Summary

Creazione di tessuto cardiaco che mostra l'integrazione meccanica degli spheroidi usando la biopittura 3D

Published: July 02, 2017
doi:

Summary

Questo protocollo descrive la bioprinting 3D del tessuto cardiaco senza l'uso di biomateriali. Le zone cardiache 3D bioprinted espongono l'integrazione meccanica dei sferoidi dei componenti e sono altamente promettenti nella rigenerazione del tessuto cardiaco e come modelli 3D di malattie cardiache.

Abstract

Questo protocollo descrive il bioprinting 3D del tessuto cardiaco senza l'uso di biomateriali, utilizzando solo le cellule. I cardiomiociti, le cellule endoteliali ei fibroblasti vengono prima isolati, contati e mescolati a rapporti cellulari desiderati. Sono co-coltivati ​​in singoli pozzetti in piastre a 96 pozzetti ad attacco ultra-basso. Entro 3 giorni, battendo forma sferoide. Questi sferoidi vengono quindi prelevati da un ugello usando l'aspirazione del vuoto e assemblati su un array di ago utilizzando un bioprinter 3D. I sferoidi sono quindi autorizzati a fondere sull'array dell'ago. Tre giorni dopo la bioprinting 3D, i sferoidi vengono rimossi come una patch intatta, che sta già battendo spontaneamente. Le zone cardiache 3D bioprinted espongono l'integrazione meccanica dei sferoidi dei componenti e sono altamente promettenti nella rigenerazione del tessuto cardiaco e come modelli 3D di malattie cardiache.

Introduction

Ci sono molti metodi differenti di bioprinting 3D 1 , 2 , 3 . La bioprinting 3D è spesso classificata dalla tecnologia di stampa 1 , con esempi come bioprinting a getto d'inchiostro, bioprinting a microestrusione, bioprinting assistito da laser, combinazione di metodi o approcci più recenti. La bioprinting 3D può essere classificata anche in metodi scaffold-dependent o scaffold-dependent 4 . La maggior parte dei metodi di bioprinting 3D sono dipendenti da scaffold, dove vi è la necessità di biomateriali, ad es. Biochip 5 o scaffold 6 . Tuttavia, il bioprinting 3D dipende da molte problematiche e limitazioni 4 , 7 , come l'immunogenicità del materiale di ponteggio, il costo dei biochimici proprietari, la velocità lenta e la tossicità dei prodotti di degradazione.

SCAFÈ stato tentato l'ingegnerizzazione dei tessuti cardiaci senza piombo usando sferoidi 8 , con il potenziale per superare questi svantaggi dell'ingegneria tissutale dipendente dal ponteggio. Tuttavia, come riconosciuto dagli autori in tale documento, era stato difficile gestire in modo robusto e posizionare sferoidi in posizioni fissi, nel processo di biofabbricazione. L'uso concomitante di bioprinting 3D e di ingegneria tissutale a base di sferoidi ha il potenziale per superare queste difficoltà. In questo protocollo, descriviamo la bioprinting 3D del tessuto cardiaco senza altri biomateriali, usando solo le cellule sotto forma di sferoidi.

I bioprinters 3D a base di sferoidi a base di scaffali 9 hanno la capacità di prelevare singoli sferoidi usando l'aspirazione del vuoto e posizionarli su una matrice di ago. Il concetto di sferoidi di posizionamento su un array di ago in bioprinting 3D è ispirato dall'utilizzo di array d'ago (detto " kenzan ") nell'antico JapaSe l'arte della disposizione dei fiori, ikebana. Questo sistema permette che i sferoidali siano posizionati in modo preciso in qualsiasi configurazione e che i singoli sferoidi si fusero insieme per un breve periodo per creare un tessuto 3D bioprintato. Questo metodo consente quindi di manipolare con facilità le sferoidi, con potenziali implicazioni per il futuro della biofabbricazione degli organi senza scaffalature.

Protocol

1. Preparazione dei cardiomiociti Generare e coltivare cellule staminali pluripotenti indotte da umano (hiPSCs) su piastre a 6 pozzetti rivestite con matrice a membrana basale come descritto 10 . Differenziare i hiPSC nei cardiomiociti derivanti da hiPSC (hiPSC-CMs) utilizzando metodi descritti in precedenza 11 , 12 . Il giorno 19 dopo la differenziazione, isolare i cardiomiociti usando 2 mL di Trypsin / EDT…

Representative Results

Alla fine del punto 4.4 (co-cultura), le cellule in ciascun pozzetto dovrebbero aggregarsi nella parte inferiore delle piastre a basso profilo a 96 pozzetti ad attacco ultra-basso per formare sferoidi per gravità. Questi sferoidi contengono HiPSC-CM, HCFs e HUVECs e possono essere sottoposti a ispezione visiva sotto microscopia leggera, dove devono apparire circolari per proiezione bidimensionale ( Figura 1 ). Alla fine del passo 6.3, la patch cardiaca 3D b…

Discussion

It is important to use beating, functional spheroids for 3D bioprinting. If spheroids are not beating, continuing to use them will invariably result in a non-functional 3D bioprinted patch.

One benefit of this approach is the ability to manipulate the cell content of the patch by varying the total number of cells and the percentage of cardiomyocytes, endothelial cells, and fibroblasts in the spheroids. This allows for many different types of cardiac patches to be printed, with varying histolog…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Gli autori riconoscono le seguenti fonti di finanziamento: Magic That Matters Fund per la ricerca cardiovascolare e il Maryland Stem Cell Research Fund (2016-MSCRFI-2735).

