Summary

Generation av en gen-stört Streptococcus mutans stam utan genen kloning

Published: October 23, 2017
doi:

Summary

Vi beskriver en lättköpt, snabba och relativt billig metod för generering av gen-stört Streptococcus mutans stammar; Denna teknik kan anpassas för generering av gen-stört stammar av olika arter.

Abstract

Typiska metoder för förtydligandet av funktionen av en särskild gen innebär jämförande fenotypiska analyser av vildtyps-stammen och en stam där genen av intresse har störts. En gen-störningar DNA konstruktion som innehåller en lämplig markör antibiotikaresistensgen är användbart för generering av gen-stört stammar i bakterier. Dock innebära konventionella byggmetoder, som kräver gen kloning steg, komplexa och tidskrävande protokoll. Här beskrivs en relativt lättköpt, snabb och kostnadseffektiv metod för riktade gene störningar i Streptococcus mutans . Metoden utnyttjar en 2-stegs fusion polymeras-kedjereaktion (PCR) för att generera störningar konstruera och elektroporation för genetisk transformation. Denna metod kräver inte en enzymatisk reaktion, än PCR, och erbjuder dessutom större flexibilitet när det gäller utformningen av den störningar konstruktion. Anställning av elektroporation underlättar utarbetandet av behöriga celler och förbättrar omvandling effektiviteten. Denna metod kan anpassas för generering av gen-stört stammar av olika arter.

Introduction

Gen funktion analys innebär vanligtvis en fenotypisk jämförelse mellan en vildtyp stam och en stam där en särskild gen av intresse har störts. Denna gen-störningar teknik har använts för gen funktion analyser i ett brett utbud av taxa, från bakterier till däggdjur. En gen-störningar konstruktion krävs för generering av den gen-stört stammen; Denna deoxiribonukleinsyra (DNA) konstruktion består av den markörgen för antibiotikaresistens som smält till uppströms och nedströms angränsande regioner av målgenen och införlivas i genomet via homolog rekombination. Gen-stört stammen kan isoleras med selektiva medier som innehåller antibiotika. Den konventionella metoden som används för konstruktion av gen-stört stammen kräver komplexa steg, till exempel förstärkning av målgenen av polymeraskedjereaktion (PCR), ligatur av genen in i en lämplig plasmid, matsmältningen med begränsning enzymer och religation att infoga antibiotika-resistens markörgen. Denna process är tidskrävande, tar flera dagar till flera veckor, beroende på framgången för varje steg. Utformningen av störningar konstruktioner är dessutom beroende av restriktionsenzym webbplatser av målgenen. Lös dessa problem genom har PCR-baserade DNA skarvning metoder1,2 för design av gen-stört mutanter av Dictyostelium discoideum3 och Synechocystis sp. PCC68034 rapporterats. I den aktuella studien utvecklades en metod för att generera en gen-stört streptokocker stam i en relativt snabb, lättköpt och billigt sätt, använda en modifierad PCR-baserade metod (designerat 2-steg fusion PCR) för byggande av störningar konstruera och elektroporation för genetisk transformation.

2-stegs fusion PCR kräver genomiskt DNA, markörgen för antibiotikaresistens som PCR-mall och fyra par lämpligt utformad oligonukleotiden primers. I det första steget (1st PCR), en 1-kb uppströms flankera region av målgenen, en 1-kb nedströms flankera region i målet förökas, och genen de antibiotika-resistens markör med PCR. 5′ regionerna både reverse primer och den framtida primern, för förstärkning av uppströms och nedströms inkluderar angränsande regioner, respektive 15 baser komplement till ändarna av genen markör. 5′ regionerna av både framåt och bakåt primers för markör gen förstärkning på samma sätt inkluderar 15 baser kompletterar den nedre änden av målgenen uppströms flankera regionen och den övre änden av målgenen, nedströms flankera regionen respektive. Därför innehålla tre förstärkta fragment överlappande 30-baspar regioner på webbplatsen fusion. I det andra steget (2nd PCR) utförs PCR med nästlade PCR primers använder tre fragmenten förstärks av 1st PCR som mallar. De kompletterande regionerna av mallarna är dessutom kopplade till varandra via 2nd PCR. Slutligen introduceras konstruktionen för homolog rekombination till vildtyp stam av elektroporation. Framgångsrik gen störningar kan verifieras genom PCR använder specifika primers. Även om den störningar konstruktionen är förstärkt med HiFi-DNA-polymeras, behövs inte ytterligare enzymatiska reaktioner, såsom DNA-ligering eller DNA matsmältningen, att generera konstruktionen. Dessutom kan en borttagna eller konserverade region på genomet väljas flexibelt enligt primer design.

I den nuvarande arbetet utfördes radering av hela kodande regionen av gtfC -genen, som kodar glukosyltransferas i Streptococcus mutans, för att demonstrera metoden snabb, enkel gen störningar i släktet streptokocker. Dessutom en gtfB-störd stam genererades på samma sätt. De glucosyltransferases som kodas av både gtfC och gtfB bidra till cariogenic dental biofilm utveckling5,6. Biofilm-bilda kapaciteterna av vildtyp stam (S. mutans WT), gtfC-stört stam (S. mutans ΔgtfC) och gtfB-störd stam (S. mutans ΔgtfB) utvärderades för jämförande fenotypiska analyser. Detta protokoll utsträcks tillämpningen av en två-stegs metod för genen avbrott en ytterligare arter och kan ändras för studier av geners funktion i ett bredare utbud av taxa.

