Summary

जंगली प्रकार अवरुद्ध पीसीआर कम आवृत्ति दैहिक उत्परिवर्तन का पता लगाने के लिए एक अति संवेदनशील विधि के रूप में प्रत्यक्ष अनुक्रमण के साथ संयुक्त

Published: March 29, 2017
doi:

Summary

Wild-type blocking PCR followed by direct sequencing offers a highly sensitive method of detection for low frequency somatic mutations in a variety of sample types.

Abstract

सटीक पता लगाने और कम आवृत्ति म्यूटेशन की पहचान समस्याग्रस्त जब उपचार के बाद अवशिष्ट रोग का आकलन करने, उपचार के दौरान प्रतिरोध उत्परिवर्तन उभरते के लिए स्क्रीनिंग हो सकता है, या रोगियों कुछ घूम ट्यूमर कोशिकाओं है जब। जंगली प्रकार अवरुद्ध पीसीआर अनुक्रमण विश्लेषण के बाद इन कम आवृत्ति म्यूटेशन का पता लगाने के लिए एक पद्धति के रूप में उच्च संवेदनशीलता, लचीलापन, और सरलता प्रदान करता है। एक कस्टम एक नया या पहले से स्थापित पारंपरिक पीसीआर आधारित अनुक्रमण परख करने के लिए न्यूक्लिक एसिड oligonucleotide बंद कर दिया तैयार किया गया जोड़कर, 1000 WT जेनेटिक तत्व की पृष्ठभूमि में लगभग 1 उत्परिवर्ती एलील की संवेदनशीलता प्राप्त किया जा सकता (1: 1,000)। अनुक्रमण deamination घटनाओं के साथ जुड़े कलाकृतियों सामान्यतः formalin तय आयल एम्बेडेड ऊतकों में पाया आंशिक रूप से निकासी चरणों के दौरान uracil डीएनए glycosylase के उपयोग के द्वारा ठीक किया जा सकता है। अनुकूलित प्रोटोकॉल यहाँ MYD88 उत्परिवर्तन का पता लगाने के लिए विशिष्ट है, लेकिन किसी भी डिजाइन करने के लिए एक टेम्पलेट के रूप में सेवा कर सकतेWTB पीसीआर परख। एलील विशिष्ट पीसीआर और वास्तविक समय मात्रात्मक पीसीआर झूठे सकारात्मक के कम पाया जाना, अधिक लचीलापन और कार्यान्वयन में आसानी शामिल सहित कम आवृत्ति परिवर्तन के पता लगाने के लिए अन्य सामान्य रूप से उपयोग किया assays से अधिक WTB पीसीआर परख के लाभ, और दोनों ज्ञात पता लगाने की क्षमता और अज्ञात म्यूटेशन।

Introduction

सेंगर अनुक्रमण पारंपरिक रूप से दोनों ज्ञात और अज्ञात दैहिक उत्परिवर्तन के लिए परीक्षण में स्वर्ण मानक किया गया है। सेंगर अनुक्रमण की सीमाओं में से एक का पता लगाने की अपनी सीमा है (~ 10 – WT की पृष्ठभूमि में 20% उत्परिवर्ती युग्मजीविकल्पी) 1। संवेदनशीलता का यह स्तर निम्न स्तर दैहिक उत्परिवर्तन कि कुछ घूम ट्यूमर कोशिकाओं, या जब अस्थि मज्जा (बीएम) विचित्र है साथ premalignant ऊतकों या रोगियों से नमूनों में मौजूद हो सकता है पता लगाने के लिए अनुचित है। यह भी उपचार के बाद अवशिष्ट रोग का आकलन करने या अकेले 2 पारंपरिक अनुक्रमण द्वारा कठिन उपचार के दौरान विकसित प्रतिरोधक क्षमता के म्यूटेशन का पता लगाने में आता है। बंद न्यूक्लिक एसिड (LNA) के साथ पारंपरिक पीसीआर बदलकर जंगली प्रकार सेंगर अनुक्रमण में पीसीआर (WTB पीसीआर) को अवरुद्ध मध्यस्थता, WT की पृष्ठभूमि में अप करने के लिए 0.1% उत्परिवर्ती एलील की संवेदनशीलता 2, 3, 4 प्राप्त किया जा सकता। में(- 14 NT ~ 10) को अवरुद्ध (LNA) oligonucleotide कि WT डीएनए के WT डीएनए जिससे रोकने प्रवर्धन के लिए प्राथमिक रूप से बांधता है WTB पीसीआर, उत्परिवर्ती युग्मविकल्पी के लिए संवर्धन एक छोटी के अलावा के माध्यम से हासिल की है। उत्परिवर्ती समृद्ध WTB पीसीआर उत्पाद तो अनुक्रम जा सकता है। WT डीएनए को अवरुद्ध करने के बजाय विशिष्ट म्यूटेशन के लिए चयन करके WTB पीसीआर मिनट सेल अंशों में मौजूद दोनों ज्ञात और अज्ञात म्यूटेशन के संवर्धन के लिए अनुमति देता है।

