Summary

Моделирование рака яичников Многоклеточная Сфероид Поведение в микроустройство Dynamic 3D перитонеального

Published: February 18, 2017
doi:

Summary

Для изучения прогрессии опухоли яичников в физиологически соответствующей модели, многоклеточные сфероиды культивировали в микроустройство в смоделированных потоке текучей среды. Эта динамическая 3D модель эмулирует внутрибрюшного среду с клеточными и механических компонентов, где происходит яичников раковых метастаз.

Abstract

Рак яичников характеризуется широким перитонеального метастазирования, с опухолевыми сферами обычно встречаются в злокачественных асцит. Это связано с плохими клиническими результатами и в настоящее время не хватает эффективного лечения. И трехмерные (3D) окружающая среда и динамические механические силы являются очень важными факторами в этом метастатического каскада. Тем не менее, традиционные клеточные культуры не Повторим этот естественный микросреды опухоли. Таким образом, в естественных условиях -как модели , которые могут эмулировать внутрибрюшной среды имеют очевидное значение. В этом исследовании, новая платформа Микрожидкостных брюшины была создана, чтобы имитировать ситуацию яичников сфероидов рака в брюшной полости во время метастазирования. Яичниковые сфероидов рака, сгенерированные под неприлипающими состоянии культивировали в микроканалов, покрытых перитонеального мезотелиальной клеток, подвергнутых физиологически соответствующего напряжения сдвига. Таким образом, эта динамика 3D-рак яичников Мезотелия микрофонrofluidic платформа может предоставить новые знания по основам биологии рака и служить в качестве платформы для потенциального скрининга и разработки лекарственных средств.

Introduction

Рак яичников является наиболее летальной гинекологический рак и характеризуется широко распространенной перитонеального распространения и образование злокачественных асцит 1. Эта обширная перитонеальный метастаз представляет собой серьезную клиническую проблему и связано с плохими клиническими результатами. В отличие от большинства твердых карцином, которые метастазируют через кровь, рак яичников, прежде всего, рассеивает в брюшную полость. Опухолевые клетки существуют как многоклеточные агрегаты / сфероиды в процессе метастазирования 2. Тот факт , что подвеска культура может обогатить овариальных стволовых рак / опухолевые инициирующие клетки далее предположить , что эти сфероиды могут быть связаны как с опухолевой агрессивностью и усиливается химиорезистентность 3, 4. Существуют различия в ответ наркотиков между 2D и 3D культур, которые , предположительно , имеют разные молекулярные механизмы 5.

_content "> Существенное взаимодействие с мезотелием создает первичный микросреду для прогрессии опухоли яичников. Эти мезотелиальной клетки лежат на внеклеточного матрикса (ЕСМ), где фибронектин является вездесущим компонентом. Связь между увеличением экспрессии мезотелиальной клеток, полученных фибронектина и прогрессирование опухоли было показано. фибронектина в изобилии присутствует в злокачественных асцит 6, 7. Яичниковые раковые клетки также способны индуцировать секрецию фибронектина из мезотелиальной клеток для того , чтобы способствовать раннему метастазирования рака яичников 8.

Все новые данные показывают , что механические стимулы, в том числе напряжения сдвига, могут модулировать морфологии клеток, экспрессию генов, и, таким образом, фенотипы опухолевых клеток 9, 10, 11. Как злокачественного асцита развивать и накапливать в течение тumor прогрессии, овариальные опухолевые клетки подвергаются потока жидкости и в результате напряжения сдвига. Ряд групп, включая и наши, показали влияние напряжения сдвига на прогрессирование рака яичников, в том числе модификации цитоскелета, эпителиально-к-мезенхимальных переходы и стволовости 12 рака, 13, 14, 15. Таким образом, физиологически соответствующие микросреда имеет важное значение для исследования опухоли перитонеальные метастазы. Однако современные гидродинамические культурах клеток имеют ограничения на пародирование и контроль постоянной, низкий, физиологически соответствующее напряжение сдвига 16, 17, 18, 19. Обычные в пробирке подходы , ориентированные либо на клеточном или механической среде по – прежнему ограничены вимитируя сложность внутрибрюшинного микросреды с правильной физиологической значимости.

