Dieser Artikel beschreibt ein Mausmodell zur Untersuchung der Entwicklung der Myointimal Hyperplasie (MH) nach Verletzung der Aorta Ballon.
Die Verwendung von Tiermodellen ist unerlässlich für ein besseres Verständnis der MH, eine der Hauptursachen für arterielle Stenose. In diesem Artikel zeigen wir ein murinen Ballon Denudation Modell, welches mit etablierten Schiff Verletzungen Modelle in großen Tiere vergleichbar ist. Die Aorta Denudation Modell mit Ballonkathetern imitiert die klinischen Einstellung und führt zu vergleichbaren pathobiological und physiologischen Veränderungen. Kurz, nachdem Sie haben einen horizontalen Schnitt in die Aorta Abdominalis, ein Ballonkatheter wird eingefügt in das Gefäß, aufgeblasen, und Doppelthebel eingeführt. Inflation des Ballons führt zur Schädigung der Intima und Overdistension des Schiffes. Nach dem Entfernen des Katheters, wird die Aorta Inzision mit einzelnen Stiches geschlossen. In diesem Artikel gezeigte Modell ist reproduzierbar, einfach durchzuführen, und schnell und zuverlässig festgestellt werden können. Es eignet sich besonders für die Bewertung der teure experimentelle Therapeutika, die auf wirtschaftliche Weise angewendet werden können. Durch die Verwendung verschiedener Knockout-Maus-Stämmen, kann die Auswirkungen verschiedener Gene auf MH Entwicklung bewertet werden.
Arterielle Stenose in den koronaren und peripheren Arterien hat einen großen Effekt auf die Morbidität und Mortalität von Patienten1. Eine zugrunde liegende Pathomechanismus ist Myointima Hyperplasie (MH), charakterisiert durch erhöhte Proliferation, Migration und Synthese von Proteinen der extrazellulären Matrix von vaskulären glatten Muskelzellen Zellen (SMC)2. SMC befinden sich in der Medienschicht des Schiffes und nach Stimulation an die Oberfläche des Gefäßlumens zu migrieren. Stimulierende Signale sind Wachstumsfaktoren, Zytokine, Zell-Zell-Kontakt, Lipide, Komponenten der extrazellulären Matrix und mechanische Scherkräfte und Strecken Kräfte3,4,5,6. Verletzungen der Gefäßwand, pathologische oder iatrogene, Endothelzellen und glatten Muskelzellen Zellschäden verursachen Entzündungsreaktionen zu stimulieren und somit zu MH7führen.
Verschiedene Tiermodellen sind derzeit für arterielle Verletzungen und Myointima Hyperplasie zu studieren. Große Tiere wie Schweine oder Hunde haben den Vorteil, eine ähnliche Arterie und koronare Anatomie mit Menschen zu teilen und eignen sich besonders für Studien zur Untersuchung der Angioplastie Techniken, Verfahren und Geräte8. Schwein-Modelle weisen jedoch den Nachteil der höheren Thrombogenität9,10, während Hunde nur eine milde Reaktion auf Schiff Verletzungen11haben. Darüber hinaus müssen alle großen Tiermodellen Spezialgehäuse, Ausrüstung und Personal, die sind mit hohen Kosten verbunden und stehen nicht immer an einer Hochschule. Kleiner Tiermodelle sind Ratten und Mäuse. Haben im Vergleich zu Ratten, Mäuse, die Vorteile der geringeren Kosten und die Existenz einer Vielzahl von k.o.-Modelle. Das Modell in diesem Video beschrieben kombinierbar mit ApoE-/-Mäuse mit einer westlichen Diät gefüttert, genau die klinische Einstellung der Angioplastie in atherosklerotischen Schiffe12imitieren. Frühere Modelle induziert Gefäßverletzung per Draht Verletzungen13, Fluid Austrocknung14, Frühjahr15oder Manschette Verletzungen16. Da die Art der Verletzung erheblich die Entwicklung und die Verfassung der MH auswirken wird, ist mit einem Ballonkatheter induzieren Schiff Verletzungen der beste Weg, um der klinischen Einstellung zu imitieren.
In diesem Artikel beschreiben wir eine neuartige Methode zur MH mit einem Ballonkatheter bei Mäusen zu induzieren. Die Verwendung eines Ballon-Katheters (1,2 x 6 mm) mit einem RX-Anschluss (Abbildung 1A) ermöglicht das Kratzen der Intima Schicht und gleichzeitig die Induktion von einem Overdistension des Schiffes. Beide Faktoren sind wichtige Auslöser für die Entwicklung von MH. Die Beobachtungszeit für dieses Modell beträgt 28 Tage17.
Dieser Artikel zeigt ein Mausmodell zur Untersuchung der Entwicklung der Myointimal Hyperplasie und ermöglicht die Erforschung der zugrunde liegenden pathologischen Prozesse und die Erprobung neuer Medikamente oder therapeutische Optionen.
Der wichtigste Schritt in diesem Protokoll wird die Denudation der Aorta. Besonderer Sorgfalt sollte bei diesem Schritt bezahlt werden, da übermäßige Denudation zur Bildung von Aneurysmen und Modell Scheitern führt. Auf der anderen Seite, wenn Denudatio…
The authors have nothing to disclose.