एकाधिक तरीकों वर्तमान में छोटे कोशिकाओं अंशों में परिवर्तन का पता लगाने के लिए किया जाता है। इस एलील विशिष्ट पीसीआर, प्रवर्धन-दुर्दम्य उत्परिवर्तन प्रणाली (हाथों), उच्च प्रदर्शन तरल क्रोमैटोग्राफी (DHPLC), मोती, इमल्शन, प्रवर्धन, और आकर्षणविद्या (प्रसारित), बिजली के क्षेत्र प्रेरित जारी है और माप (EFIRM) denaturing, उच्च संकल्प भी शामिल है गलनांक और अन्य। हालांकि, इन तरीकों में से सबसे झूठी सकारात्मक और केवल एक ही उत्परिवर्तन कि परख 4 के लिए डिजाइन किया गया था पता लगाने की क्षमता द्वारा सीमित हैं </sup>। WTB पीसीआर, तथापि, अनुक्रमण निशान है जो कई उत्परिवर्तन प्रकार का पता लगाने के लिए सक्षम बनाता है और कलाकृतियों या deamination घटनाओं के कारण झूठे सकारात्मक को खारिज करने में सहायता कर सकते हैं कल्पना करने के लिए अनुमति देता है। अगली पीढ़ी के अनुक्रमण (NGS) पारंपरिक अनुक्रमण के लिए एक उपयुक्त विकल्प की पेशकश कर सकते हैं, हालांकि, काफी हद तक अधिक से अधिक लागत, जटिलता, और लंबे समय तक परख समय यह कुछ अलग आणविक मार्कर के साथ कई रोग प्रकार के लिए या उभरते के लिए चिकित्सा पर रोगियों की निगरानी के लिए एक अनावश्यक विकल्प प्रस्तुत करना प्रतिरोध उत्परिवर्तन। 5% से कम की उत्परिवर्ती युग्मजीविकल्पी आवृत्तियों के साथ इसके अलावा, उच्च मिथ्या सकारात्मक दरों जब पता लगाने वेरिएंट amplicon आधारित NGS 5 के लिए एक समस्या पैदा कर सकते हैं, 6।

यहाँ हम के रूप में Albitar एट अल द्वारा वर्णित माइलॉयड भेदभाव कारक 88 जीन में परिवर्तन के लिए स्क्रीनिंग में WTB पीसीआर द्वारा प्राप्त संवेदनशीलता में वृद्धि का प्रदर्शन। 3 MYD88 mutatioएनएस Waldenström के Macroglobulinemia (WM) अज्ञात महत्व (आईजीएम-MGUS) की, आईजीएम मोनोक्लोनल gammopathy, प्लीहा सीमांत क्षेत्र लिंफोमा (SMZL) में महत्वपूर्ण निदान और शकुन कारकों कर रहे हैं, और बड़े बी कोशिका लिंफोमा (DLBCL) फैलाना। MYD88 म्यूटेशन WM के लगभग सभी मामलों और इम्युनोग्लोबुलिन एम (आईजीएम) MGUS -secreting के साथ रोगियों के लगभग 50% में पाए जाते हैं। इसके विपरित्त MYD88 म्यूटेशन SMZL के साथ रोगियों के केवल 0-6% में पाया जाता है और एकाधिक myeloma 7, 8 में अनुपस्थित रहे हैं कर रहे हैं। क्योंकि ओवरलैपिंग शब्द के भागों, immunophenotypic, सितोगेनिक क, और WM और SMZL या आईजीएम-एकाधिक myeloma अक्सर विभेदक निदान को मुश्किल कर सकते हैं के बीच नैदानिक विशेषताओं, एक MYD88 उत्परिवर्तन की उपस्थिति एक उपयोगी की पहचान कारक 9 के रूप में काम कर सकते हैं। MYD88 म्यूटेशन भी चिकित्सा 7 निम्नलिखित DLBCL और गरीब समग्र अस्तित्व के साथ रोगियों में अधिक से अधिक इस बीमारी के बोझ के साथ संबद्ध किया गया है </sup> 10। इसके अलावा, MYD88 म्यूटेशन अधिक बार सक्रिय बी कोशिका की तरह (एबीसी) से DLBCL में पाए जाते हैं कीटाणु केंद्र बी कोशिका की तरह (GCB) DLBCL या प्राथमिक mediastinal बी कोशिका लिंफोमा (PMBL), MYD88 उत्परिवर्तन स्थिति एक के रूप में सेवा कर सकता है एबीसी उप प्रकार 11, 12 के लिए किराए की मार्कर।

