Summary

На месте Характеристика Shewanella oneidensis MR1 биоплёнки Сальви и ToF-SIMS

Published: August 18, 2017
doi:

Summary

Эта статья представляет метод для выращивания биопленки в situ время полета вторичной ионной масс-спектрометрии для химического сопоставления в своем гидратированных состоянии, активизируемые microfluidic реактора, системы для анализа на интерфейсе жидкий вакуум. Shewanella oneidensis -MR-1 с зеленым флуоресцирование белками использовался в качестве модели.

Abstract

Бактериальные биопленки, поверхность ассоциированных сообществ, которые значительно учился понимать их собственного производства внеклеточного полимерных веществ (EPS) и их роли в микробиологии окружающей среды. Это исследование описывает метод культивировать биопленки привязанность к системе для анализа в жидкий вакуум интерфейс (Сальви) и достичь в situ химического сопоставления жизни биопленки, время полета вторичной ионной масс-спектрометрии (ToF-SIMS). Это делается путем культивирования бактерий как снаружи, так и внутри Сальви канал с нашей специализированной установки, а также оптические методы обработки изображений для обнаружения присутствия биопленки и толщина до анализа ToF-SIMS. Наши результаты показывают характеристика вершины Shewanella биопленки в своем естественном состоянии гидратированных, подчеркнув его локализованные водных кластеров окружающей среды, а также EPS фрагменты, которые резко отличаются от же биопленки обезвоженные состояние. Эти результаты демонстрируют возможности прорыва Сальви, что позволяет в situ биопленки изображений с вакуум основе химических изображений инструмент.

Introduction

Бактериальные биопленки, поверхность ассоциированных сообществ, которые развивались с течением времени как обороны для бактерий, чтобы выжить, различных неблагоприятных физических и механических раздражителей, которой клетки способны вложить и выжить во многих возможных средах. 1 , 2 биоплёнки значительно исследованы и имеют применение во многих областях, таких как биомедицина, биомедицинской инженерии, сельское хозяйство и промышленных исследований и разработок. 1 , 2 понимание химического сопоставления этих сложных микробных общин, включая их собственного производства внеклеточного полимерных веществ (EPS) и их местные воды в кластерной среде, имеет важное значение для получения точной и подробной Описание их деятельности в биологической области. 2

Биоплёнки существовать и развиваться в рамках сильно увлажненной государства. Это представляет большой проблемой при использовании вакуум-на основе анализа поверхности методы, такие как время полета вторичной ионной масс-спектрометрии (ToF-SIMS) из-за трудности в изучении летучих жидкостей в вакууме. В результате вакуум-на основе анализа поверхности методы были ограничены почти исключительно для изучения биопленки образцы только их сушеные штата. Однако изучая биопленки в состоянии сушеные препятствует точной расследование его истинное биологических микроокружения. Это часто вызывает радикальные изменения в EPS целостности и биопленки морфологии, которая была продемонстрирована после сравнения сухой биопленки массы спектральных результаты в situ жидкого исследования. 3 , 4 эта статья представляет собой решение для изучения биопленки в их естественном состоянии, увлажненной, используя использования нашей системы для анализа в жидкий вакуум интерфейс (Сальви),5,6 microfluidic реактора, содержит жидкость под ее тонкий кремния нитрид (SiN) мембраны в микроканальные из полидиметилсилоксан (PMDS), таким образом обеспечивая прямой доступ к Луч зонд вторичных ионов при сохранении структурной целостности жидкие матрицы в вакууме камеры. 7 , 8