Вот для того, чтобы спроектировать новую модель брюшины, чтобы преодолеть ограничения традиционных стратегий и продвигать исследование внутрибрюшинного отделение в метастазирования рака, 3D Микрожидкостных на основе платформы с регулируемым потоком жидкости был разработан. В этой модели, овариальные сфероидов рака совместно культивировали с первичными перитонеальных мезотелиальных клеток человека в микрофлюидальных чипсов при непрерывном жидкостный поток (рисунок 1А). Мезотелиальной клетки высевали на фибронектином. Неприлипающие яичников сфероидов рака были посеяны в микроканалов с непрерывным потоком среды перфузируемом с помощью шприца. Оба 3D окружающей среды и динамические механические силы являются очень важными факторами, метастатического каскада. Эта платформа может быть использована для исследования внутрибрюшной микросреду с точки зрения комплексного CELlular и совместного взаимодействия культур, а также в отношении динамических механических сигналов.

Protocol

1. Микрожидкостных Конструкция устройства и изготовление Микрожидкостных мастер-дизайн Дизайн и рисовать микрожидкостных шаблон канала с любой компьютерной системы автоматизированного проектирования (САПР). Примечание: Как правило, САПР чертеж может быть отправлен в ф…

Representative Results

Используя этот протокол, микрожидком платформа была создана для моделирования яичников сфероидов рака с мезотелиальной клеток в условиях гидродинамической. Первичные перитонеальные мезотелиальные клетки человека культивировали в микроустройство в течение 16 ч и н?…

Discussion

Этот анализ предлагает гибкую и физиологически соответствующую модель, которая может быть объединена с различными биохимическими и клеток на основе анализов, в том числе, но не ограничиваясь ими, анализов адгезии, мезотелиальной анализов очистки, а также скрининга лекарственных сред?…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Эта работа была поддержана исследовательских грантов Совета Гонконга (гранты 17122014, C1013-15G, 719813E и 17304514). АСТ Вонг является получателем Croucher старшего научного братства.

Materials

Silicon wafer University wafer #1196 100mm
SU-8 2075 photoresist  Microchem
SU-8 developer  Microchem 108-65-6
Trichloro (1H, 1H, 2H, 2H-perfluorooctyl) silane Sigma 448931
Sylgard 184 Dow Corning 1673921 Polydimethylsiloxane (PDMS) + curing agent kit
Biopsy punch  Miltex 33-31AA 1 mm diameter
Plasma cleaner Harrick Plasma PDC-002
Polyethylene tubing SCI BB31695-PE/5 0.86mm (inner diameter)
Syringe Terumo
Syringe pump Longer precision pump   LSP01-2A
Medium 199 Invitrogen 31100-035 Add 2.2g/L sodium bicarbonate
MCDB 105 Medium Sigma M6395
Fetal bovine serum (FBS) Hyclone SH30068.02
Penicillin/streptomycin  Invitrogen 15070-063
Trypsin EDTA solution  Gibco 25300-054 0.05% Trypsin -0.01% EDTA, phenol red
Fibronectin human BD 354008
Agarose  Invitrogen 15510-027
5-chloromethylfluorescein diacetate Life technologies C7025 Green CMFDA
CO2 incubator SANYO MCO-18AIC
Centrifuge Hitachi CT15RE
Fluorescent microscope Nikon Model: 80i or ECLIPSE Ti; software: SPOT
SKOV-3  Gift from Dr. N Auersperg (University of British Columbia)

