Summary

Metoder för att studera förändringar i inneboende Protein aggregering med åldern i Caenorhabditis elegans

Published: November 26, 2017
doi:

Summary

Målet med den metoden som presenteras här är att utforska protein aggregation under normalt åldrande i modell organismen C. elegans. Protokollet utgör ett kraftfullt verktyg att studera de mycket olösligt stora aggregat som bildar med åldern och att avgöra hur förändringar i proteostasis påverkar protein aggregering.

Abstract

I de sista årtiondena, har förekomsten av neurodegenerativa sjukdomar som Alzheimers sjukdom (AD) och Parkinsons sjukdom (PD), vuxit. Dessa ålder-associerade sjukdomar kännetecknas av uppkomsten av protein aggregat med fibrillary struktur i hjärnan hos dessa patienter. Exakt varför normalt lösliga proteiner genomgå en aggregering process är fortfarande dåligt förstådd. Upptäckten att protein aggregering är inte begränsat till sjukdomsprocesser och istället en del av den normala åldrandeprocessen möjliggör studier av molekylära och cellulära mekanismer som reglerar protein aggregering, utan att använda ectopically uttryckt mänskliga sjukdomsassocierade proteiner. Här beskriver vi metoder för att undersöka inneboende protein aggregation i Caenorhabditis elegans genom kompletterande strategier. Först undersöker vi hur man odlar stora mängder ålder-synkroniserad C. elegans att få äldre djur och vi presenterar de biokemiska förfarandena för att isolera mycket-olöslig-stora aggregat. I kombination med en riktad genetisk knockdown, är det möjligt att dissekera rollen av en gen av intresse att främja eller hindra åldersberoende protein aggregation genom att använda antingen en omfattande analys med kvantitativa masspektrometri eller en kandidat-baserad analys med antikroppar. Dessa resultat bekräftas sedan av i vivo analys med transgena djur uttrycker lysrör-taggade aggregation-benägen proteiner. Dessa metoder bör bidra till att klargöra varför vissa proteiner är benägna att aggregat med ålder och i slutändan hur man håller dessa proteiner fullt fungerande.

Introduction

Protein Skellefteåsjukan och aggregering redovisas som ett kännetecken för flera neurodegenerativa sjukdomar som AD, PD, amyotrofisk lateralskleros (ALS), frontotemporal demens (FTD) och många andra. Till exempel, α-synuclein församlingar i amyloida fibriller som ackumuleras som Lewy förkroppsligar bestämt i den substantia nigraen av PD patienter, medan i ALS patienter TDP-43 eller FUS misfold form cytoplasmiska aggregat i degenererande motoriska nervceller. I varje av dessa neurodegenerativa sjukdomar misslyckas mekanismer för att upprätthålla protein homeostas eller proteostasis att förhindra ansamling av felveckning proteiner, följaktligen leder till sjukdom.

Proteostasis är avgörande för att säkerställa cellfunktioner och under normala förhållanden dessa reglerande mekanismer kontrollera tätt proteinsyntes, vikning och nedbrytning. Flera studier visar att med åldrande, många celler och organ förmåga att bevara protein homeostas äventyras gradvis och fysiologiska försämringen av de proteostasis nätverk med ålder är en viktig försvårande faktor för neurodegenerativa sjukdomar (ses i referenser1,2,3). Det faktum att protein kvalitetskontroll och cellulära svar på ovikta protein stress äventyras med ålder antyder att protein Skellefteåsjukan och aggregation kan vara en allmän följd av åldrande. Ja, vi och andra har visat att protein aggregering är inte begränsad till sjukdom och i stället en del av proteomet blir mycket tvättmedel-olöslig i äldre djur4,5,6,7 ,8,9,10. Beräkningsbiologi och i vivo analys visade att dessa fysiologiska åldersrelaterade aggregat liknar sjukdomen aggregat i flera aspekter5. Upptäckten av endogena, åldersberoende protein aggregering ger oss möjlighet att dissekera de molekylära och cellulära mekanismer som reglerar protein aggregering, utan att använda ectopically uttryckta mänskliga sjukdomsassocierade proteiner. För närvarande finns endast begränsad information om regleringen av utbredd protein olöslighet och om effekterna av detta dysreglering på hälsan hos organismen.

