Summary

Verbesserung der Stärke, Kraft, Muskel aerobe Kapazität und Glukosetoleranz durch kurzfristige progressive Krafttraining unter älteren Menschen

Published: July 05, 2017
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Summary

Die Wirkung des kurzfristigen Widerstandstrainings auf ältere Menschen wurde durch die gleichzeitige Anwendung mehrerer Methoden untersucht. Im Vergleich zu einer Kontrollgruppe wurden viele Verbesserungen beobachtet, darunter auch die Muskel-Aerobic-Kapazität, die Glukosetoleranz, die Kraft, die Leistung und die Muskelqualität ( dh das Protein, das an der Zellsignalisierung und der Zusammensetzung des Muskelfasers beteiligt ist).

Abstract

Dieses Protokoll beschreibt die gleichzeitige Verwendung einer breiten Palette von Methoden zur Untersuchung der Muskel-aerobe Kapazität, Glukosetoleranz, Stärke und Kraft bei älteren Menschen, die kurzfristige Widerstandstraining (RET) durchführen. Das überwachte progressive Widerstandstraining für 1 h dreimal pro Woche über 8 Wochen wurde von RET Teilnehmer (71 ± 1 Jahre, Bereich 65-80) durchgeführt. Im Vergleich zu einer Kontrollgruppe ohne Training zeigte das RET Verbesserungen an den Maßnahmen, die verwendet wurden, um Stärke, Kraft, Glukosetoleranz und mehrere Parameter der Muskel-Aerobe Kapazität anzuzeigen. Krafttraining wurde in einem Fitnessstudio mit nur robustem Fitnessgerät durchgeführt. Ein isokinetischer Dynamometer für die Knieverlängerung ermöglichte die Messung der konzentrischen, exzentrischen und statischen Festigkeit, die für die RET-Gruppe (8-12% nach dem Vortest) zunahm. Die Macht (Rate der Kraftentwicklung, RFD) bei den ersten 0-30 ms zeigte auch eine Zunahme für die RET-Gruppe (52%). Ein Glukosetoleranztest mit FrequeDie Blutglukosemessungen zeigten nur Verbesserungen für die RET-Gruppe hinsichtlich der Blutzuckerwerte nach 2 h (14%) und der Fläche unter der Kurve (21%). Das Blutlipidprofil verbesserte sich ebenfalls (8%). Von Muskelbiopsieproben, die mit Histochemie hergestellt wurden, erhöhte sich die Menge an Fasertyp IIa, und ein Trend zu einer Abnahme von IIx in der RET-Gruppe spiegelte eine Veränderung zu einem oxidativeren Profil in Bezug auf die Faserzusammensetzung wider. Western Blot (zur Bestimmung des Proteingehalts im Zusammenhang mit der Signalisierung der Muskelproteinsynthese) zeigte einen Anstieg von 69% sowohl in Akt als auch in mTOR in der RET-Gruppe; Dies zeigte auch eine Zunahme der mitochondrialen Proteine ​​für OXPHOS-Komplex II und Citrat-Synthase (beide ~ 30%) und für komplexe IV (90%) in nur der RET-Gruppe. Wir zeigen, dass diese Art von progressivem Widerstandstraining verschiedene Verbesserungen bietet ( zB Kraft, Kraft, aerobe Kapazität, Glukosetoleranz und Plasma-Lipid-Profil).

Introduction

Das Altern ist mit einem Verlust der Muskelmasse (Sarkopenie), Kraft und Kraft verbunden. Reduzierte Kraft und vermutlich noch wichtiger ist die Kraft, die Unbeweglichkeit, ein erhöhtes Verletzungsrisiko und eine reduzierte Lebensqualität. Resistance Training ist eine bekannte Strategie, um der Sarkopenie entgegenzuwirken und die Muskelfunktion zu verschlechtern. Eine grobe Schätzung der Muskelkraft kann aus der Last oder Anzahl der erzielten Wiederholungen erhalten werden. Allerdings erhielt diese Studie detailliertere und genaue Informationen über die Muskelfunktion mit einem isokinetischen Dynamometer, um Informationen über das Drehmoment während der isometrischen, konzentrischen und exzentrischen Kontraktion sowie über die Kinetik der Kraftentwicklung zu sammeln.