References

  1. Jemal, A., et al. Global cancer statistics. CA: Cancer J. Clin. 61, 69-90 (2011).
  2. Burleson, K. M., et al. Ovarian carcinoma ascites spheroids adhere to extracellular matrix components and mesothelial cell monolayers. Gynecol. Oncol. 93, 170-181 (2004).
  3. Chau, W. K., Ip, C. K., Mak, A. S., Lai, H. C., Wong, A. S. c-Kit mediates chemoresistance and tumor-initiating capacity of ovarian cancer cells through activation of Wnt/beta-catenin-ATP-binding cassette G2 signaling. Oncogene. 32, 2767-2781 (2013).
  4. Zhang, S., et al. Identification and characterization of ovarian cancer-initiating cells from primary human tumors. Cancer Res. 68, 4311-4320 (2008).
  5. Tang, M. K. S., Zhou, H. Y., Yam, J. W. P., Wong, A. S. T. c-Met overexpression contributes to the acquired apoptotic resistance of nonadherent ovarian cancer cells through a cross talk mediated by phosphatidylinositol 3-kinase and extracellular signal-regulated kinase 1/2. Neoplasia. 12, 128-144 (2010).
  6. Ksiazek, K., et al. Senescent peritoneal mesothelial cells promote ovarian cancer cell adhesion: the role of oxidative stress-induced fibronectin. Am. J. Pathol. 174, 1230-1240 (2009).
  7. Hafter, R., Klaubert, W., Gollwitzer, R., Vonhugo, R., Graeff, H. Crosslinked Fibrin Derivatives and Fibronectin in Ascitic Fluid from Patients with Ovarian-Cancer Compared to Ascitic Fluid in Liver-Cirrhosis. Thromb Res. 35, 53-64 (1984).
  8. Kenny, H. A., et al. Mesothelial cells promote early ovarian cancer metastasis through fibronectin secretion. J. Clin. Invest. 124, 4614-4628 (2014).
  9. Jain, R. K. Normalization of tumor vasculature: An emerging concept in antiangiogenic therapy. Science. 307, 58-62 (2005).
  10. Chang, S. F., et al. Tumor cell cycle arrest induced by shear stress: Roles of integrins and Smad. Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 105, 3927-3932 (2008).
  11. Rutkowski, J. M., Swartz, M. A. A driving force for change: interstitial flow as a morphoregulator. Trends Cell Biol. 17, 44-50 (2007).
  12. Rizvi, I., et al. Flow induces epithelial-mesenchymal transition, cellular heterogeneity and biomarker modulation in 3D ovarian cancer nodules. Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 110, E1974-E1983 (2013).
  13. Ip, C. K., et al. Stemness and chemoresistance in epithelial ovarian carcinoma cells under shear stress. Sci. Rep. 6, 26788 (2016).
  14. Avraham-Chakim, L., et al. Fluid-flow induced wall shear stress and epithelial ovarian cancer peritoneal spreading. PloS one. 8, e60965 (2013).
  15. Burkhalter, R. J., et al. Peritoneal mechanobiology and metastatic success in epithelial ovarian cancer. Faseb Journal. 26, (2012).
  16. Lane, W. O., et al. Parallel-plate flow chamber and continuous flow circuit to evaluate endothelial progenitor cells under laminar flow shear stress. Journal of visualized experiments : JoVE. , (2012).
  17. Botta, G. P., Manley, P., Miller, S., Lelkes, P. I. Real-time assessment of three-dimensional cell aggregation in rotating wall vessel bioreactors in vitro. Nat. Protoc. 1, 2116-2127 (2006).
  18. Ismadi, M. Z., et al. Flow characterization of a spinner flask for induced pluripotent stem cell culture application. PloS one. 9, e106493 (2014).
  19. Yu, W., et al. A microfluidic-based multi-shear device for investigating the effects of low fluid-induced stresses on osteoblasts. PloS one. 9. 9, e89966 (2014).
check_url/kr/55337?article_type=t

Play Video

Cite This Article
Li, S., Ip, C. K. M., Tang, M. Y. H., Sy, S. K. H., Yung, S., Chan, T., Yang, M., Shum, H. C., Wong, A. S. Modeling Ovarian Cancer Multicellular Spheroid Behavior in a Dynamic 3D Peritoneal Microdevice. J. Vis. Exp. (120), e55337, doi:10.3791/55337 (2017).

View Video