S. oneidensis мутировал выразить зеленый флуоресценции белков (ГПУП) MR-1 был выбран в качестве модельного организма для этой процедуры иллюстрации биопленки благодаря метаболических универсальность и общего пользования в экологических и прикладной микробиологии, который был основан сильно на ее уникальной способностью для металлических сокращения и передачи внеклеточных электрона. 9 , 10 , 11 Кроме того, присутствие GFP позволило легко непрерывной биопленки толщина мониторинга через микроскопии флуоресцирования, используя фильтр флуоресцеин Изотиоцианаты (FITC). Наши предыдущие исследования показали доказательства этой бактерии пользу привязанность к окну грех, с использованием в operando визуализации флуоресценции для роста биопленки толщиной до 100 мкм. 4 , 12 в то время как этот документ будет обсуждать только подтверждение биопленки в присутствия посредством микроскопии флуоресцирования, Сальви совместим с другими оптических изображений методы, такие как супер резолюции флуоресценции изображений (т.е., структурированного освещения микроскопия (SIM)9) и Конфокальная лазерная сканирующая микроскопия (CLSM) изображений4). Оптических изображений может служить для измерения толщины биопленки и получить изображение 3D, форма биопленки, как представляется, подтверждает его толщины и его привязанность к окну грех. 9 хотя GFP был использован в анализе SIMS, S. oneidensis без GFP использовался для роста кривой, как только необходимые измерения оптической плотности и не требует каких-либо флуоресцентных изображений. Как правило разница между GFP с тегами и непомеченным видов в кривая роста является незначительным. Кроме того в то время как этот протокол использует S. oneidensis GFP MR-1 в качестве модельного организма для описания процедуры, эта процедура предназначена для любых бактериальный штамм, который могут быть необходимы для выращивания в пределах SALVI. Хотя, учитывая знания бактериальный штамм необходимо, некоторые условия роста, например, времени, температуры и кислорода среды может потребоваться быть изменены для размещения штамм бактерий, которые будут использоваться. Для среднего роста эта процедура использует «нанопроволоки» средний, tryptic соевый бульон (TSB) без декстрозы и tryptic соевый агар (TSA) без декстроза для культивирования. Состав «нанопроволоки» средний специально разработан для роста и для мониторинга расширения мембраны и periplasm S. oneidensis , появляются принимать форму небольших проводов, и средний состав был создана в рамках предыдущих исследований. 13 , 14

Наш предыдущий протокол в situ жидкого ToF-SIMS продемонстрировал преимущество что Сальви предлагает для иммобилизации белков и привязанность к грех, а также подробный протокол на ToF-SIMS анализа и данных сокращения. 12 вместо того, чтобы подтвердить данные этапов сокращения, этот документ будет служить вместо этого сосредоточить внимание на уникальный подход, создание и выращивание биопленки в рамках нашей микроканальные Сальви, а также изображений шаги для обнаружения присутствия биопленки и толщина предварительного для анализа ToF-SIMS. В то время как биопленки ранее были ограничены только высушено образцов в рамках палаты поверхности аналитические методы, основанные на вакуум, детальное EPS и биопленки химическое картирование живой биоплёнки теперь могут быть получены, на месте из-за этой новой возможности.

Protocol

1. Подготовка материалов Подготовка среднего трубки бутылки сыворотки (один в биопленки культуры и три необходимых за кривой роста необходимо) Примечание: как упоминалось во введении, любой рост среда подходит для обеспечивают питательные вещества, необходимые д…

Representative Results

Эти представительные результаты служат Показать как химического профиля прилагаемый биопленки могут быть определены и интерпретируется, как полученные через ToF-SIMS. После построения массовых спектров от сбора данных ToF-SIMS, кратко говорится в разделе процедуры, пик иде…

Discussion

После прививки в лаг фазы, важно проверить количество дней и температуры, при котором биопленки должен расти, прежде чем это здоровым и достаточно толстым для изображений, как описано в пункте 3.1. Эта процедура конкретно охватывает выращивание S. oneidensis MR1 биопленки при комнатной температ…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Мы благодарны Тихоокеанская северо-западная Национальная лаборатория (PNNL) земли и биологических наук (EBD) Миссия семян лаборатории направлены фонд научных исследований и развития (МЦРУ) для поддержки. Инструментальный доступ обеспечивается через общее предложение пользователя W. р Уили экологических молекулярных наук лаборатории (ЛСМЭ). ЛСМЭ является объектом национальной научной пользователя под эгидой Бюро биологических и экологических исследований (BER) в PNNL. Авторы благодарят доктор Дин Yuanzhao за доказательство читать рукопись и обеспечения полезной обратной связи. PNNL эксплуатируется Battelle для Доу под контракт де-AC05-76RL01830.