Protocol

1. primer Design förbereda primers för 2-stegs fusion PCR och verifiering av genen störningar. Obs: Tabell 1 visar de primer sekvenser används i detta protokoll. figur 1 visar en Schematisk illustration av 2-stegs fusion PCR-metoden används för att generera S. mutans Δ gtfC. Design primers för ersättning av målregionen i genomet med Spektinomycin-motstånd genen (spc r) <sup class="x…

Representative Results

Figur 2 visar att storleken på varje produkt från 1st PCR, som observerats på 1% agarosgel, var bra överens med den förväntade storleken av ungefär 1 kb. Figur 3 visar gelelektrofores analysen av produkterna av 2nd PCR. Figur 4 visar S. mutans kolonier omvandlas med den störning konstruktionen och en gelelektrofores analys av kolonin PCR-produkter. Amplikoner fr…

Discussion

I detta protokoll, måste primers för 1st PCR utformas för att förstärka ungefär 1 kb uppströms och nedströms angränsande regioner i målregionen i genomet. Sådana länge flankera sekvenser är nödvändigt att förbättra effektiviteten i homolog rekombination.

Sekvenserna av primers (uppåt-bakåt, nedåt-framåt, spcr-framåt, och spcr-omvänd) i detta protokoll var bestäms automatiskt baserat på platsen för införlivandet av de…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Detta arbete stöds av Japan Society för främjande av vetenskap [Grant nummer 16 K 15860 till T.M. och 15 K 15777 till N.H.].

Materials

Streptococus mutans Stock strain in the lab. Wild-type strain (Strain UA159)
Genomic DNA extraction kit Zymo Research D6005
Bead-beating disruption apparatus Taitec GM-01
Synthetic genes Eurofins Genomics Custom-ordered Spectinomycin- and erythromycin-resistance gene
Thermal cycler Astec PC-708
PCR primers Eurofins Genomics Custom-ordered 35 bases in length
DNA polymerase Takara R045A High-fidelity DNA polymerase
Gel extraction kit Nippon Genetics FG-91202 DNA extraction from agarose gel
Gel band cutter Nippon Genetics FG-830
Spectrophotometer Beckman Coulter DU 800
Electroporator Bio-rad 1652100
Electroporation cuvette Bio-rad 1652086 0.2-cm gap
Anaeropack Mitsubishi Gas Chemical A-03 Anaerobic culture system
Brain heart infusion broth Becton, Dickinson 237500 Bacterial culture media
Spectinomycin Wako 195-11531 Antibiotics
Erythromycin Wako 057-07151 Antibiotics
Sucrose Wako 196-00015 For biofilm development
CBB R-250 Wako 031-17922 For biofilm staining

References

  1. Horton, R. M., Hunt, H. D., Ho, S. N., Pullen, J. K., Pease, L. R. Engineering hybrid genes without the use of restriction enzymes: gene splicing by overlap extension. Gene. 77 (1), 61-68 (1989).
  2. Horton, R. M., Cai, Z., Ho, S. M., Pease, L. R. Gene splicing by overlap extension: tailor-made genes using the polymerase chain reaction. BioTechniques. 54 (3), 129-133 (2013).
  3. Kuwayama, H., et al. PCR-mediated generation of a gene disruption construct without the use of DNA ligase and plasmid vectors. Nucleic Acids Res. 30 (2), E2 (2002).
  4. Sakurai, I., Mizusawa, N., Wada, H., Sato, N. Digalactosyldiacylglycerol is required for stabilization of the oxygen-evolving complex in photosystem II. Plant Physiol. 145 (4), 1361-1370 (2007).
  5. Aoki, H., Shiroza, T., Hayakawa, M., Sato, S., Kuramitsu, H. K. Cloning of a Streptococcus mutans glucosyltransferase gene coding for insoluble glucan synthesis. Infect Immun. 53 (3), 587-594 (1986).
  6. Hanada, N., Kuramitsu, H. K. Isolation and characterization of the Streptococcus mutans gtfC gene, coding for synthesis of both soluble and insoluble glucans. Infect Immun. 56 (8), 1999-2005 (1988).
  7. LeBlanc, D. J., Lee, L. N., Inamine, J. M. Cloning and nucleotide base sequence analysis of a spectinomycin adenyltransferase AAD(9) determinant from Enterococcus faecalis. Antimicrob Agents Chemother. 35 (9), 1804-1810 (1991).
  8. Macrina, F. L., Tobian, J. A., Jones, K. R., Evans, R. P., Clewell, D. B. A cloning vector able to replicate in Escherichia coli and Streptococcus sanguis. Gene. 19 (3), 345-353 (1982).
  9. Murata, T., Hanada, N. Contribution of chloride channel permease to fluoride resistance in Streptococcus mutans. FEMS Microbiol Lett. 363 (11), (2016).
  10. Perry, D., Wondrack, L. M., Kuramitsu, H. K. Genetic transformation of putative cariogenic properties in Streptococcus mutans. Infect Immun. 41 (2), 722-727 (1983).
  11. Lau, P. C., Sung, C. K., Lee, J. H., Morrison, D. A., Cvitkovitch, D. G. PCR ligation mutagenesis in transformable streptococci: application and efficiency. J Microbiol Methods. 49 (2), 193-205 (2002).
  12. Ge, X., Xu, P. Genome-wide gene deletions in Streptococcus sanguinis by high throughput PCR. J Vis Exp. (69), (2012).
check_url/56319?article_type=t&slug=generation-gene-disrupted-streptococcus-mutans-strain-without-gene

Play Video

Cite This Article
Murata, T., Okada, A., Matin, K., Hanada, N. Generation of a Gene-disrupted Streptococcus mutans Strain Without Gene Cloning. J. Vis. Exp. (128), e56319, doi:10.3791/56319 (2017).

View Video