Die Autoren danken Christiane Pahrmann für ihre technische Unterstützung.
D.w. wurde von der Max-Kade-Foundation unterstützt. T.D erhalten Zuschüsse von der Else Kröner-Stiftung (2012_EKES.04) und der Deutschen Forschungsgemeinschaft (DE2133/2-1_. S. S. erhielt Stipendien von der Deutschen Forschungsgemeinschaft (DFG; SCHR992/3-1, SCHR992/4-1).
10-0 Ethilon suture | Ethicon | 2814G | |
3 mL Syringe | BD Medical | 309658 | |
37% HCl | Sigma-Aldrich | H1758 | |
5-0 prolene suture | Ethicon | EH7229H | |
6-0 prolene suture | Ethicon | 8706H | |
Acid Fuchsin | Sigma-Aldrich | F8129-25G | Trichrome staining |
Antigen retrieval solution | Dako | S1699 | |
Azophloxin | Waldeck | 1B-103 | Trichrome staining |
Bepanthen Eye and Nose ointment | Bayer | 1578675 | Eye ointment |
Betadine Solution | Betadine Purdue Pharma | NDC:67618-152 | |
C57BL/6J | Charles River | Stock number 000664 | |
Clamp applicator | Fine Science Tools | 18056-14 | |
Collagen 3 | abcam | ab7778 | Antibody |
DAPI | Thermo Fischer | D1306 | |
Donkey anti-Goat IgG AF555 | Invitrogen | A21432 | Secondary antibody |
Donkey anti-Rabbit IgG AF488 | Invitrogen | A21206 | Secondary antibody |
Donkey anti-Rabbit IgG AF488 | Invitrogen | A11055 | Secondary antibody |
Donkey anti-Rabbit IgG AF555 | Invitrogen | A31572 | Secondary antibody |
Ethanol 70% | Th. Geyer | 2270 | |
Ethanol 96% | Th. Geyer | 2295 | |
Ethanol absolute | Th. Geyer | 2246 | |
FAP | abcam | ab28246 | Antibody |
Forceps fine | Fine Science Tools | 11251-20 | |
Forceps standard | Fine Science Tools | 11023-10 | |
Glacial Acetic Acid | Sigma-Aldrich | 537020 | |
Hair clipper | WAHL | 8786-451A ARCO SE | |
Heparin | Rotexmedica | PZN 3862340 | 25.000 I.E./mL |
High temperature cautery kit | Bovie | 18010-00 | |
Image-iT FX Signal Enhancer | Invitrogen | I36933 | Blocking solution |
Light Green SF | Waldeck | 1B-211 | Trichrome staining |
Microsurgical clamp | Fine Science Tools | 18055-04 | Micro-Serrefine – 4mm |
MINI TREK Coronary Dilatation Catheter 1.20 mm x 6 mm / Rapid-Exchange | Abbott | 1012268-06U | |
Molybdatophosphoric acid hydrate | Merck | 1.00532.0100 | Trichrome staining |
NaCl 0,9% | B.Braun | PZN 06063042 Art. Nr.: 3570160 | |
Needle holder | Fine Science Tools | 12075-14 | |
Novaminsulfon | Ratiopharm | PZN 03530402 | Metamizole |
Orange G | Waldeck | 1B-221 | Trichrome staining |
Paraffin | Leica biosystems | REF 39602004 | |
PBS pH 7,4 | Gibco | 10010023 | |
PFA 4% | Electron Microscopy Sciences | #157135S | |
Ponceau S solution | Serva Electrophoresis | 33427 | Trichrome staining |
Primary antibody diluent | Dako | S3022 | |
Prolong Gold Mounting solution | Thermo Fischer | P36930 | Mounting solution for immunofluorescence stained slides |
Replaceable Fine Tip | Bovie | H101 | |
Resorcin-Fuchsin Weigert | Waldeck | 2E-30 | Trichrome staining |
Rimadyl | Pfizer | 400684.00.00 | Carprofen |
Scissors | Fine Science Tools | 14028-10 | |
Scissors Vannas-style | Fine Science Tools | 15000-03 | |
Secondary antibody diluent | Dako | S0809 | |
Fast acting Adhesive MINIS 3x1g | UHU | 45370 | Cyanoacrylate |
Slide Rack | Ted Pella | 21057 | |
SM22 | abcam | ab10135 | Antibody |
SMA | abcam | ab21027 | Antibody |
Staining dish | Ted Pella | 21075 | |
Surgical microscope | Leica | M651 | |
Tabotamp fibrillar | Ethicon | 431962 | Absorbable hemostat |
Transpore Surgical Tape | 3M | 1527-1 | |
U-100 Insulin syringe | BD Medical | 324825 | |
Vessel Dilator | Fine Science Tools | 18603-14 | |
Vitro-Clud | Langenbrinck | 04-0001 | |
Weigerts iron hematoxylin Kit | Merck | 1.15973.0002 | Trichrome staining |
Xylene | Th. Geyer | 3410 |