Summary

Kanin modellen af accelereret åreforkalkning: en metodologisk perspektiv iliaca arterie ballon skade

Published: October 03, 2017
doi:

Summary

Dyremodeller for åreforkalkning er vigtigt at forstå mekanismen og undersøge nyere tilgange for at forhindre plak udvikling eller brud, en førende dødsårsag i de industrialiserede verden. Denne protokol bruger en kombination af ballon skade og kolesterol kost til at fremkalde aterosklerotiske plaques i kanin iliaca arterie.

Abstract

Akut koronar syndrom som følge af koronar okklusion efter udvikling af aterosklerotisk plaque og brud er den førende dødsårsag i de industrialiserede verden. New Zealand White (NZW) kaniner er almindeligt anvendt som en dyremodel for studiet af åreforkalkning. De udvikler spontan læsioner når fodret med atherogene kost; Dette kræver imidlertid lang tid på 4-8 måneder. For yderligere at forbedre og fremskynde atherogenesis, er en kombination af atherogene kost og mekaniske endotel skade ofte ansat. Præsenteres proceduren for inducerende aterosklerotiske plaques i kaniner bruger en ballonkateter for at forstyrre endotel i den venstre iliaca arterie i NZW kaniner fodres med atherogene kost. Sådanne mekaniske skader forårsaget af ballonkateter inducerer en kæde af inflammatoriske reaktioner indlede neointimal lipid ophobning i en tid afhænger af mode. Aterosklerotisk plaque efter ballon skade Vis neointimal fortykkelse med omfattende lipid infiltration, høj glat muskel celleindhold og tilstedeværelsen af makrofag afledt skum celler. Denne teknik er enkel, reproducerbare og producerer plak kontrolleret længde i den iliaca arterie. Hele proceduren er afsluttet inden for 20-30 min. Proceduren er sikkert med lav dødelighed og tilbyder også stor succes med at opnå betydelige intima læsioner. Proceduren for ballonkateter induceret arteriel skade resultaterne i åreforkalkning inden for to uger. Denne model kan bruges til at undersøge sygdommen patologi, billeddiagnostik og evaluere nye terapeutiske strategier.

Introduction

Bristning af sårbare aterosklerotiske plaques er en af de førende dødsårsager i den industrialiserede nationer1. Selv om forskning i de seneste årtier har udfoldet adskillige molekylære og cellulære mekanismer involveret i plaque progression, fortsatte indsats er stadig nødvendig ikke kun til at optrævle de komplekse mekanisme for sygdomsprogression, men også at teste nye terapeutiske tilgange. Flere dyremodeller har været foreslået at studere åreforkalkning. Genmanipulation, kolesterol fodring eller mekaniske endotelet skade er de standard strategier deles af de fleste dyremodeller for åreforkalkning herunder mus, kaniner eller minipigs. Blandt disse er NZW kaniner følsomme over for kolesterol kost, mens normale rotter og mus ikke absorberer kolesterol2,3,4betydeligt. Kaniner udvikle spontant aorta læsioner rige i makrofager med nogle fibrøst komponent når fodret med kolesterol kost5,6. Lange forberedende tidspunktet for 4-8 måneder til at fremkalde aterosklerotisk plaquesby fodring kolesterol kost alene6,7 er imidlertid en stor ulempe for de fleste af de eksperimentelle indstillinger. I stræben efter inducerende læsioner i relativt kort tid, er en kombination af høj kolesterol kost og ballon skade blevet udviklet af Baumgarter og Studer8. Det overordnede mål med denne teknik er at fremkalde aterosklerotiske plaques består af skum celler (svarende til fede streak i mennesker) i hypercholesterolemic kaniner inden for 2 uger. Den nuværende teknik beskriver proceduren i arterievæggen skade baseret på Baumgarters metode ved hjælp af en ballonkateter rykkede ind i den iliaca arterie i NZW hypercholesterolemic kaniner.

