Summary

Vurdering af de antikoagulerende og anti-inflammatoriske egenskaber i Endothelial celler ved hjælp af 3D cellekultur og ikke-antikoaguleret blod

Published: September 05, 2017
doi:

Summary

Vi præsenterer en in vitro- model, som giver mulighed for undersøgelse og analyse af koagulation i hele, ikke-antikoaguleret blod. Antikoagulation i systemet afhænger af den naturlige antikoagulation effekt af sunde endotelceller og endotel celle aktivering vil resultere i koagulation.

Abstract

In vivo, endotelceller er afgørende for den naturlige antikoagulation af cirkulerende blod. Derfor fører endotel celle aktivering til blodets koagulation. Dette fænomen er observeret i mange kliniske situationer, som organtransplantation i overværelse af præformerede anti-donor antistoffer, herunder xenotransplantation, samt i iskæmi/reperfusion skade. For at reducere dyreforsøg ifølge 3R standarder (reduktion, udskiftning og raffinement), in vitro- modellerne til at studere effekten i endothelial celle ville aktivering på blodets koagulation være ønskeligt. Dog giver fælles flatbed systemer i endothelial cellekultur et overflade-til-volumen forhold på 1-5 cm2 af endotel pr. mL blod, der ikke er tilstrækkelig for naturlige, endotel-medieret antikoagulation. Dyrkning endotelceller på microcarrier perler kan forhøje overflade-til-volumen forhold til 40-160 cm2/mL. Denne øgede ratio er tilstrækkelig til at sikre den “naturlige” antikoagulation af fuldblod, således at brugen af antikoagulantia kan undgås. Her er en in vitro- microcarrier-baseret system beskrevet at studere virkningerne af genetisk modifikation af svin endotelceller på koagulation af hele, ikke-antikoaguleret blod. I den beskrevne assay, primære svin aorta endotelceller, enten vildtype (WT) eller transgene for menneskelige CD46 og thrombomodulin, var vokset på microcarrier perler og derefter udsat for frisk tegnede ikke-antikoaguleret blod. Denne model giver mulighed for måling og kvantificering af cytokin frigivelse samt aktivering markører for supplement og koagulation i blodplasma. Derudover blev imaging aktiveret endotel celle og deposition af immunoglobuliner, supplement- og koagulation proteiner på de endothelialized perler udført af Konfokal mikroskopi. Denne analyse kan også bruges til at teste medicin, der er meningen for at forebygge endotel celle aktivering og dermed koagulation. Oven på dens potentiale til at nedbringe antallet af dyr, der anvendes for sådanne undersøgelser, er beskrevet analysen let at udføre og konsekvent reproducerbare.

Introduction

Den vaskulære endotel består af en éncellelag i endothelial celler (EF) som linje lumen af blodkar. I en fysiologisk tilstand, inaktiv EF er ansvarlig for opretholdelsen af en antikoagulans og anti-inflammatoriske miljø. 1 dette er medieret af udtryk af antikoagulans og anti-inflammatoriske proteiner på EF-overflade. For eksempel, EF aktivering skyldes iskæmi/reperfusion skader eller vaskulær afvisning af (xeno-) transplanteres organer resulterer i en ændring i endothelial overfladen fra en antikoagulans og anti-inflammatorisk tilstand til en Pro koagulant og pro-inflammatoriske stat. 1

For at studere den fascinerende og komplekse samspil mellem endotel og koagulation faktorer, in vitro- modeller, som efterligner som muligt i vivo situation er særdeles ønskværdige. En fælles begrænsning, der præger konventionelle in vitro- koagulation assays er brugen af antikoaguleret blod, hvilket gør analysen af koagulation-medierede effekter besværlig og endda recalcification værdier fuldblod kan ikke reproducere resultater fås med frisk ikke-antikoaguleret blod. 2 desuden i traditionelle flat-bed celle kultur systemer er det umuligt at udnytte endotelet antikoagulerende egenskaber som en tilstrækkelig endotel celleoverfladen pr. blodvolumen ikke kan nås. Modellen præsenteres her overvinder disse begrænsninger ved dyrkning af EF på overfladen af sfæriske microcarrier perler, så en EF overflade-til-blod forholdet mellem > 16 cm2/mL kan nås, som ligner situationen i små arterioler eller vener, og som blev beskrevet for at være tilstrækkelige til, at “naturlige” antikoagulation af blodet af EF overflade. 3 , 4 fuldblod kan bruges uden tilsat antikoagulantia i denne indstilling. Blodprøver kan indsamles under eksperimentet og cytokiner, koagulationsfaktorer og opløselige komplement aktivering markører kan påvises og kvantificeres. Desuden kan EF-belagt microcarrier perler analyseres for supplement og immunoglobulin aflejring samt udtryk for EF aktivering markører af Konfokal mikroskopi. En anden interessant program omfatter test af lægemidler, som formodes for at forhindre endotel celle aktivering og dermed koagulation. 5 selv om denne model ikke kan helt erstatte dyreforsøg, det tilbyder en metode til at teste specifikke funktionelle hypoteser ex vivo ved hjælp af celler og dermed mindske antallet af dyr, der bruges i grundforskning på iskæmi/reperfusion skade eller (xeno) transplantation.