Materials

ToF-SIMS IONTOF TOF.SIMS 5 Resolution:>10,000 m/Δm for mass resolution;>4,000 m/Δm for high spatial resolution
System for Analysis at the Liquid Vacuum Interface (SALVI) Pacific Northwest National Laboratory N/A SALVI is a unique, self-contained, portable analytical tool that, for the first time, enables vacuum based scientific instruments such as time-of-flight secondary ion mass spectrometry (ToF-SIMS) to analyze liquid surfaces in their natural state at the molecular level.
-80°C Freezer New Brunswick Scientific N/A U410 Premium Energy Efficient Ultra-Low Temperature Freezer
4°C Refrigerator BioCold Scientific N/A COLDBOX1
Orbital Shaker New Brunswick Scientific N/A Innova 4900 Multi-Tier Environmental Shaker, set at 30 degrees Celsius for serum bottle and flask culturing, set at 150rpm.
Syringe Pump Cole-Parmer EW-74905-02 Cole-Parmer Syringe Pump, Infusion Only, Touchscreen Control 74905-02, used for injecting liquid into the tubing system and SALVI at a constant flowrate.
Incubator Barnstead International LT1465X3 Lab-Line incubator, set at 30 degrees Celsius for plate culturing.
Autoclave Getinge 533LS Used to sterilize PEEK fittings, tubing systems, serum vials, and medium. Model 533LS Vacuum Steam Sterilizer
Spectrophotometer Thermo Fisher Scientific 4001-000 GENESYS 20 spectrophotometer for OD600 readings of cuvettes for growth curves.
Biological Safety Cabinet Thermo Fisher Scientific 1385 1300 Series AZ Biological Safety Cabinet
Fluorescence Microscope Nikon N/A Nikon OPTIPHOT-2 fluorescence microscope with camera and super high pressure mercury lamp power supply.
pH Meter Mettler Toledo 51302803 Used to test the pH of the “nanowires” medium after finished and before autoclaving.
PEEK Union Valco ZU1TPK For connecting the inlet and outlet of SALVI, the syringe to the tubing system, and the inlet of the SALVI to the drip chamber of the tubing system.
5 Axes Sample Stage IONTOF N/A Stage is self-made for mounting SALVI in ToF-SIMS.
Barnstead Nanopure Water Purification System Thermo Fisher Scientific D11921 ROpure LP Reverse Osmosis filtration module (D2716)
Pipette Thermo Fisher Scientific 21-377-821 Range: 100 to 1,000 µL.
Pipette Tip Neptune 2112.96.BS 1,000 µL pipette tips
Razor Blade Handle Stanley N/A Stanley Bostitch Razor Blade Scraper with 5 Single-Edge Blades, used for cutting PTFE tubing
Syringe BD 309659 1 mL
Syringe BD 309657 3 mL
Syringe BD 309646 5 mL; Used for making the drip chamber
Syringe BD 309604 10 mL
Syringe BD 302830 20 mL
Disposable Pipette Thermo Fisher Scientific 13-678-11 25 mL Fisherbrand™ Sterile Polystyrene Disposable Serological Pipets with Magnifier Stripe, for filling serum bottles.
Electric Pipette Filler Pipet-aid P-57260 Vacuum pressure electric serological pipette filler
Serum Bottle Sigma 33109-U Holds approximately 69 mL of liquid for culture growth, optimum for use of 20mL culture per bottle.
Anaerobic Culture Tube VWR 89167-178 Anaerobic Tubes, 18 x 150 mm, Supplied with 20 mm Blue Butyl Rubber Stopper and Aluminum Seal.
Rubber Stopper Sigma 27235-U Silicone stopper, used for sealing serum bottles and for creating the tubing system/drip chamber.
Aluminum Crimp Seal (without septum) Sigma 27227-U Aluminum seal for top of serum bottle for use with serum bottle crimper.
Serum Bottle Aluminum Seal Crimper Wheaton 224307 30 mm crimper with standard seal.
PTFE Tubing Supelco 58697-U 1.58 mm OD x 0.5 mm ID 50 ft. PTFE Teflon tubing, used for creating the tubing system.
Disposable Cuvettes GMBH 759085D 1.5 Ml for use with spectrophotometer.
Needle BD 303015 22G; used for serum bottle injection.
Needle BD 305120 23G; used for punching-through rubber stopper to create drip tubing system.