Sammen med en rig kost, kolesterol, vil skade som følge af ballon induceret nedtrapning endothelialization føre til åreforkalkning. Ballon skade fremskynder dannelsen af aterosklerotiske læsioner, og producerer plak af ensartet størrelse og fordeling. Intima fortykkelse stigninger over en periode af tid og intima celle infiltration starter inden for få dage efter skade. Fede striber med betydelige makrofager begynder at dukke op efter 7-10 dage af ballon skade og er repræsenteret som Type II læsion ifølge klassificeringen af American Heart Association. Ballon skade i kanin er ofte udført i aorta at studere plaque sammensætning. Neointimal endotelet udtrykker høje niveauer af intercellulære vedhæftning molekyle. Plaques er forbundet med mediale dissektion og adventitial ændringer. Aterosklerotiske læsioner er sammensat af lipider, prolifererende glat muskelceller (SMCs), kollagen fibre og inflammatoriske celler, der ophobes under den regenererede endothelium og er for det meste type II i naturen. Den topologiske distribution af kanin plaques var samme som rapporteret i menneskelige aortas 9,10 i princippet, aorta er større i størrelse i forhold til iliaca arterier og ville producere plaque i større længde. Men den største fordel ved hjælp af arteria iliaca som stedet for åreforkalkning i kaniner er dens tilgængelighed, dens lighed i muskuløs indhold til menneskelige koronararterie11, ensartet læsion udvikling12, høj væv faktor aktivitet13 og konsekvent fartøj dimension sammenlignes med menneskelig koronar arterie giver mulighed for vurdering af kommercielt fremstillede udstyr til morfometrisk og Angiografisk slutpunkter. Invasiv og ikke-invasive metoder er blevet undersøgt for at analysere plaques i kanin iliaca arterier i det levende dyr. Tidligere rapporter beskriver brugen af magnetic resonance imaging (MR) med hjælp fra en 2,35-tesla hr. system 14 Derudover, intravaskulær ultralyd (IVUS) eller optisk kohærens tomografi (OCT) katetre kan være behørigt anvendes på billedet aterosklerotiske plaques i kanin iliaca arterier. Den iliaca arterie er tilgængeligt for ultrasound imaging, når du bruger en høj opløsning Ekkografi og aorta kan også udforskes med denne teknik.

I det seneste årti har har denne kanin model af ballon skade bidraget til yderligere for at forstå mekanismerne af plaque progression15og plaque regression16. Derudover modellen har været anvendt til at undersøge indflydelsen af roman terapeutiske agenter som statiner, standard antitrombotiske midler, antioxidant agenter17,18 og stof-eluerer stents såsom everolimus eller zotarolimus-eluerer stent19,20 på neointimal fortykkelse. Denne model har også været brugt til at undersøge intravaskulær billeddannelse af nær-infrarødt fluorescens imaging kateter21.

Protocol

denne eksperimentel protokol er blevet godkendt af den kantonale Veterinærkontoret, Fribourg og den schweiziske føderale Veterinary Office, Schweiz (FR 2015/58). Bemærk: mandlige NZW kaniner vejer mellem 2,8 til 3,2 kg blev brugt. Dyrene har været opstaldet på konventionelle betingelser (12 h lys og mørke cyklus, ad libitum vand og mad). Før ballon denudation, blev dyr akklimatiseret i 1 uge, hvor de blev fodret med normal chow kost. Efter 1 uge med akklimatisering, kaniner blev skift…

Representative Results

Ballon skade af arteria iliaca blev udført uden komplikation (figur 1). Den samlede udløsende tid varierede fra 20 til 30 min for skader udført på kun én iliaca arterie og 35 til 45 min. for skader på begge arterier. Kaninen inddrevet inden for 1 time efter ballon skade. Alle dyr syntes sund uden betydelige vægttab. Der opstod ingen infektion, ødem eller arteriel trombose. Området såret var normal udover nogle milde fibrose på webstedet sutur. Efte…

Discussion

Kanin iliaca arterie åreforkalkning model er almindeligt anvendt i åreforkalkning forskning. Med denne protokol udviklet kaniner hurtigt mere alvorlige og avancerede plaques i forhold til spontan læsioner udviklet med kun kolesterol kost. Vigtigere, inddrive dyr hurtigt fra kirurgi.

De vigtigste stimulus for atherogenesis er den mekaniske skader forårsaget af den ballonkateter, der skader på endothelium og distends fartøj væg26. Denne procedure inducerer en ombyg…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Dette arbejde blev støttet af den schweiziske National Science Foundation Grant 150271.