Aerobe Kapazitäten, sowohl auf der Ganzkörper-Ebene (VO 2max ) als auch im Skelettmuskel, wird bei älteren Menschen reduziert. Der Rückgang der Herzfrequenz mit dem Alter erklärt einen großen Teil der Abnahme in VO 2max 1 , aber reduziert musDie Oxidationskapazität, die weitgehend mit der verminderten körperlichen Aktivität 2 zusammenhängt , trägt dazu bei. Beeinträchtigte mitochondriale Funktion kann auch an der Entwicklung von Sarkopenie und Insulinresistenz beteiligt sein 3 . Die Muskel-aerobe Kapazität wurde in den Muskelbiopsien durch biochemische Analysen des Inhalts von mitochondrialen Enzymen und Proteinkomplexen, die sich sowohl in der Matrix ( dh Citrat-Synthase) als auch in der inneren mitochondrialen Membran befinden, untersucht. Darüber hinaus wurden histochemische Techniken verwendet, um die Wirkung des Widerstandstrainings auf die Muskelmorphologie ( dh Fasertypzusammensetzung, Faserquerschnittsfläche und Kapillardichte) zu messen. Eine alternative Methode zur Beurteilung der Muskel-Aerobic-Kapazität wäre die Verwendung von Magnetresonanzspektroskopie zur Messung der Rate der Creatinphosphat-Resynthese nach einer ausübung-induzierten Verarmung 4 . Diese Methode liefert eine Schätzung der In-vivo- Muskel-Aerobic-KapazitY kann aber nicht zwischen mitochondrialer Dysfunktion und Kreislaufstörungen unterscheiden. Darüber hinaus beschränken die hohen Kosten der Ausrüstung den Einsatz dieser Technik in den meisten Laboratorien. Aerobe Kapazität (VO 2max und mitochondriale Dichte) kann durch Ausdauertraining sowohl bei Jung- als auch bei Alten verbessert werden 5 , 6 . Allerdings wurde die Wirkung des Resistenztrainings auf diese Parameter weniger untersucht, vor allem bei älteren Probanden, und die Ergebnisse sind widersprüchlich 7 , 8 , 9 , 10 .

Typ 2 Diabetes ist eine weit verbreitete Krankheit in der älteren Bevölkerung. Physische Inaktivität und Fettleibigkeit sind wichtige Lifestyle-bezogene Faktoren, die die erhöhte Inzidenz von Typ-2-Diabetes erklären. Aerobic-Übungen mit geringer Intensität werden oft für Patienten mit reduzierter Glukosetoleranz empfohlen. Allerdings ist es unLear, wie Krafttraining bei älteren Menschen die Glukosetoleranz / Insulinsensitivität beeinflusst 11 , 12 . Die genaueste Methode zur Messung der Insulinsensitivität ist die Verwendung der Glukose-Klammer-Technik, bei der die Blutzuckerwerte durch Glukose-Infusion während der Bedingungen des erhöhten Insulins 13 konstant gehalten werden. Die Nachteile bei dieser Technik sind, dass es zeitaufwendig und invasiv ist (arterielle Katheterisierung) und erfordert spezielle Laboreinrichtungen. In dieser Studie wurde der orale Glukosetoleranztest, der im Gesundheitswesen üblich ist, verwendet. Diese Methode eignet sich, wenn mehrere Themen für einen begrenzten Zeitraum untersucht werden sollen.

Der Test und die Zeitachse des experimentellen Verfahrens können wie folgt zusammengefasst werden. Verwenden Sie drei getrennte Tage für die Prüfung vor und nach einer achtwöchigen Periode, mit der gleichen Anordnung und ungefähre Zeitpläne (≥24 h zwischen jedem Tag, < Stark> Abbildung 1). Am ersten Testtag messen Sie: anthropometrische Daten wie Höhe, Körpermasse, fettfreie Masse (FFM) und Oberbeinumfang ( dh 15 cm über den Scheitelpatellaen in entspannter Rückenlage); Submaximale Zyklusfähigkeit; Und Knie Muskelkraft, wie in den Schritten 4 und 5 beschrieben. Nehmen Sie eine Muskelbiopsie aus dem Oberschenkel am zweiten Test Tag. Weitere Beschreibungen finden Sie unter Schritt 6.1. Testen Sie die orale Glukosetoleranz (OGTT) am letzten Testtag. Weitere Beschreibungen finden Sie unter Schritt 7.1. Bitten Sie alle Teilnehmer, eine kräftige körperliche Aktivität für 24 Stunden zu vermeiden und über Nacht vor jedem Testtag zu fasten. Allerdings bitten sie um eine anstrengende körperliche Aktivität für 48 Stunden vor dem OGTT-Testtag zu vermeiden. Bitten Sie sie, ihren normalen alltäglichen körperlichen Aktivitäten und Ernährungsgewohnheiten zu folgen. Beachten Sie, dass vor und nach der Intervention, beide Gruppen 'selbst gemeldete Nahrungsaufnahme und Art der Lebensmittel unverändert waren.