Den nematoder C. elegans är en av de mest omfattande studerade modellorganismerna i åldrande forskning som dessa djur har en relativt kort livslängd och visa många karaktäristiska åldrande funktioner hos högre organismer. Effekterna av åldrande på protein olöslighet har studerats i C. elegans av sekventiell biokemiska fraktionering baserat på differentiell löslighet, som ofta används för att extrahera sjukdom aggregat i neurodegeneration forskningsområdet11 . Av kvantitativa masspektrometri visades flera hundra proteiner att bli aggregation-benägen i C. elegans i avsaknad av sjukdom5. Här beskriver vi i detalj i protokollet för att växa stort antal maskar i flytande kultur och sekventiella extraktionen att isolera aggregerade proteiner för kvantifiering av masspektrometri och analys genom Western blot. Eftersom felveckning och aggregation-benägen proteiner ansamlas i åldern C. elegans gonader och masker förändringar i andra somatiska vävnader5,12,13, vi använder en gonad-mindre mutant för att fokusera analysen på protein olöslighet i icke-reproduktiva vävnader. Metoden presenteras möjliggör analys av mycket olösliga i stora aggregat som är olöslig i 0,5% SDS och pelleterat av relativt låg centrifugal hastighet. Alternativt, ett mindre stränga extraktion protokoll att samla också mindre och mer lösliga aggregat har varit publicerad någon annanstans10. Dessutom beskriver vi den metod som används för att bedöma aggregation i vivo i C. elegans.

Sammantaget kan dessa metoder i kombination med RNA-interferens (RNAi) utvärdera rollen av en gen av intresse för modulerande åldersberoende protein aggregering. För detta beskriver vi analysen av extrakt från unga och äldre maskar med och utan Nedslagning av ett specifikt protein av intresse med hjälp av RNAi. Dessa metoder bör vara ett kraftfullt verktyg för att avgöra vilka komponenter av proteostasis nätverket reglerar protein olöslighet. Flera interventioner såsom minskad insulin/insulin-liknande tillväxtfaktor (IGF) 1 signalering (IIS) har visat sig dramatiskt fördröja C. elegans åldrande14. Livslängd vägar inducera ofta protein-kvalitet kontrollmekanismer och således dessa vägar kan aktivt påverka andelen protein aggregering. Som ett exempel visar vi minskad inneboende protein aggregation i långlivade djur vid hämning av IIS väg7.

Protocol

Obs: För en bättre förståelse av förfarandet bifogas en schematisk av arbetsflödet (figur 1). 1. tillväxt av stort nummer av unga och äldre C. elegans utsätts för RNAi inriktning en gen av intresse Obs: Använd C. elegans temperatur-inducerad sterila gon-2(q388) mutanter (CF2253) att få stora åldern-synkroniserad populationer. Under alla steg är det viktigt att arbeta under delvis sterila förhålla…

Representative Results

Vi använde metoder presenteras här för att utvärdera hur långlivat djur med nedsatt IIS modulera åldersberoende protein aggregering. Genom Western blot (se steg 2.2, snabb olösligt protein utvinning för Western blot analys), Vi analyserade totala och olösliga proteinhalten i ung (dag 3 vuxen) och åldern (dag 18 av vuxenlivet) maskar på kontroll RNAi och RNAi inriktning insulinet / IGF-1-like receptor daf-2. Vi observerade inga stora förändringar i totala proteinnivå…

Discussion

Här rapporterar vi en metod att isolera mycket olösliga protein aggregat från åldrande C. elegans utsätts för RNAi för analys av masspektrometri och Western blotting. Vi visar att förbättra proteostasis genom att minska IIS kraftigt förhindrar åldersberoende protein aggregering. Genom att välja specifika aggregation-benägen proteiner till överuttrycka i C. elegans, är det möjligt att dissekera ytterligare mekanismer modulerande inneboende protein aggregering.

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Detta arbete stöds av medel från DZNE och en Marie Curie-programmets internationella återintegreringsbidrag (322120 till D.C.D.)