Den beskrevne model blev brugt til at efterligne en xenotransplantation indstilling i hvilke svin aorta endothelial celler (PAEC) er vokset på microcarrier perler og inkuberes med hele, ikke-antikoaguleret blod. Forskellige transgene PAEC, bærer flere menneskelige gener såsom CD46 til regulering af komplementsystemet og/eller thrombomodulin (hTBM) for regulering af koagulation system, blev analyseret for deres antikoagulerende egenskaber. Endotel celle aktivering, supplement og koagulation systemer er stramt kontrolleret og indbyrdes forbundne. 6 det er derfor vigtigt at forstå, hvordan de forskellige transgene celler opfører sig efter udsættelse for humant blod vedhæftning molekyle udtryk og cytokin udgivelse, afgivelse af glycocalyx og tab af antikoagulerende proteiner. 7

Protocol

tyske Landrace svin (vildtype opdrættet i en lokal gård og transgene avlet på Institut for Molekylær dyr avl og bioteknologi, Ludwig-Maximilian Universitet, München, Tyskland), vejer mellem 30 kg til 40 kg, blev brugt i denne undersøgelse. Alle dyr har været opstaldet under standardbetingelser med vand og mad ad lib. Alle dyreforsøg blev udført efter U.K. dyr Act (videnskabelige procedurer) og NIH vejledning for pleje og brugen af forsøgsdyr, samt den schweiziske dyreværnslovgivning. Alle dyreforsøg…

Representative Results

Efter 7-10 dage af kultur i spinner kolbe (figur 1) var cellerne sammenflydende, der dækker hele overfladen af microcarrier perler (figur 2). Verifikation af den confluency stat er et vigtigt skridt, fordi en ikke-sammenflydende éncellelag af EF på microbeads vil føre til et markant fald i koagulationstid, i betragtning af microcarrier perler overflade er stærkt Pro koagulant (koagulation tid: 4 ± 1 min) (<strong class="xfi…

Discussion

Modellen præsenteres her er velegnet til koagulation relaterede undersøgelser giver mulighed for analyse af forskellige aspekter af koagulation og dens samspil med EF. 8 i xenotransplantation forskning, det er et nyttigt system til at teste de antikoagulerende egenskaber af forskellige genmanipulerede svin ECs efter inkubation med humant blod 9.

De mest kritiske trin i protokollen er dem at sikre komplet celle dækning (confluency) af microbead…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Denne undersøgelse blev støttet af den schweiziske National Science Foundation (SNSF, Grant No. 320030_156193). Forfatterne takke Dr. Benoît Werlen for at give Biosilon microcarrier perler. Vi takker også Prof. Hans Peter Kohler og Prof. André Haeberli hjælp til opsætning af microcarrier perle model.

