 사용하는 혈액-뇌 장벽의 체외 쥐 모델을 설명하며, 활성화된 T 세포와의 상호 작용 시 내피 세포 무결성 및 투과성에 미치는 영향에 중점을 둡니다.
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여기에서는 임피던스 세포 분광법을 사용하는 혈액-뇌 장벽의 체외 쥐 모델을 설명하며, 활성화된 T 세포와의 상호 작용 시 내피 세포 무결성 및 투과성에 미치는 영향에 중점을 둡니다.
혈뇌장벽(BBB)의 파괴는 다발성 경화증(MS)과 같은 자가면역 질환 및 동물 모델 실험적 자가면역 뇌척수염(EAE)의 발병에 중요한 단계입니다. 이 과정은 BBB의 주요 구성 요소인 뇌 내피 세포(EC)를 가로질러 활성화된 T 세포의 전이가 특징이다. 그러나 이러한 T 세포와의 상호 작용에 대한 뇌 EC 기능에 미치는 영향은 대체로 알려져 있지 않습니다. 여기에서는 시간 경과에 따른 T 세포와의 상호 작용 중 일차 마우스 뇌 미세혈관 EC(MBMEC) 기능 및 장벽 무결성을 평가할 수 있는 분석에 대해 설명합니다. 이 분석은 경내피 전기 저항(TEER) 및 세포층 커패시턴스(Ccl)의 변화를 측정하여 EC 단층 무결성 및 투과성을 연구하기 위한 강력한 도구인 임피던스 세포 분광법을 사용합니다. EC와 직접 접촉하면 자극을 받았지만 미숙하지 않은 T 세포는 TEER의 감소와 Ccl의 증가로 시각화된 바와 같이 EC 단층 기능 장애를 유발할 수 있습니다. 이 분석은 지속적이고 자동화된 방식으로 EC 단층 무결성의 변화를 기록합니다. 이 단백질은 다양한 자극의 강도와 T 세포 활성화 수준을 구별할 수 있을 만큼 민감하며, 항체, 약리학적 시약 및 사이토카인과 같은 광범위한 물질을 사용하여 T 세포-EC 상호 작용의 표적 조절의 결과를 조사할 수 있습니다. 이 기술은 또한 in vitro T 세포 transmigration 분석에서 EC 무결성에 대한 품질 관리로 사용할 수 있습니다. 이러한 응용 프로그램은 생리학적 및 병태생리학적 조건에서 BBB 특성을 연구하기 위한 다목적 도구입니다.
3 - 혈액 - 뇌 장벽은 중추 신경계 (CNS) 1 전신 순환을 분리한다. 그것은 세포의 자유 운동과 수용성 분자의 확산을 억제하고 병원체 및 잠재적 유해 물질로부터 뇌를 보호하는 물리적 장벽을 제공한다. 그 장벽 기능에 더하여, BBB는 신경 조직의 적절한 작동을 보장 뇌 실질 조직에 산소와 영양분의 전달을 가능하게한다. BBB를의 기능적 특성은 높은 고도로 전문화되는 EC는 주요 구조 부재 인 상태의 세포 및 무 세포 구성 요소에 의해 조절된다. BBB를되는 EC의 꽉 접합 (TJ) 착체, fenestrations의 부족 pinocytic 매우 낮은 활성 및 완전히 활성 전송 메커니즘의 존재를 특징으로한다. 내피 세포, 성상 세포 엔드 피트 = 관련된 파를 포함 기타 BBB의 구성 요소 EC 기저막, 혈관 주위 세포enchymal 기저막 또한 BBB 2,4의 개발, 유지 보수 및 기능에 기여 - (6)과 함께 뉴런과 마이크로 글 리아와 상기 CNS (7)의 적절한 기능을 가능하게하는 뇌 혈관 부 (NVU) 형성 - 9.
이러한 신경 변성, 염증 또는 감염 질환....
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동물 보호를위한 독일 가이드 라인에 따라 모든 실험에서, 쥐 사육하고 뮌스터 대학의 중앙 동물 시설에서 특정 병원균이없는 조건에서 유지했다. 모든 실험은 동물 실험 윤리위원회의 지침에 따라 수행 노르 트라 인베스트 팔렌, 독일 (LANUV, AZ 84-02.05.20.12.217)의 지방 당국에 의해 승인되었다.