Materials

New Zealand White rabbits Charles River laboratories,France Cre:KBL(NZW)
Cholesterol rich diet Ssniff spezialdiäten Ssniff EF K High Fat and Cholesterol
Glass bead sterilizer-Germinator 500 VWR, Leicestershire, UK 101326-488
Fogarty balloon embolectomy catheters, 2 French Edwards Lifesciences, Switzerland 120602F For single use only
Luer Lock Syringe Becton, Dickinson and Company, USA 309628
Thermopad Type 226 Solis, Switzerland AG 397387
Buprenorphine- Temgesic Reckitt Benckiser AG, Switzerland 7.68042E+12
Isoflurane Piramal Critical Care, Inc, Bethlehem, PA 18017 2667-46-7
Anaesthesia machine-combi-vet Base Anesthesia System Rothacher Medical GmbH, Switzerland CV 30-301-A
Cardell touch veterinary vital signs monitor Midmark, Ohio, USA 8013-001
Ophthalmic ointment-Humigel Virbac, France
Animal hair clippers Aesculap AG, Germany GT420
Disinfectant-Betadine solution MundipharmaMedicalCompany, Switzerland 14671-1203
Dumont #7 Forceps FST Germany 11274-20
Medium and small microscissors Medline International Switzerland Sàrl UC4337
Microvascular clamps FST, Germany 18051-28
Papaverine ESCA chemicals, Switzerland RE 356 803
Vein Pick Harvard Apparatus, Cambridge, UK 72-4169 For single use only
Saline Laboratorium Dr. G. Bichsel AG, , Switzerland 1330055
Polysorb 5-0 suture Covidien AG, Switzerland UL 202 Monofilament
Sulfadoxine and Trimethoprim-Trimethazol Werner Stricker AG, Switzerland Swissmedic Nr. 50'361
Antiseptic- Octenisept Schülke & Mayr AG, Switzerland GTIN: 4032651214068
Phosphate Buffered Saline Roth 1058.1
Isobutanol-2-Methylbutane Sigma-Aldrich, Switzerland M32631-1L
Optimum Cutting Temperature compound-Tissue-Tek VWR Chemicals, Belgium 25608-930
Cryostat Leica, Glattbrugg, Switzerland Leica CM1860 UV
Glass slide- Superfrost Plus Thermo Scientific 4951PLUS4
Mayer's Haematoxylin Sigma-Aldrich, Switzerland MHS32-1L
Eosin 0.5% aq. Sigma-Aldrich, Switzerland HT110232-1L
Oil Red O Sigma-Aldrich, Switzerland O0625-25G
α-smooth muscle actin antibody Abcam, UK. ab7817
Macrophage Clone RAM11 antibody DAKO, Switzerland M063301
Hoechst Abcam, UK. ab145596
Goat polyclonal Secondary Antibody (Chromeo 546) Abcam, UK. ab60316
Alexa Fluor 488/547 Abcam, UK.
Glycergel Mounting Medium, Aqueous DAKO, Switzerland C056330
Hematoxylin for Movat pentachrome staining Sigma-Aldrich, Switzerland H3136-25G
Ferric chloride for Movat pentachrome staining Sigma-Aldrich, Switzerland 157740-100G
Iodine for Movat staining Sigma-Aldrich, Switzerland 207772-100G
Potassium iodide for Movat pentachrome staining Sigma-Aldrich, Switzerland 60400-100G-F
Alcian blue for Movat staining Sigma-Aldrich, Switzerland A5268-10G
Strong Ammonia for Movat pentachrome staining Sigma-Aldrich, Switzerland 320145-500ML
Brilliant crocein MOO for Movat pentachrome staining Sigma-Aldrich, Switzerland 210757-50G
Acid Fuchsin for Movat pentachrome staining Sigma-Aldrich, Switzerland F8129-50G
Sodium Thiosulfate for Movat pentachrome staining Sigma-Aldrich, Switzerland 72049-250G,
Phosphotungstic acid for Movat pentachrome staining Sigma-Aldrich, Switzerland 79690-100G
Crocin for Movat pentachrome staining Sigma-Aldrich, Switzerland 17304-5G
EUKITT for Movat pentachrome staining Sigma-Aldrich, Switzerland 03989-100ML