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Abbildung 1: Experimentelles Protokoll Schematische Darstellung. Der Zeitpunkt zwischen den drei Vor- und Nachprüfungen war für jedes Fach gleich und mindestens 24 h. Weitere Angaben finden Sie im Text. Diese Figur wurde von Frank et al. Scand J. Med. Sci Sport . 2016: 26, 764-73. 28 Bitte klicken Sie hier um eine größere Version dieser Figur zu sehen.

Diese Studie suchte die Wirkung der kurzfristigen Widerstandstraining bei älteren Menschen auf Muskel-Oxidations-Kapazität und Glukosetoleranz zu untersuchen. Das zweite Ziel war es, die Wirkung auf Kraft, Kraft und Muskel qualitative Verbesserungen ( dh Proteine, die an der Zell-Signalisierung und Muskel-Faser-Typ Zusammensetzung beteiligt sind) zu untersuchen.

Protocol

Die Regionale Ethik-Komitee von Stockholm, Schweden, genehmigt die Gestaltung der Untersuchung. 1. Material Rekrutieren Sie relativ gesunde Frauen und Männer 65-80 Jahre alt, die BMI Werte zwischen 20 und 30 kg · m -2 haben . Randomisieren sie in zwei Gruppen. Stellen Sie sicher, dass die Personen in beiden Gruppen relativ niedrige körperliche Aktivität Ebenen ( dh moderate tägliche körperliche Aktivität und keine regelmäßige Bewegung Ausbildung). </li…

Representative Results

Material In der Studie nahmen 21 relativ gesunde Frauen und Männer, 65-80 Jahre alt und mit BMI-Werten zwischen 20 und 30 kg · m -2 teil und wurden in zwei Gruppen randomisiert. Einzelpersonen in beiden Gruppen hatten relativ niedrige körperliche Aktivität Ebenen ( dh eine moderate alltägliche körperliche Aktivität und keine regelmäßige Bewegung Ausbildung). Eine Gruppe (n = 12, 6 Frauen und 6 Männer…

Discussion

In dieser Studie wurden eine Reihe von Techniken verwendet, um die Auswirkungen der kurzfristigen progressiven Widerstandstraining auf ältere Themen Muskel-Funktion / Morphologie, aerobe Kapazität und Glukosetoleranz zu untersuchen. Der Hauptfund war, dass im Vergleich zu einer Kontrollgruppe viele Verbesserungen in der Muskel-aerobe Kapazität, Glukosetoleranz, Kraft, Kraft und Muskelqualität ( dh Protein, das an der Zell-Signalisierung und Muskelfaser-Zusammensetzung beteiligt ist) aufgetreten sind. Eine Z…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Die Autoren bedanken sich bei Andrée Nienkerk, Dennis Peyron und Sebastian Skjöld für die Betreuung der Trainings und mehrere Tests; Zu den teilnehmenden themen; Zu Tim Crosfield für Sprachrevision; Und die wirtschaftliche Unterstützung der schwedischen Schule für Sport- und Gesundheitswissenschaften.