Materials

Fernbach culture flask  Corning 4425-2XL Pyrex, Capacity 2,800 ml, with 3 baffle indents
Membrane Screw Cap  Schott 1088655 GL45
Nutating Mixer VWR 444-0148
Separatory funnel Nalgene 4300-1000 Capacity 1,000 ml
1 ml syringe  BD Plastipak 300013
Gray needle, 27 G x ½ ", 0.4 mm x 13 mm BD Microlance 3 300635
Membrane filters 0.025 µM Millipore VSWP04700
pH strip Machery-Nagel 92110 pH-Fix 0-14
Protease Inhibitor Cocktail Roche 4693132001 Complete Mini EDTA-free tablets 
Octoxynol-9  Applichem A1388 Triton X-100
4-Morpholineethanesulfonic acid (MES) Sigma-Aldrich M1317
Nonylphenylpolyethylenglycol Applichem A1694 Nonidet P40 (NP40)
DNaseI Roche 04716728001 recombinant, RNase free
RNaseA Promega A7973 solution
Total protein blot staining Thermofisher S11791 Sypro Ruby protein blot stain
Total protein gel staining Thermofisher S12001 Sypro Ruby protein gel stain
TCEP (tris (2-carboxyethyl) phosphine hydrochloride) Serva 36970
Iodoacetamide Serva 26710
Ammoniumbicarbonate Sigma-Aldrich 09830
Sequencing Grade Modified Trypsin Promega V5111
Isobaric tags for relative and absolute quantitation Sciex 4352135 iTRAQ Reagents Multiplex Kit
Centrifuge Avanti J-26XP Beckmann Coulter 393126
Ultracentrifuge Optima Max-XP Beckmann Coulter 393315
Centrifuge 5424R Eppendorf 5404000413
Centrifuge 5702 Eppendorf 5702000329
Centrifuge Megafuge 40R Thermo Scientific 75004518
Concentrator Plus Eppendorf 5305000304 Centrifugal evaporator
Fluorescent stereo-microscope M165 FC  Leica With Planapo 2.0x objective
Dissection microscope Leica  Leica S6E
High magnification microscope Zeiss Axio Observer Z1 Zeiss With PlanAPOCHROMAT 20x objective and Zeiss Axio Cam MRm
Software
Image analysis software ImageJ
Analysis of mass spectrometry data Protein Prospector http://prospector.ucsf.edu/prospector/mshome.htm
E.coli strain
OP50 CGC
RNAi bacteria
L4440 Julie Ahringer RNAi library
C. elegans mutants
CF2253 CGC, strain name: EJ1158  Genotype: gon-2(q388)
C. elegans transgenics
DCD214 Della David's lab at DZNE Tübingen Genotype: N2; uqIs24[Pmyo-2::tagrfp::pab-1]
DCD215 Della David's lab at DZNE Tübingen Genotype: daf-2(e1370) III; uqIs24[Pmyo-2::tagrfp::pab-1]