1. MBMEC 분리 및 문화
참고 : 이전에 다음과 같이 수정하여 상세 (14)에 설명 된대로 MBMECs을 분리 :
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도 1은 T 세포와 내피 세포 간의 상호 작용을 연구하는데 사용되는 시험 관내 BBB 모델의 일반적인 개요를 제공한다. 실험은 세 가지 주요 단계로 구성됩니다. 첫 번째 단계는 뇌 피질에서 기본 MBMECs 단리하고, 5 일 동안 문화이다. 이들이 세포 배양 접시에서 컨 플루 언스에 도달하면 MBMECs는 트립신 처리하고 티이 구에 배치 투과성 인서트로 시드된다. 봉사자와 MBMECs의 CCL은 연속적으로 측정하고 3 ~ 5 일의 기간 동안 모니터링됩니다. 한편, T 세포는 고립 자극 (2 단계), 그리고 2 ~ 5 일, 종류와 자극의 강도 배양. 단계 3에서, T 세포에 첨가하고, CCL 안정된 로우 레벨이고 티이이 최대 레벨 일 때 MBMECs 함께 공동 - 배양 하였다. 봉사자가 고원에서 아직 공동 문화에 대해이 시점을 선택하는 것은 성공을 위해 매우 중요하다전체 측정. 그 T 세포는 ECS에 그들의 첨가시 활성화하여.......
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기술 된 프로토콜의 여러 단계를 성공적으로 실험에 필수적이다. 초기 MBMEC 분리 및 배양 동안, 작업 진균 포자 또는 세균 세포 배양의 오염을 방지하기 위해, 가능한 멸균 조건 하에서 수행하는 것이 중요하다. 내장 컴퓨터의 순수 배양을 얻기 위해서는이되는 EC 생존 가능 제 사흘 퓨로 마이신을 함유하는 배지가 아닌 다른 세포 유형 (특히 혈관 주위 세포) (41, 42)을 사용하도록 권장한다. 특별한주의 가치 다른 중요한 단계는 사전 - 활성화 된 T 세포를 추가하는 정확한 시점을 식별한다. 봉사자 측정 MBMECs의 첫 48 시간 동안 투과 삽입에 증식과 서로 간의 간격을 닫습니다. 안정된 낮은 수준 (약 0.6 μF / cm 2)에 도달 할 때까지 따라서, CCL은 감소한다. 이 합류 EC 단층의 첫 징후이지만, 아직 단단한 장벽의 상징이 아니다. 후에 만CCL을은 봉사자가 증가하기 시작 않는 안정적인 수준에 도달했습니다. TJ 착체가 완전히 형성되고 EC 배리어가 완전히 밀폐되면.......
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I. Kuzmanov, A. M. Herrmann, S.G. Meuth, H. Wiendl 및 L. Klotz는 공개할 것이 없습니다. H.-J. Galla는 자동 세포 모니터 제조업체인 nanoAnalytics GmbH의 과학 고문입니다.
우리는 봉사자 측정에 관한 도움이 토론 아니카 Engbers과 우수한 기술 지원을위한 프랭크 커스 박사 마르쿠스 SCHAFER (nanoAnalytics GmbH의)에 감사하고 있습니다. 이 작품은, HW 및 LK, CRC TR128에 SFB1009 프로젝트 A03는 A08 돌출 독일 연구 협회 (DFG)에 의해 지원되었다; Z1 및 B01는 LK 및 LK에 HW 및 (뮌스터의 의료 학부) 임상 연구를위한 학제 간 센터 허가 번호 KL2 / 14분의 2,015합니다.