Materials

Western blot
Pierce 660nm Protein Assay Kit Thermo Scientific, Rockford, IL, USA 22662
SuperSignal West Femto Maximum Sensitivity Substrate  Thermo Scientific 34096
Halt Protease Inhibitor Cocktail (100X)  Thermo Scientific 78429
Restore PLUS Western Blot Stripping Buffer Thermo Scientific 46430
Pierce Reversible Protein Stain Kit for PVDF Membranes Thermo Scientific 24585
10 st – 4–20% Criterion TGX Gel, 18 well, 30 µl  Bio-Rad Laboratories, Richmond, CA, USA 567-1094
Immun-Blot PVDF Membrane  Bio-Rad 162-0177
Precision Plus Protein Dual Color Standards  Bio-Rad 161-0374
2x Laemmli Sample Buffer Bio-Rad 161-0737
10x Tris/Glycine Bio-Rad 161-0771
2-Mercaptoethanol Bio-Rad 161-0710
Tween 20 Bio-Rad P1379-250ML
Band analysis with Quantity One version 4.6.3.software Bio-Rad
1% phosphatase inhibitor coctail Sigma-Aldrich, Saint Louis, Missouri, USA
Name Company Catalog Number Comments
Antibodies
mTOR (1:1000) Cell Signaling, Danvers, Massachusetts, USA 2983
Akt (1:1000) Cell Signaling, Danvers 9272
Secondary anti-rabbit and anti-mouse HRP-linked (1:10000) Cell Signaling, Danvers
Citrate synthase (CS) (1:1000) Gene tex, San Antonio, California, USA
OXPHOS (1:1000) Abcam, Cambridge, UK
Name Company Catalog Number Comments
Equipment – Analysis of muscle samples
Bullet Blender 1.5 for homogenizing Next Advance, New York, USA
Plate reader Tecan infinite F200 pro, Männedorf, Switzerland
Name Company Catalog Number Comments
Histochemistry
Mayer hematoxylin HistoLab, Västra Frölunda, Sweden  1820
Oil Red o Sigma-Aldrich, Saint Louis, Missouri, USA 00625-25y
NaCl Sigma-Aldrich 793566-2.5 kg
Cobalt Chloride Sigma-Aldrich 60818-50G
Amylase Sigma-Aldrich A6255-25MG
ATP Sigma-Aldrich A2383-5G
Glycine VWR-chemicals / VWR-international, Spånga, Sweden 101196X
Calcium Chloride VWR-chemicals / VWR-international 22328.262
Iso-pentane VWR-chemicals / VWR-international 24872.298
Etanol 96% VWR-chemicals / VWR-international 20905.296
NaOH MERCK, Stockholm, Sweden 1.06498.1000
Na acetate MERCK 1.06268.1000
KCl MERCK 1.04936.1000
Ammonium Sulphide MERCK U1507042828
Acetic acid 100% MERCK 1.00063.2511
Schiffs´ Reagent MERCK 1.09033.0500
Periodic acid MERCK 1.00524.0025
Chloroform MERCK 1.02445.1000
pH-meter LANGE HACH LANGE GMBH, Dusseldorf, Germany
Light microscope Olympus BH-2, Olympus, Tokyo, Japan
Cryostat  Leica CM1950 Leica Microsystems, Wetzlar, Germany
Leica software Leica Qwin V3 Leica Microsystems
Gel Doc 2000 – Bio-Rad, camera setup Bio-Rad Laboratories AB, Solna, Sweden 
Software program Quantift One – 4.6 (version 4.6.3; Bio Rad) Bio-Rad Laboratories AB, Solna, Sweden 
Name Company Catalog Number Comments
Oral glucos tolerance test, OGTT
Glukos APL 75 g APL, Stockholm, Sweden 323,188
Automated analyser Biosen 5140 EKF Diagnostics, Barleben, Germany
Insulin and C-peptide in plasma kit ELISA Mercodia AB, Uppsala Sweden 10-1132-01, 10-1134-01
Plate reader Tecan infinite F200 pro, Männedorf, Switzerland
Name Company Catalog Number Comments
Further equipment
Measures of fat-free-mass FFM-Tanita T5896, Tanita, Tokyo, Japan
Strength training equipment for all training exercises Cybex International Inc., Medway, Massachusetts, USA 
Cycle ergometer  Monark Ergometer 893E, Monark Exercises, Varberg, Sweden 
Heart rate monitor RS800, Polar Polar Electro OY, Kampele, Finland
Oxycin-Pro – automatic ergo-spirometric device Erich Jaeger GmbH, Hoechberg, Germany
Isokinetic dynamometer, Isomed 2000, knee muscle strength D&R Ferstl GmbH, Henau, Germany
CED 1401 data acquisition system and Signal software Cambridge Electronic Design, Cambridge, UK
Software for muscle strength analysis, Spike 2, version 7 Signal Hound, LA Center, WA, USA
Statistica software for statistical analyses Statistica, Stat soft. inc, Tulsa, Oklahoma, USA
Name Company Catalog Number Comments
Muscle biopsy equipment
Weil Blakesley conchotome Wisex, Mölndal, Sweden
Local anesthesia  Carbocain, 20 mL, 20 mg/mL; Astra Zeneca, Södertälje, Sweden 169,367
Surgical Blade Feather Safety Razor CO, LTD, Osaka, Japan  11048030