Shewanella oneidensis MR-1 with GFP N/A N/A Matthysse AG, Stretton S, Dandie C, McClure NC, & Goodman AE (1996) Construction of GFP vectors for use in Gram-negative bacteria other than Escherichia coli. FEMS Microbiol Lett 145(1):87-94. 
Ethanol Thermo Fisher Scientific  S25310A 95% Denatured
TSA BD 212305 Tryptic soy agar for culturing the model organism (S. oneidensis) used in this protocol
PIPES Buffer Sigma P-1851 Used for “nanowires” medium {Hill, E.A. 2007}
Sodium Hydroxide Sigma S-5881 Used for “nanowires” medium {Hill, E.A. 2007}
Ammonium Chloride Sigma A-5666 Used for “nanowires” medium {Hill, E.A. 2007}
Potassium Chloride Sigma P-4504 Used for “nanowires” medium {Hill, E.A. 2007}
Sodium Phosphate Monobasic Sigma S-9638 Used for “nanowires” medium {Hill, E.A. 2007}
Sodium Chloride Thermo Fisher Scientific S271-3 Used for “nanowires” medium, and used to make mineral solution used for “nanowires” medium {Hill, E.A. 2007}
Sodium lactate Sigma L-1375 60%(w/w) syrup @ 98% pure, d=1.3 g/mL, 7M, used for “nanowires” medium {Hill, E.A. 2007}
Sodium Bicarbonate Sigma S-5761 Used to make ferric NTA solution, used for “nanowires” medium {Hill, E.A. 2007}
Nitrilotriacetic Acid Trisodium Salt Sigma N-0253 Used to make ferric NTA solution, used for “nanowires” medium {Hill, E.A. 2007}
Iron (III) Chloride Sigma 451649 Used to make ferric NTA solution, used for “nanowires” medium {Hill, E.A. 2007}
Magnesium Sulfate Sigma 208094 Used to make minerals solution, used for “nanowires” medium {Hill, E.A. 2007}
Manganese (II) Sulfate Monohydrate Sigma M-7634 Used to make minerals solution, used for “nanowires” medium {Hill, E.A. 2007}
Iron(II) Sulfate Heptahydrate Sigma 215422 Used to make minerals solution, used for “nanowires” medium {Hill, E.A. 2007}
Calcium Chloride Dihydrate Sigma 223506 Used to make minerals solution, used for “nanowires” medium {Hill, E.A. 2007}
Cobalt(II) Chloride Sigma 60818 Used to make minerals solution, used for “nanowires” medium {Hill, E.A. 2007}
Zinc Chloride Sigma 229997 Used to make minerals solution, used for “nanowires” medium {Hill, E.A. 2007}
Copper(II) Sulfate Pentahydrate Sigma C-8027 Used to make minerals solution, used for “nanowires” medium {Hill, E.A. 2007}
Aluminum Potassium Sulfate Dodecahydrate Sigma 237086 Used to make minerals solution, used for “nanowires” medium {Hill, E.A. 2007}
Boric Acid Sigma B-6768 Used to make minerals solution, used for “nanowires” medium {Hill, E.A. 2007}
Sodium Molybdate Dihydrate Sigma 331058 Used to make minerals solution, used for “nanowires” medium {Hill, E.A. 2007}
Nickel(II) Chloride Sigma 339350 Used to make minerals solution, used for “nanowires” medium {Hill, E.A. 2007}
Sodium Tungstate Dihydrate Sigma 14304 Used to make minerals solution, used for “nanowires” medium {Hill, E.A. 2007}
D-Biotin Sigma 47868 Used to make vitamin solution, used for “nanowires” medium {Hill, E.A. 2007}
Folic Acid Sigma F-7876 Used to make vitamin solution, used for “nanowires” medium {Hill, E.A. 2007}
Pyridoxine Hydrochloride Sigma P-9755 Used to make vitamin solution, used for “nanowires” medium {Hill, E.A. 2007}
Riboflavin (B2) Sigma 47861 Used to make vitamin solution, used for “nanowires” medium {Hill, E.A. 2007}
Thiamine Hydrochloride Sigma T-4625 Used to make vitamin solution, used for “nanowires” medium {Hill, E.A. 2007}
Nicotinic Acid Sigma N4126 Used to make vitamin solution, used for “nanowires” medium {Hill, E.A. 2007}
D-Pantothenic Acid Hemicalcium Salt Sigma 21210 Used to make vitamin solution, used for “nanowires” medium {Hill, E.A. 2007}
Vitamin B12 Sigma V-2876 Used to make vitamin solution, used for “nanowires” medium {Hill, E.A. 2007}
4-Aminobenzoic Acid Sigma A-9878 Used to make vitamin solution, used for “nanowires” medium {Hill, E.A. 2007}
Thioctic Acid Sigma T-1395 Used to make vitamin solution, used for “nanowires” medium {Hill, E.A. 2007}