References

  1. Mozaffarian, D., et al. Heart disease and stroke statistics–2015 update: a report from the American Heart Association. Circulation. 131, e29-e322 (2015).
  2. Boone, L. R., Brooks, P. A., Niesen, M. I., Ness, G. C. Mechanism of resistance to dietary cholesterol. J Lipids. 2011, 101242 (2011).
  3. Kapourchali, F. R., et al. Animal models of atherosclerosis. World J Clin Cases. 2, 126-132 (2014).
  4. Carter, C. P., Howles, P. N., Hui, D. Y. Genetic variation in cholesterol absorption efficiency among inbred strains of mice. J Nutr. 127, 1344-1348 (1997).
  5. Kolodgie, F. D., et al. Hypercholesterolemia in the rabbit induced by feeding graded amounts of low-level cholesterol. Methodological considerations regarding individual variability in response to dietary cholesterol and development of lesion type. Arterioscler Thromb Vasc Biol. 16, 1454-1464 (1996).
  6. Singh, V., Tiwari, R. L., Dikshit, M., Barthwal, M. K. Models to study atherosclerosis: a mechanistic insight. Curr Vasc Pharmacol. 7, 75-109 (2009).
  7. Dornas, W. C., Oliveira, T. T., Augusto, L. E., Nagem, T. J. Experimental atherosclerosis in rabbits. Arq Bras Cardiol. 95, 272-278 (2010).
  8. Baumgartner, H. R., Studer, A. [Effects of vascular catheterization in normo- and hypercholesteremic rabbits]. Pathol Microbiol (Basel). 29, 393-405 (1966).
  9. Tanaka, H., et al. Sustained activation of vascular cells and leukocytes in the rabbit aorta after balloon injury. Circulation. 88, 1788-1803 (1993).
  10. Phinikaridou, A., Hallock, K. J., Qiao, Y., Hamilton, J. A. A robust rabbit model of human atherosclerosis and atherothrombosis. J Lipid Res. 50, 787-797 (2009).
  11. Nakazawa, G., et al. Drug-eluting stent safety: findings from preclinical studies. Expert Rev Cardiovasc Ther. 6, 1379-1391 (2008).
  12. Aikawa, M., et al. Lipid lowering by diet reduces matrix metalloproteinase activity and increases collagen content of rabbit atheroma: a potential mechanism of lesion stabilization. Circulation. 97, 2433-2444 (1998).
  13. Jeanpierre, E., et al. Dietary lipid lowering modifies plaque phenotype in rabbit atheroma after angioplasty: a potential role of tissue factor. Circulation. 108, 1740-1745 (2003).
  14. Durand, E., et al. Magnetic resonance imaging of ruptured plaques in the rabbit with ultrasmall superparamagnetic particles of iron oxide. J Vasc Res. 44, 119-128 (2007).
  15. Stadius, M. L., et al. Time course and cellular characteristics of the iliac artery response to acute balloon injury. An angiographic, morphometric, and immunocytochemical analysis in the cholesterol-fed New Zealand white rabbit. Arterioscler Thromb. 12, 1267-1273 (1992).
  16. Khanna, V., et al. Cholesterol diet withdrawal leads to an initial plaque instability and subsequent regression of accelerated iliac artery atherosclerosis in rabbits. PLoS One. 8, e77037 (2013).
  17. Zou, J., et al. Effect of resveratrol on intimal hyperplasia after endothelial denudation in an experimental rabbit model. Life Sci. 68, 153-163 (2000).
  18. Li, M., Zhang, Y., Ren, H., Zhang, Y., Zhu, X. Effect of clopidogrel on the inflammatory progression of early atherosclerosis in rabbits model. Atherosclerosis. 194, 348-356 (2007).
  19. Nakazawa, G., et al. Evaluation of polymer-based comparator drug-eluting stents using a rabbit model of iliac artery atherosclerosis. Circ Cardiovasc Interv. 4, 38-46 (2011).
  20. Van Dyck, C. J., et al. Resolute and Xience V polymer-based drug-eluting stents compared in an atherosclerotic rabbit double injury model. Catheter Cardiovasc Interv. 81, E259-E268 (2013).
  21. Abran, M., et al. Validating a bimodal intravascular ultrasound (IVUS) and near-infrared fluorescence (NIRF) catheter for atherosclerotic plaque detection in rabbits. Biomed Opt Express. 6, 3989-3999 (2015).