Materials

Geltrex Invitrogen  A1413202
Trypsin/EDTA 0.05% Thermo Fisher 15400054
Defined Trypsin inhibitor 0.0125% Thermo Fisher R007100
RPMI Cell Media Invitrogen 11875-093 RPMI supplemented with B27 constitutes HIPSC-CM culture media
B-27 Supplement Thermo Fisher 17504044 RPMI supplemented with B27 constitutes HIPSC-CM culture media
Countess Automated Cell Counter Invitrogen C10227
Human cardiac fibroblasts (adult ventricular type) Sciencell 6310
Human umbilical vein endothelial cells Lonza CC-2935
PrimeSurface ultra-low attachment 96-well U-bottom plates  Akita Sumitomo Bakelite Co. MS-9096UZ
Regenova Bio 3D Printer Cyfuse Biomedical K.K. N/A www.cyfusebio.com/en/
Trypan Blue Solution, 0.4% Thermo Fisher 15250061
Troponin T Antibody Thermo Fisher 701620
Connexin 43 (Cx43) Antibody Chemicon MAB3068
ProLong Gold Antifade Mountant with DAPI Thermo Fisher P36935

References

  1. Murphy, S. V., Atala, A. 3D bioprinting of tissues and organs. Nat Biotech. 32, 773-785 (2014).
  2. Bajaj, P., Schweller, R. M., Khademhosseini, A., West, J. L., Bashir, R. 3D biofabrication strategies for tissue engineering and regenerative medicine. Ann Rev Biomed Eng. 16, 247-276 (2014).
  3. Patra, S., Young, V. A Review of 3D Printing Techniques and the Future in Biofabrication of Bioprinted Tissue. Cell Biochem Biophy. 74, 93-98 (2016).
  4. Moldovan, N. I., Hibino, N., Nakayama, K. Principles of the Kenzan Method for Robotic Cell Spheroid-Based Three-Dimensional Bioprinting. Tissue Eng Part B Rev. , (2017).
  5. Cui, X., Boland, T., D’Lima, D. D., Lotz, M. K. Thermal inkjet printing in tissue engineering and regenerative medicine. Recent Pat Drug Deliv Formul. 6, 149-155 (2012).
  6. Murphy, C. M., Haugh, M. G., O’Brien, F. J. The effect of mean pore size on cell attachment, proliferation and migration in collagen-glycosaminoglycan scaffolds for bone tissue engineering. Biomater. 31, 461-466 (2010).
  7. Noguchi, R., et al. Development of a three-dimensional pre-vascularized scaffold-free contractile cardiac patch for treating heart disease. J Heart Lung Transpl. 35, 137-145 (2016).
  8. Mironov, V., et al. Organ printing: tissue spheroids as building blocks. Biomater. 30, 2164-2174 (2009).
  9. Itoh, M., et al. Scaffold-Free Tubular Tissues Created by a Bio-3D Printer Undergo Remodeling and Endothelialization when Implanted in Rat Aortae. PloS One. 10, e0136681 (2015).
  10. Lieu, P. T., Fontes, A., Vemuri, M. C., Macarthur, C. C. Generation of induced pluripotent stem cells with CytoTune, a non-integrating Sendai virus. Methods Mol Biol. 997, 45-56 (2013).
  11. Li, S., Cheng, H., Tomaselli, G. F., Li, R. A. Mechanistic basis of excitation-contraction coupling in human pluripotent stem cell-derived ventricular cardiomyocytes revealed by Ca2+ spark characteristics: direct evidence of functional Ca2+-induced Ca2+ release. Heart Rhythm. 11, 133-140 (2014).
  12. Boheler, K. R., et al. A Human Pluripotent Stem Cell Surface N-Glycoproteome Resource Reveals Markers, Extracellular Epitopes, and Drug Targets. Stem Cell Rep. 3, 185-203 (2014).
  13. ScienCell Research Laboratories. . Human Cardiac Fibroblasts (adult ventricular) Product Sheet. , (2017).
  14. Lonza Walkersville, Inc. . Endothelial Cell Systems – Technical Information & Instructions.,. , (2015).
  15. Thermo Fisher Scientific, Inc. . Immunofluorescence Method for IHC Detection. , (2017).
  16. Murata, D., et al. A preliminary study of osteochondral regeneration using a scaffold-free three-dimensional construct of porcine adipose tissue-derived mesenchymal stem cells. J Orthop Surg Res. 10, (2015).
  17. Mosadegh, B., Xiong, G., Dunham, S., Min, J. K. Current progress in 3D printing for cardiovascular tissue engineering. Biomed Mater. 10, 034002 (2015).
  18. Chang, C. C., Boland, E. D., Williams, S. K., Hoying, J. B. Direct-write Bioprinting Three-Dimensional Biohybrid Systems for Future Regenerative Therapies. J Biomed Mater Res. Part B, Appl Biomater. 98, 160-170 (2011).
  19. Lee, J. M., Sing, S. L., Tan, E. Y. S., Yeong, W. Y. Bioprinting in cardiovascular tissue engineering: a review. International J Bioprinting. 2 (2016), (2016).

Play Video

Cite This Article
Ong, C. S., Fukunishi, T., Nashed, A., Blazeski, A., Zhang, H., Hardy, S., DiSilvestre, D., Vricella, L., Conte, J., Tung, L., Tomaselli, G., Hibino, N. Creation of Cardiac Tissue Exhibiting Mechanical Integration of Spheroids Using 3D Bioprinting. J. Vis. Exp. (125), e55438, doi:10.3791/55438 (2017).

View Video