References

  1. Renner, L. D., Weibel, D. B. Physicochemical regulation of biofilm formation. MRS Bull. 36 (5), 347-355 (2011).
  2. Flemming, H. C., Wingender, J. The biofilm matrix. Nat Rev Microbiol. 8 (9), 623-633 (2010).
  3. Aldeek, F., et al. Patterned hydrophobic domains in the exopolymer matrix of Shewanella oneidensis MR-1 biofilms. Appl Environ Microbiol. 79 (4), 1400-1402 (2013).
  4. Hua, X., et al. In situ molecular imaging of a hydrated biofilm in a microfluidic reactor by ToF-SIMS. Analyst. 139 (7), 1609-1613 (2014).
  5. Yu, X. Y., Yang, L., Cowin, J. P., Iedema, M., Zhu, Z. Systems and methods for analyzing liquids under vacuum. US Patent. , (2013).
  6. Yu, X. Y., Liu, B., Yang, L., Zhu, Z., Marshall, M. J. Microfluidic electrochemical device and process for chemical imaging and electrochemical analysis at the electrode-liquid interface in situ. US Patent. , (2014).
  7. Yang, L., Yu, X. Y., Zhu, Z. H., Thevuthasan, T., Cowin, J. P. Making a hybrid microfluidic platform compatible for in situ imaging by vacuum-based techniques. J Vac Sci Technol A. 29 (6), (2011).
  8. Yang, L., Yu, X. Y., Zhu, Z. H., Iedema, M. J., Cowin, J. P. Probing liquid surfaces under vacuum using SEM and ToF-SIMS. Lab Chip. 11 (15), 2481-2484 (2011).
  9. Ding, Y., et al. In Situ Molecular Imaging of the Biofilm and Its Matrix. Anal Chem. , (2016).
  10. Yang, J., Ghobadian, S., Montazami, R., Hashemi, N. . Proceedings of the Asme 11th Fuel Cell Science, Engineering, and Technology Conference, 2013. , (2013).
  11. Yu, F., Wang, C. X., Ma, J. Applications of Graphene-Modified Electrodes in Microbial Fuel Cells. Materials. 9 (10), (2016).
  12. Yu, J., Zhou, Y., Hua, X., Zhu, Z., Yu, X. Y. In Situ Characterization of Hydrated Proteins in Water by SALVI and ToF-SIMS. J Vis Exp. (108), e53708 (2016).
  13. Hill, E. A. . Effects of Electron-Transport-System Impairment on Hydrogen Gas Production by the Bacterium Shewanella oneidensis MR-1. , (2007).
  14. McCormick, A. J., et al. Biophotovoltaics: oxygenic photosynthetic organisms in the world of bioelectrochemical systems. Energy Environ Sci. 8 (4), 1092-1109 (2015).
  15. Liu, B., et al. In situ chemical probing of the electrode-electrolyte interface by ToF-SIMS. Lab Chip. 14, 855-859 (2014).
  16. Keune, K., Hoogland, F., Boon, J. J., Peggie, D., Higgitt, C. Evaluation of the “added value” of SIMS: A mass spectrometric and spectroscopic study of an unusual Naples yellow oil paint reconstruction. Int J mass Spectrom. 284 (1-3), 22-34 (2009).
  17. Lee, M. . Mass Spectrometry Handbook. , 988 (2012).
  18. Petrovic, M., Barcelo, D. Determination of anionic and nonionic surfactants, their degradation products, and endocrine-disrupting compounds in sewage sludge by liquid chromatography/mass spectrometry. Anal Chem. 72 (19), 4560-4567 (2000).
  19. Vickerman, J. C. Molecular Imaging and Depth Profiling by Mass Spectrometry–Sims, MALDI or DESI. Analyst. 136 (11), (2011).
  20. Weng, L. T., Bertrand, P., Stonemasui, J. H., Stone, W. E. E. Tof Sims Study of the Desorption of Emulsifiers from Polystyrene Latexes. Surf Interface Anal. 21 (6-7), 387-394 (1994).
  21. Peñuelas-Urquides, K., et al. Measuring of Mycobacterium tuberculosis crowth. A correlation of the optical measurements with colony forming units. Braz J Microbiol. 44 (1), 287-289 (2013).
  22. Dohnalkova, A. C., et al. Imaging hydrated microbial extracellular polymers: comparative analysis by electron microscopy. Appl Environ Microbiol. 77 (4), 1254-1262 (2011).
  23. Yang, L., et al. In situ SEM and ToF-SIMS analysis of IgG conjugated gold nanoparticles at aqueous surfaces. Surf Interface Anal. 46, 224-228 (2013).
  24. Yu, J. C., et al. Capturing the transient species at the electrode-electrolyte interface by in situ dynamic molecular imaging. Chem Commun. 52 (73), 10952-10955 (2016).
check_url/kr/55944?article_type=t

Play Video

Cite This Article
Komorek, R., Wei, W., Yu, X., Hill, E., Yao, J., Zhu, Z., Yu, X. In Situ Characterization of Shewanella oneidensis MR1 Biofilms by SALVI and ToF-SIMS. J. Vis. Exp. (126), e55944, doi:10.3791/55944 (2017).

View Video