विस्तृत यहाँ प्रदान प्रोटोकॉल एक टेम्पलेट है जहाँ से नई assays विकसित किया जा सकता है या सबसे मौजूदा अनुक्रमण assays आसानी से सही रूप में विभिन्न नमूना प्रकार में कम आवृत्ति म्यूटेशन पता लगाने के लिए अनुकूलित किया जा सकता के रूप में कार्य करता है। दृष्टिकोण भी निगरानी और प्रतिरोधी म्यूटेशन कि ट्यूमर या यहाँ तक कि बैक्टीरिया है कि जब तक रोगियों लक्षित चिकित्सा या एंटीबायोटिक दवाओं के साथ इलाज किया जा रहा है विकास हो सकता है में विकसित हो सकता है पता लगाने के लिए इस्तेमाल किया जा सकता। इसके अलावा, यह संबोधित करते हैं और विशेष रूप से formalin निर्धारित पैराफिन एम्बेडेड (FFPE) ऊतकों में, उत्परिवर्तन संवर्धन के साथ जुड़े कई मुद्दों को उपचार।

Protocol

आचार कथन: मानव नमूनों के सभी परीक्षण संस्थागत समीक्षा बोर्ड (आईआरबी) अनुमोदन प्राप्त करने के बाद किया गया था। 1. FFPE ऊतक से डीएनए निष्कर्षण, परिधीय रक्त, और अस्थि मज्जा महाप्राण डीएनए FFPE निष?…

Representative Results

विस्तार के दौरान WTB पीसीआर की एक वैचारिक सिंहावलोकन चित्र 1 में प्रस्तुत किया है। क्योंकि अवरोधक डीएनए संकर में एक भी न्यूक्लियोटाइड बेमेल बहुत इसके पिघलने का तापमान कम हो जाती है (ΔT <…

Discussion

WTB पीसीआर परख यहाँ वर्णित विस्तार (चित्रा 1) के दौरान WT डीएनए के प्रवर्धन ब्लॉक करने के लिए तैयार किया गया एक अवरुद्ध oligo साथ प्राइमरों की एक सामान्य सेट का उपयोग करता। WTB पीसीआर उत्पाद तो उत्परिवर्त?…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

The authors have no acknowledgements.