  22. Kanamasa, K., et al. Recombinant tissue plasminogen activator prevents intimal hyperplasia after balloon angioplasty in hypercholesterolemic rabbits. Jpn Circ J. 60, 889-894 (1996).
  23. Pai, M., et al. Inhibition of in-stent restenosis in rabbit iliac arteries with photodynamic therapy. Eur J Vasc Endovasc Surg. 30, 573-581 (2005).
  24. Fischer, A. H., Jacobson, K. A., Rose, J., Zeller, R. Cryosectioning tissues. CSH Protoc. 2008, (2008).
  25. Chaytor, A. T., Bakker, L. M., Edwards, D. H., Griffith, T. M. Connexin-mimetic peptides dissociate electrotonic EDHF-type signalling via myoendothelial and smooth muscle gap junctions in the rabbit iliac artery. Br J Pharmacol. 144, 108-114 (2005).
  26. Zhang, W., Trebak, M. Vascular balloon injury and intraluminal administration in rat carotid artery. J Vis Exp. (94), (2014).
  27. Maillard, L., et al. Effect of percutaneous adenovirus-mediated Gax gene delivery to the arterial wall in double-injured atheromatous stented rabbit iliac arteries. Gene Ther. 7, 1353-1361 (2000).
  28. Sharif, F., et al. Gene-eluting stents: adenovirus-mediated delivery of eNOS to the blood vessel wall accelerates re-endothelialization and inhibits restenosis. Mol Ther. 16, 1674-1680 (2008).
  29. Lee, J. M., et al. Development of a rabbit model for a preclinical comparison of coronary stent types in-vivo. Korean Circ J. 43, 713-722 (2013).
  30. Tulis, D. A. Rat carotid artery balloon injury model. Methods Mol Med. 139, 1-30 (2007).
  31. Asada, Y., et al. Effects of inflation pressure of balloon catheter on vascular injuries and subsequent development of intimal hyperplasia in rabbit aorta. Atherosclerosis. 121, 45-53 (1996).
  32. Dornas, W. C., Oliveira, T. T., Augusto, L. E., Nagem, T. J. Experimental atherosclerosis in rabbits. Arq Bras Cardiol. 95, 272-278 (2010).
  33. Waksman, R., et al. PhotoPoint photodynamic therapy promotes stabilization of atherosclerotic plaques and inhibits plaque progression. J Am Coll Cardiol. 52, 1024-1032 (2008).
  34. Fernandez-Parra, R., et al. Pharmacokinetic Study of Paclitaxel Concentration after Drug-Eluting Balloon Angioplasty in the Iliac Artery of Healthy and Atherosclerotic Rabbit Models. J Vasc Interv Radiol. 26, 1380-1387 (2015).
  35. Dussault, S., Dhahri, W., Desjarlais, M., Mathieu, R., Rivard, A. Elsibucol inhibits atherosclerosis following arterial injury: multifunctional effects on cholesterol levels, oxidative stress and inflammation. Atherosclerosis. 237, 194-199 (2014).
  36. Manderson, J. A., Mosse, P. R., Safstrom, J. A., Young, S. B., Campbell, G. R. Balloon catheter injury to rabbit carotid artery. I. Changes in smooth muscle phenotype. Arteriosclerosis. 9, 289-298 (1989).
  37. Miyake, T., et al. Prevention of neointimal formation after angioplasty using nuclear factor-kappaB decoy oligodeoxynucleotide-coated balloon catheter in rabbit model. Circ Cardiovasc Interv. 7, 787-796 (2014).
  38. Fulcher, J., Patel, S., Nicholls, S. J., Bao, S., Celermajer, D. Optical coherence tomography for serial in vivo imaging of aortic plaque in the rabbit: a preliminary experience. Open Heart. 2, e000314 (2015).
  39. Abela, O. G., et al. Plaque Rupture and Thrombosis: the Value of the Atherosclerotic Rabbit Model in Defining the Mechanism. Curr Atheroscler Rep. 18, 29 (2016).
  40. Yamashita, A., Asada, Y. A rabbit model of thrombosis on atherosclerotic lesions. J Biomed Biotechnol. 2011, 424929 (2011).
check_url/kr/55295?article_type=t

Play Video

Cite This Article
Jain, M., Frobert, A., Valentin, J., Cook, S., Giraud, M. The Rabbit Model of Accelerated Atherosclerosis: A Methodological Perspective of the Iliac Artery Balloon Injury. J. Vis. Exp. (128), e55295, doi:10.3791/55295 (2017).

View Video