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| 이름 | 회사 | 카탈로그 번호 | 댓글 |
|---|---|---|---|
| cellZscope | nanoAnalytics GmbH | www.nanoanalytics.com | 포함: 24웰 셀 모듈, 컨트롤러, cellZscope 소프트웨어 v2.2.2가 설치된 PC |
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| 유세포 분석기 | Beckman Coulter | www.beckmancoulter.com | T 세포 전이 분석을 위한 |
| FlowJoJo7.6.5 소프트웨어 | Tree Star | www.flowjo.com | T 세포 형질전환 분석을 위한 |
| Oak Ridge 원심분리기 튜브, PC | Thermo Fisher Scientific | 3118-0050 | 50 ml; MBMEC 절연용 |
| Transwell 멤브레인 인서트 - 기공 크기 0.4 &마이크로; m | Corning | 3470 | TEER 측정을 위한 주요 판독 Transwell |
| 멤브레인 인서트 - 기공 크기 3 &마이크로; M | Corning | 3472 | 는 T 세포 전이 분석 전 품질 관리로 TEER 측정을 수행하며, |
| 24웰 세포 배양 플레이트 | Greiner | 650 180 | flat-bottom; MBMEC 배양 |
| 96웰 세포 배양 플레이트 | Costar | 3526 | round-bottom; 면역 세포 배양용 |
| QuadroMACS Separator | Miltenyi Biotec | 130-090-976 | T 세포 및 B 세포 분리용; 지지대 MACS LS 컬럼 |
| OctoMACS Separator | Miltenyi Biotec | 130-042-109 | 수지상 세포 분리;세포 계수를 위한 MACS MS 컬럼 |
| Neubauer 계수 챔버 | Marienfeld | MF-0640010 | |
| 세포 스트레이너, 70 µ m | 면역 세포 분리를 위한 | Corning | 352350 |
| 세포 스트레이너, 40 &마이크로; 면역 | 세포 분리를 위한 | m Corning | 352340 |
| MACS MultiStand | Miltenyi Biotec | 130-042-303 | 면역 세포 격리를 위한 |
| MACS LS 분리 컬럼 | 세포 및 B 세포 분리를 위한 | Miltenyi Biotec | 130-042-401 |
| MACS MS 분리 컬럼 | 세포 분리를 위한 | Miltenyi Biotec | 130-042-201 |
| 마우스 CD4 MicroBeads | Miltenyi Biotec | 130-049-201 | CD4+ T 세포 격리 |
| 마우스 CD19 MicroBeads | Miltenyi Biotec | 130-052-201 | B 세포 분리 |
| 마우스 CD11c MicroBeads | Miltenyi Biotec | 130-052-001 | 수지상 세포 분리 |
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| Fibronectin 소 플라즈마 | Sigma | F1141-5MG | MBMEC 코팅 용액 |
| Collagenase 2 (CSL2) | Worthington | LS004176 | MBMEC 격리 |
| Collagenase/Dispase (C/D) | Roche | 11097113001 | MBMEC 절연 |
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| Fetal bovine Serum (FBS) | Sigma | F7524 | MBMEC 절연 |
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| DMEM (+ GlutaMAX) | MBMEC 분리 및 MBMEC 배양 배지용 | Gibco | 31966-021 |
| 페니실린/스트렙토마이신 | 시그마 | P4333 | MBMEC 분리 및 MBMEC 배양 배지 |
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| 0.05% Trypsin-EDTA | Gibco | 25300-054 | MBMEC 수확용 |
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| Trypan Blue 용액, 세포 계수용 0.4% | Thermo Fisher Scientific | 15250061 | |
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| T 세포 배양 배지 X-VIVO용 | 1% L-글루타민 | Gibco | 21980-032 |
| 15 | Lonza | BE04-418Q | 빛으로부터 보호합니다; B 세포 배양 매체 |
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| 정제된 안티 마우스 CD3 Ab | BioLegend | 100302 | 클론 145-2C11; 다클론 T 세포 활성화를 위해 |
| 정제된 NA/LE 안티 마우스 CD28 Ab | BD Pharmingen | 553294 | 클론 37.51; 다클론 T 세포 활성화를 위해 |
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| ; | T-세포 전이분석 | PeproTech | 315-01A |
| ; 항체 | BD Biosciences | 554408 | 클론 XMG1.2; 권장 최종 농도: 20 &마이크로; g/ml |
| Granzyme B 억제제 II | Calbiochem | 368055 | 권장 최종 농도: 10 &마이크로; M |
| PE 안티 마우스 CD4 항체 | Biolegend | 116005 | 클론 RM4-4; T 세포 형질전환 분석용 |
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