References

  1. Balch, W. E., Morimoto, R. I., Dillin, A., Kelly, J. W. Adapting proteostasis for disease intervention. Science. 319, 916-919 (2008).
  2. David, D. C. Aging and the aggregating proteome. Frontiers in genetics. 3, 247 (2012).
  3. Hartl, F. U., Bracher, A., Hayer-Hartl, M. Molecular chaperones in protein folding and proteostasis. Nature. 475, 324-332 (2011).
  4. Ayyadevara, S., et al. Age- and Hypertension-Associated Protein Aggregates in Mouse Heart Have Similar Proteomic Profiles. Hypertension. 67, 1006-1013 (2016).
  5. David, D. C., et al. Widespread protein aggregation as an inherent part of aging in C. elegans. PLoS biology. 8, 1000450 (2010).
  6. Demontis, F., Perrimon, N. FOXO/4E-BP signaling in Drosophila muscles regulates organism-wide proteostasis during aging. Cell. 143, 813-825 (2010).
  7. Lechler, M. C., et al. Reduced Insulin/IGF-1 Signaling Restores the Dynamic Properties of Key Stress Granule Proteins during Aging. Cell reports. 18, 454-467 (2017).
  8. Reis-Rodrigues, P., et al. Proteomic analysis of age-dependent changes in protein solubility identifies genes that modulate lifespan. Aging cell. 11, 120-127 (2012).
  9. Tanase, M., et al. Role of Carbonyl Modifications on Aging-Associated Protein Aggregation. Scientific reports. 6, 19311 (2016).
  10. Walther, D. M., et al. Widespread Proteome Remodeling and Aggregation in Aging C. elegans. Cell. 161, 919-932 (2015).
  11. Lee, V. M., Wang, J., Trojanowski, J. Q. Purification of paired helical filament tau and normal tau from human brain tissue. Methods in enzymology. 309, 81-89 (1999).
  12. Goudeau, J., Aguilaniu, H. Carbonylated proteins are eliminated during reproduction in C. elegans. Aging cell. 9, 991-1003 (2010).
  13. Zimmerman, S. M., Hinkson, I. V., Elias, J. E., Kim, S. K. Reproductive Aging Drives Protein Accumulation in the Uterus and Limits Lifespan in C. elegans. PLoS genetics. 11, 1005725 (2015).
  14. Uno, M., Nishida, E. Lifespan-regulating genes in C. elegans. Npj Aging And Mechanisms Of Disease. 2, 16010 (2016).
  15. Sulston, J. H. . The Nematode Caenorhabditis elegans. , 587-606 (1988).
  16. Maine, E. M. RNAi As a tool for understanding germline development in Caenorhabditis elegans: uses and cautions. Developmental biology. 239, 177-189 (2001).
  17. Rauniyar, N., Yates, J. R. Isobaric labeling-based relative quantification in shotgun proteomics. Journal of proteome research. 13, 5293-5309 (2014).
  18. Brignull, H. R., Morley, J. F., Garcia, S. M., Morimoto, R. I. Modeling polyglutamine pathogenesis in C. elegans. Methods in enzymology. 412, 256-282 (2006).
  19. Fay, D. S. Classical genetic methods. WormBook. , 1-58 (2013).
  20. Brunquell, J., Bowers, P., Westerheide, S. D. Fluorodeoxyuridine enhances the heat shock response and decreases polyglutamine aggregation in an HSF-1-dependent manner in Caenorhabditis elegans. Mech Ageing Dev. 141, 1-4 (2014).
  21. Angeli, S., et al. A DNA synthesis inhibitor is protective against proteotoxic stressors via modulation of fertility pathways in Caenorhabditis elegans. Aging (Albany NY). 5, 759-769 (2013).
  22. Feldman, N., Kosolapov, L., Ben-Zvi, A. Fluorodeoxyuridine improves Caenorhabditis elegans proteostasis independent of reproduction onset. PLoS One. 9, 85964 (2014).
  23. Davies, S. K., Leroi, A. M., Bundy, J. G. Fluorodeoxyuridine affects the identification of metabolic responses to daf-2 status in Caenorhabditis elegans. Mech Ageing Dev. 133, 46-49 (2012).
  24. Luo, S., Kleemann, G. A., Ashraf, J. M., Shaw, W. M., Murphy, C. T. TGF-beta and insulin signaling regulate reproductive aging via oocyte and germline quality maintenance. Cell. 143, 299-312 (2010).
  25. Andux, S., Ellis, R. E. Apoptosis maintains oocyte quality in aging Caenorhabditis elegans females. PLoS genetics. 4, 1000295 (2008).
  26. Vilchez, D., et al. RPN-6 determines C. elegans longevity under proteotoxic stress conditions. Nature. 489, 263-268 (2012).
  27. Ghazi, A., Henis-Korenblit, S., Kenyon, C. A transcription elongation factor that links signals from the reproductive system to lifespan extension in Caenorhabditis elegans. PLoS genetics. 5, 1000639 (2009).
  28. Shemesh, N., Shai, N., Meshnik, L., Katalan, R., Ben-Zvi, A. Uncoupling the Trade-Off between Somatic Proteostasis and Reproduction in Caenorhabditis elegans Models of Polyglutamine Diseases. Front Mol Neurosci. 10, 101 (2017).
  29. Kaletsky, R., et al. The C. elegans adult neuronal IIS/FOXO transcriptome reveals adult phenotype regulators. Nature. 529, 92-96 (2016).
  30. Kawarabayashi, T., et al. Age-dependent changes in brain, CSF, and plasma amyloid (beta) protein in the Tg2576 transgenic mouse model of Alzheimer’s disease. The Journal of neuroscience : the official journal of the Society for Neuroscience. 21, 372-381 (2001).
  31. Kraemer, B. C., et al. Neurodegeneration and defective neurotransmission in a Caenorhabditis elegans model of tauopathy. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 100, 9980-9985 (2003).
check_url/kr/56464?article_type=t

Play Video

Cite This Article
Groh, N., Gallotta, I., Lechler, M. C., Huang, C., Jung, R., David, D. C. Methods to Study Changes in Inherent Protein Aggregation with Age in Caenorhabditis elegans. J. Vis. Exp. (129), e56464, doi:10.3791/56464 (2017).

View Video