References

  1. Carrick-Ranson, G., et al. The effect of age-related differences in body size and composition on cardiovascular determinants of VO2max. J. Gerontol. A Biol. Sci. Med. Sci. 68 (5), 608-616 (2013).
  2. Peterson, C. M., Johannsen, D. L., Ravussin, E. Skeletal muscle mitochondria and aging: a review. J. Aging. 2012, 194821 (2012).
  3. Russell, A. P., Foletta, V. C., Snow, R. J., Wadley, G. D. Skeletal muscle mitochondria: a major player in exercise, health and disease. Biochim. Biophys. Acta. 1840 (4), 1276-1284 (2014).
  4. Conley, K. E., Jubrias, S. A., Esselman, P. C. Oxidative capacity and ageing in human muscle. J. Physiol. 526 (Pt 1), 203-210 (2000).
  5. Holloszy, J. O. Adaptation of skeletal muscle to endurance exercise. Med. Sci. Sports. 7 (3), 155-164 (1975).
  6. Menshikova, E. V., Ritov, V. B., Fairfull, L., Ferrell, R. E., Kelley, D. E., Goodpaster, B. H. Effects of exercise on mitochondrial content and function in aging human skeletal muscle. J. Gerontol. A Biol. Sci. Med. Sci. 61 (6), 534-540 (2006).
  7. Balakrishnan, V. S., et al. Resistance training increases muscle mitochondrial biogenesis in patients with chronic kidney disease. Clin. J. Am. Soc. Nephrol. 5 (6), 996-1002 (2010).
  8. Ferrara, C. M., Goldberg, A. P., Ortmeyer, H. K., Ryan, A. S. Effects of aerobic and resistive exercise training on glucose disposal and skeletal muscle metabolism in older men. J. Gerontol. A Biol. Sci. Med. Sci. 61 (5), 480-487 (2006).
  9. Frontera, W. R., Meredith, C. N., O’Reilly, K. P., Evans, W. J. Strength training and determinants of VO2max in older men. J. Appl. Physiol. (1985). 68 (1), 329-333 (1990).
  10. Toth, M. J., Miller, M. S., Ward, K. A., Ades, P. A. Skeletal muscle mitochondrial density, gene expression, and enzyme activities in human heart failure: minimal effects of the disease and resistance training. J. Appl. Physiol. (1985). 112 (11), 1864-1874 (2012).
  11. Zachwieja, J. J., Toffolo, G., Cobelli, C., Bier, D. M., Yarasheski, K. E. Resistance exercise and growth hormone administration in older men: effects on insulin sensitivity and secretion during a stable-label intravenous glucose tolerance test. Metabolism. 45 (2), 254-260 (1996).
  12. Davidson, L. E., et al. Effects of exercise modality on insulin resistance and functional limitation in older adults: a randomized controlled trial. Arch. Intern. Med. 169 (2), 122-131 (2009).
  13. DeFronzo, R. A., Tobin, J. D., Andres, R. Glucose clamp technique: a method for quantifying insulin secretion and resistance. Am. J. Physiol. 237 (3), E214-E223 (1979).
  14. Åstrand, P. O., Ryhming, I. A nomogram for calculation of aerobic capacity (physical fitness) from pulse rate during sub-maximal work. J. Appl. Physiol. 7 (2), 218-221 (1954).
  15. Björkman, F., Ekblom-Bak, E., Ekblom, &. #. 2. 1. 4. ;., Ekblom, B. Validity of the revised Ekblom Bak cycle ergometer test in adults. Eur. J. Appl. Physiol. 116 (9), 1627-1638 (2016).
  16. Seger, J. H., Westing, S. H., Hanson, M., Karlson, E., Ekblom, B. A new dynamometer measuring eccentric and eccentric muscle strength in accelerated, decelerated and isokinetic movements: validity and reproducibility. Eur. J. Appl. Physiol. 57 (5), 526-530 (1988).
  17. Westing, S. H., Seger, J. Y., Karlson, E., Ekblom, B. Eccentric and concentric torque-velocity characteristics of the quadriceps femoris in man. Eur. J. Appl. Physiol. 58 (1-2), 100-104 (1988).