Materials

1.5 or 2 ml Safe-Lock microcentrifuge tubes Eppendorf 05-402-25
100% alcohol VWR 89370-084 Histology grade; 91.5% Ethanol, 5% Isopropyl alcohol, 4.5% Methyl alcohol
3730XL sequencer ABI or equivalent
Agencourt AMPure XP Beckman Coulter A63881 For magnetic bead PCR purification
Aluminum sealing foils GeneMate T-2451-1 For PCR and cold storage
BigDye Terminator v3.1 Cycle sequencing kit Life Technologies 4337455 For bi-directional sequencing. With 5X Sequencing Buffer
Centrifuge 5804 Series Eppendorf A-2-DWP rotor (for PCR plate)
Cold plate for 96 well plates Eppendorf Z606634
DNAse, RNAse-free, ultra-pure water
dNTPs (100mM) Invitrogen 10297-117
DynaMag-96 Side-Skirted Magnet Thermo Fisher Scientific 12027 For use in PCR Purification.
Ethanol Absolute  Sigma E7023 200 proof, for molecular biology
Exiqon website Oligo Tools www.exiqon.com/oligo-tools
FastStart Taq DNA polymerase (5 U/ul) Roche 12032937001 With10X concentrated PCR reaction buffer, with 20 mM MgCl2 
Gel electrophoresis apparatus 2% agarose gel
GeneRead DNA FFPE extraction Kit  Qiagen 180134 Contains uracil DNA glycosylase necessary for reducing sequencing artifacts
Hi-Di Formamide ABI 4311320 For sequencing.
LNA oligonucleotide Exiqon 500100 5'-TCAGA+AG+C+G+A+C+T+G+A+T+CC/invdT/ (+N = LNA bases)
M13-F Sequencing Primer ABI 5'-tgt aaa acg acg gcc agt
M13-R Sequencing Primer ABI 5'-cag gaa aca gct atg acc
Mastercycler Pro S Thermocycler Eppendorf E950030020
Microcentrifuge Model 5430 Eppendorf FA-45-30-11 rotor (for 1.5/2 ml microcentrifuge tubes)
NanoDrop 2000 Spectrophotometer Thermo Fisher Scientific
PCR forward primer IDT 5'-tgt aaa acg acg gcc agt TGC CAG GGG TAC TTA GAT GG
PCR reverse primer IDT 5'-cag gaa aca gct atg acc GGT TGG TGT AGT CGC AGA CA
PCR plates GeneMate T-3107-1
Pipettors 20, 200, 1000 µl
Plate septa, 96 well ABI 4315933
QIAamp DNA Mini Kit Qiagen 51304 For BM aspirate and peripheral blood
SeqScape Sortware v3.0 ABI 4474978 For sequencing analysis
Slide basket
Sodium Acetate (3M, pH 5.2)  Sigma S7899
Sterile filtered pipette tips  20, 200, 1000 µl
Thermomixer C  Eppendorf 5382000023
Vortex genie Scientific Industries SI-0236
Wash reservoir ~1000 ml
Xylene VWR 89370-088 Histology grade