Materials

PAEC Isolated from pig aorta in our Lab
Microcarrier beads (Biosilon) Thermo Fisher Scientific 160-250
Collagen I, Bovine Gibco A10644-01
DMEM Gibco 21885-025
Medium 199 Sigma M7528
RPMI Gibco 32404-014
Neutral tubes Sarstedt 02.1726.001
Polypropylene tubes Simport T406-2A
Stirrer flasks Tecnomara
Biological stirrer Brouwer MCS-104S
Rat anti CD31 R&D Systems MAB33871 Dilution 1:100
Goat anti-rat IgG-Cy3 Jackson Immuno Research 112-166-003 Dilution 1:500
Goat anti VE-cadherin Santa Cruz sc-6458 Dilution 1:100
Rabbit anti vWF DAKO A0082 Dilution 1:100
Dk anti Gt IgG – Alexa 488 Molecular Probes A11055 Dilution 1:500
Goat anti Rabbit – FITC Southern Biotech 4050-02 Dilution 1:500
DAPI Sigma 32670-25MG-F Dilution 1 µg/mL
0.05% Trypsin-EDTA Gibco 25300-054
FBS Gibco 10270-106 Concentration: 10% in cell culture medium
Needle Becton Dickinson 367286 Size: 0.8×19 mm (21ɢ 3/4")
Adapter Sarstedt 14.1205
Confocal microscope Carl Zeiss LSM 710
Image analysis software Image J Available for free at: https://imagej.net
Endothelial Cell Growth Medium SupplementMix PromoCell C-39216 2mL in 500mL of DMEM
Penicillin Streptomycin Gibco 15140-122 Concentration: 1% in cell culture medium
L-Glutamine Gibco 25030-024 Concentration: 1% in cell culture medium
Heparinun natricum Drossa Pharm AG Stock concentration: 5000 U.I./ mL
Chamberslides Bioswisstec AG 30108
CaCl2 x 2H2O Merck 2382.0500
MgCl2 x6 H2O Merck 1.5833.1000
Tween 20 Axon Lab AG 9005-64-5
Bovine Serum Albumin (BSA) Sigma A7030
Glycergel mounting medium Dako C0563

References

  1. Rajendran, P., et al. The vascular endothelium and human diseases. Int. J. Biol. Sci. 9, 1057-1069 (2013).
  2. Rajwal, S., Richards, M., O’Meara, M. The use of recalcified citrated whole blood – a pragmatic approach for thromboelastography in children. Pediatric Anesthesia. 14, 656-660 (2004).
  3. Kohler, H. P., Muller, M., Mombeli, M., Mtraub, M. M., Maeberli, M. The Suppression of the Coagulation of Nonanticoagulated Whole-Blood in-Vitro by Human Umbilical Endothelial-Cells Cultivated on Microcarriers Is Not Dependent on Protein-C Activation. Thromb. Haemost. 73, 719-724 (1995).
  4. Biedermann, B., Rosenmund, A., Muller, M., Kohler, H. P., Haeberli, A., Straub, P. W. Human endothelial cells suppress prothrombin activation in nonanticoagulated whole blood in vitro. J. Lab. Clin. Med. 124, 339-347 (1994).
  5. Banz, Y., Cung, T., Korchagina, E. Y., Bovin, N. V., Haeberli, A., Rieben, R. Endothelial cell protection and complement inhibition in xenotransplantation: a novel in vitro model using whole blood. Xenotransplantation. 12, 434-443 (2005).
  6. Cowan, P. J., d’Apice, A. J. Complement activation and coagulation in xenotransplantation. Immunology and Cell Biology. 87, 203-208 (2009).
  7. Reitsma, S., Slaaf, D. W., Vink, H., van Zandvoort, M. A. M. J., oude Egbrink, M. G. A. The endothelial glycocalyx: composition, functions, and visualization. Pflugers Arch. 454, 345-359 (2007).
  8. Wiegner, R., Chakraborty, S., Huber-Lang, M. Complement-coagulation crosstalk on cellular and artificial surfaces. Immunobiology. 221, 1073-1079 (2016).
  9. Bongoni, A. K., et al. Transgenic Expression of Human CD46 on Porcine Endothelium: Effect on Coagulation and Fibrinolytic Cascades During Ex Vivo Human-to-Pig Limb Xenoperfusions. Transplantation. 99, 2061-2069 (2015).
  10. Miyazaki, Y., et al. High shear stress can initiate both platelet aggregation and shedding of procoagulant containing microparticles. Blood. 88, 3456-3464 (1996).
  11. Wuensch, A., et al. Regulatory Sequences of the Porcine THBD Gene Facilitate Endothelial-Specific Expression of Bioactive Human Thrombomodulin in Single-and Multitransgenic Pigs. Transplantation. 97, 138-147 (2014).
check_url/kr/56227?article_type=t

Play Video

Cite This Article
Sfriso, R., Bongoni, A., Banz, Y., Klymiuk, N., Wolf, E., Rieben, R. Assessment of the Anticoagulant and Anti-inflammatory Properties of Endothelial Cells Using 3D Cell Culture and Non-anticoagulated Whole Blood. J. Vis. Exp. (127), e56227, doi:10.3791/56227 (2017).

View Video