  18. Aagaard, P., Simonsen, E. B., Andersen, J. L., Magnusson, P., Dyhre-Poulsen, P. Increased rate of force development and neural drive of human skeletal muscle following resistance training. J. Appl. Physiol. 93 (4), 1318-1326 (2002).
  19. Andersen, L. L., Aagaard, P. Influence of maximal muscle strength and intrinsic muscle contractile properties on contractile rate of force development. Eur. J. Appl. Physiol. 96 (1), 46-52 (2006).
  20. Henriksson, K. G. “Semi-open” muscle biopsy technique. A simple outpatient procedure. Acta Neurol. Scand. 59 (6), 317-323 (1979).
  21. Matsuda, M., DeFronzo, R. A. Insulin sensitivity indices obtained from oral glucose tolerance testing: comparison with the euglycemic insulin clamp. Diabetes Care. 22 (9), 1462-1470 (1999).
  22. American Diabetes, Association. Diagnosis and classification of diabetes mellitus. Diabetes Care. 28, S37-S42 (2005).
  23. Moberg, M., Apró, W., Ekblom, B., van Hall, G., Holmberg, H. C., Blomstrand, E. Activation of mTORC1 by leucine is potentiated by branched-chain amino acids and even more so by essential amino acids following resistance exercise. Am. J. Physiol. Cell Physiol. 310 (11), C874-C884 (2016).
  24. Antharavally, B. S., Carter, B., Bell, P. A., Krishna Mallia, ., A, A high-affinity reversible protein stain for Western blots. Anal. Biochem. 329 (2), 276-280 (2004).
  25. Brooke, M. H., Kaiser KK, . Muscle fiber types: how many and what kind?. Arch. Neurol. 23 (4), 369-379 (1970).
  26. Brooke, M. H., Kaiser, K. K. Three "myosin adenosine triphosphatase" systems: the nature of their pH lability and sulfhydryl dependence. J. Histochem. Cytochem. 18 (9), 670-672 (1970).
  27. Andersen, P. Capillary density in skeletal muscle of man. Acta Physiol. Scand. 95 (2), 203-205 (1975).
  28. Frank, P., Andersson, E., Pontén, M., Ekblom, B., Ekblom, M., Sahlin, K. Strength training improves muscle aerobic capacity and glucose tolerance in elderly. Scand. J. Med. Sci. Sports. 26 (7), 764-773 (2016).
  29. Blomstrand, E., Celsing, F., Fridén, J., Ekblom, B. How to calculate human muscle fibre areas in biopsy samples–methodological considerations. Acta Physiol. Scand. 122 (4), 545-551 (1984).
  30. Cuthbertson, D., et al. Anabolic signaling deficits underlie amino acid resistance of wasting, aging muscle. FASEB J. 19 (3), 422-424 (2005).
  31. Vincent, K. R., Braith, R. W., Feldman, R. A., Kallas, H. E., Lowenthal, D. T. Improved cardiorespiratory endurance following 6 months of resistance exercise in elderly men and women. Arch. Intern. Med. 162 (6), 673-678 (2002).
  32. Cadore, E. L., et al. Effects of strength, endurance, and concurrent training on aerobic power and dynamic neuromuscular economy in elderly men. J. Strength Cond. Res. 25 (3), 758-766 (2011).
  33. Jubrias, S. A., Esselman, P. C., Price, L. B., Cress, M. E., Conley, K. E. Large energetic adaptations of elderly muscle to resistance and endurance training. J. Appl. Physiol. (1985). 90 (5), 1663-1670 (1985).
  34. Benton, C. R., Wright, D. C., Bonen, A. PGC-1alpha-mediated regulation of gene expression and metabolism: implications for nutrition and exercise prescriptions. Appl. Physiol. Nutr. Metab. 33 (5), 843-862 (2008).

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Andersson, E. A., Frank, P., Pontén, M., Ekblom, B., Ekblom, M., Moberg, M., Sahlin, K. Improving Strength, Power, Muscle Aerobic Capacity, and Glucose Tolerance through Short-term Progressive Strength Training Among Elderly People. J. Vis. Exp. (125), e55518, doi:10.3791/55518 (2017).

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