References

  1. Vogelstein, B., Kinzler, K. W. Digital PCR. Proc Natl Acad of Sci U S A. 96 (16), 9236-9241 (1999).
  2. Milbury, C. A., Li, J., Makrigiorgos, G. M. PCR-based methods for the enrichment of minority alleles and mutations. Clin Chem. 55 (4), 632-640 (2009).
  3. Albitar, A., Ma, W., DeDios, I., Estella, J., Agersborg, S., Albitar, M. Positive selection and high sensitivity test for MYD88 mutations using locked nucleic acid. Int J Lab Hematol. 38 (2), 133-140 (2016).
  4. Dominguez, P. L., Kolodney, M. S. Wild-type blocking polymerase chain reaction for detection of single nucleotide minority mutations from clinical specimens. Oncogene. 24 (45), 6830-6834 (2005).
  5. Gray, P. N., Dunlop, C. L. M., Elliott, A. M. Not All Next Generation Sequencing Diagnostics are Created Equal: Understanding the Nuances of Solid Tumor Assay Design for Somatic Mutation Detection. Cancers. 7 (3), 1313-1332 (2015).
  6. Smith, E. N., et al. Biased estimates of clonal evolution and subclonal heterogeneity can arise from PCR duplicates in deep sequencing experiments. Genome Biol. 15 (8), 420 (2014).
  7. Varettoni, M., et al. Prevalence and clinical significance of the MYD88 (L265P) somatic mutation in Waldenström’s macroglobulinemia and related lymphoid neoplasms. Blood. 121 (13), 2522-2528 (2013).
  8. Xu, L., et al. MYD88 L265P in Waldenström macroglobulinemia, immunoglobulin M monoclonal gammopathy, and other B-cell lymphoproliferative disorders using conventional and quantitative allele-specific polymerase chain reaction. Blood. 121 (11), 2051-2058 (2013).
  9. Gertz, M. A. Waldenström macroglobulinemia: 2012 update on diagnosis, risk stratification, and management. Amer J Hematol. 87 (5), 503-510 (2012).
  10. Salar, A., et al. MYD88 (L265P) Mutation Confers Very Poor Response and Outcome after Second-Line Therapy in Patients with Diffuse Large B-Cell Lymphoma (DLBCL). Blood. 124 (21), 1690-1690 (2014).
  11. Ngo, V. N., et al. Oncogenically active MYD88 mutations in human lymphoma. Nature. 470 (7332), 115-119 (2011).
  12. Pasqualucci, L., et al. Analysis of the coding genome of diffuse large B-cell lymphoma. Nat Genet. 43 (9), 830-837 (2011).
  13. Dieffenbach, C., Lowe, T., Dveksler, G. General concepts for PCR primer design. PCR Methods Appl. 3 (3), S30-S37 (1993).
  14. Lee, P. Y., Costumbrado, J., Hsu, C. Y., Kim, Y. H. Agarose Gel Electrophoresis for the Separation of DNA Fragments. J Vis Exp. (62), e3923 (2012).
  15. Applied Biosystems. . User Guide for Applied Biosystems 3730/3730xl DNA Analyzer. , (2014).
  16. Applied Biosystems. . User Guide for SeqScape Software 3. , (2012).
  17. Mouritzen, P., Nielsen, A. T., Pfundheller, H. M., Choleva, Y., Kongsbak, L., Møller, S. Single nucleotide polymorphism genotyping using locked nucleic acid (LNA). Expert Rev Mol Diagn. 3 (1), 27-38 (2003).
  18. Quach, N., Goodman, M. F., Shibata, D. In vitro mutation artifacts after formalin fixation and error prone translesion synthesis during PCR. BMC Clin Pathol. 4 (1), (2004).
  19. Gallegos Ruiz, M. I., Floor, K., Rijmen, F., Grünberg, K., Rodriguez, J. A., Giaccone, G. EGFR and K-ras mutation analysis in non-small cell lung cancer: comparison of paraffin embedded versus frozen specimens. Anal Cell Pathol. 29 (3), 257-264 (2007).
  20. Solassol, J., et al. KRAS mutation detection in paired frozen and formalin-fixed paraffin-embedded (FFPE) colorectal cancer tissues. Int J Mol Sci. 12 (5), 3191-3204 (2011).
  21. Yost, S. E., et al. Identification of high-confidence somatic mutations in whole genome sequence of formalin-fixed breast cancer specimens. Nucleic Acids Res. 40 (14), e107-e107 (2012).
  22. Do, H., Wong, S. Q., Li, J., Dobrovic, A. Reducing sequence artifacts in amplicon-based massively parallel sequencing of formalin-fixed paraffin-embedded DNA by enzymatic depletion of uracil-containing templates. Clin Chem. 59 (9), 1376-1383 (2013).
  23. Oldenburg, R. P., Liu, M. S., Kolodney, M. S. Selective amplification of rare mutations using locked nucleic acid oligonucleotides that competitively inhibit primer binding to wild-type DNA. J Invest Dermatol. 128 (2), 398-402 (2008).
  24. Mancini, M., et al. Two novel methods for rapid detection and quantification of DNMT3A R882 mutations in acute myeloid leukemia. J Mol Diagn. 17 (2), 179-184 (2015).
  25. Parsons, B. L., Heflich, R. H. Genotypic selection methods for the direct analysis of point mutations. Mutat Res Rev Muta Res. 387 (2), 97-121 (1997).
  26. Liu, Q., Swiderski, P., Sommer, S. S. Truncated amplification: a method for high-fidelity template-driven nucleic acid amplification. BioTechniques. 33 (1), 129-139 (2002).
  27. Kaur, M., Zhang, Y., Liu, W. H., Tetradis, S., Price, B. D., Makrigiorgos, G. M. Ligation of a primer at a mutation: a method to detect low level mutations in DNA. Mutagenesis. 17 (5), 365-374 (2002).
  28. Albitar, A., et al. High Sensitivity Testing Shows Multiclonal Mutations in Patients with CLL Treated with BTK Inhibitor and Lack of Mutations in Ibrutinib-Naive Patients. Blood. 126 (23), 716 (2015).
check_url/kr/55130?article_type=t

Play Video

Cite This Article
Albitar, A. Z., Ma, W., Albitar, M. Wild-type Blocking PCR Combined with Direct Sequencing as a Highly Sensitive Method for Detection of Low-Frequency Somatic Mutations. J. Vis. Exp. (121), e55130, doi:10.3791/55130 (2017).

View Video