Summary

Brug af Synaptic zink histokemi at afsløre forskellige regioner og bladplader i udviklingslandene og voksen hjerne

Published: October 29, 2017
doi:

Summary

Vi beskriver en histokemiske procedure, der afslører karakteristiske laminar og areal zink farvning mønstre i forskellige hjerneregioner. Den zink-farvning mønster kan bruges sammen med andre anatomiske markører til pålideligt skelne lag og regioner i udviklingslandene og voksen hjerne.

Abstract

Karakterisering af anatomiske og funktionelle hjernen organisation og udvikling kræver nøjagtig identifikation af særskilte neurale kredsløb og regioner i hjernen, umodne og voksen. Her beskriver vi en zink histokemiske farvnings-procedure, der afslører forskelle i farvning mønstre mellem forskellige lag og hjerneregioner. Andre har udnyttet denne procedure ikke blot til at afsløre fordelingen af zink-holdige neuroner og kredsløb i hjernen, men også med held afgrænse areal og laminar grænser i den udvikling og voksen hjerne i flere arter. Her vi illustrere dette farvning procedure med billeder fra udviklingslande og voksne ilder hjerner. Vi afslører en zink-farvning mønster, der fungerer som en anatomisk markør for områder og lag, og pålideligt kan bruges til at skelne mellem visual kortikale områder i udviklingslandene og voksne visuelle cortex. Hovedformålet med denne protokol er at præsentere en histokemiske metode, der giver mulighed for nøjagtig identifikation af lag og regioner i udviklingslandene og voksen hjernen hvor andre metoder mislykkes hertil. Sekundært, sammenholdt med densitometric billedanalyse, denne metode gør det muligt at vurdere fordelingen af synaptic zink til at afsløre potentielle ændringer i hele udvikling. Denne protokol beskriver i detaljer de reagenser, værktøjer og nødvendige skridt til at successivt pletten frosne hjernen sektioner. Selv om denne protokol er beskrevet ved hjælp af ilder hjernevæv, kan det nemt tilpasses til brug i rotter, katte eller aber såvel som i andre områder af hjernen.

Introduction

Histologiske pletter har traditionelt været brugt til at støtte i identifikationen af kortikale områder i forskellige arter ved at afsløre forskelle i arkitektonisk funktioner. Histokemiske metoder såsom kombineret brug for Nissl stof, cytokrom oxidase (CO) reaktivitet eller myelin kan vise sig frugtbar, som de afslører lignende areal grænser i den voksne hjerne. Men disse histokemiske pletter ikke altid tilstrækkeligt afsløre klare grænser mellem kortikale områder og lag i den umodne hjerne.

I det centrale nervesystem har zink flere kritiske funktioner, der omfatter stabilisering DNA struktur, som et enzym cofaktor, deltager i talrige regulerende funktioner, og fungerer som en neuromodulator gennem sin tilstedeværelse i synaptiske vesikler 1. synaptisk zink er enestående, da det kan visualiseres, histologiske metoder, protein-bundet zink kan ikke være visualiseret2. Denne funktion er blevet udnyttet til at afsløre synaptic zink mønster i forskellige kortikale regioner og synaptic zink histokemi har været anvendt i en række undersøgelser. Et undersæt af glutamatergic neuroner i hjernebarken indeholder zink i de præsynaptiske vesikler i deres axon terminaler3,4. Histokemiske undersøgelser har afsløret en heterogen fordeling af synaptic zink i hjernebarken5,6,7. Der synes at være en anderledes areal og laminar fordeling af histochemically reaktive zink i forskellige kortikale regioner (f.eks.visuel versus somatosensoriske cortex), eller lag (f.eks.zink niveauer i supragranular og infragranular lag af primære visuelle cortex er væsentligt højere end i thalamocortical input lag IV med relativt lav synaptic zink niveauer)5,8,9. Heterogenitet i synaptic zink farvning observeret i cortex er specielt fordelagtig, da det letter areal og laminar identifikation.

Her præsenterer vi en detaljeret beskrivelse af en synaptic zink histokemiske procedure, som er en modificeret version af Danscher’s 1982 metode10. Denne metode udnytter selenite injiceres intraperitoneal (IP) til dyr som en chelatdanner. Selenite rejser til hjernen til at reagere med puljer af gratis zink fundet i blærer af et undersæt af glutamatergic synapser i hjernen. Denne reaktion giver et bundfald, der kan forbedres efterfølgende af sølv udvikling2,10,11.

Denne procedure afslører laminar og areal mønstre af synaptic zink farvning; densitometric analyse kan anvendes til at vurdere disse mønstre både kvalitativt og kvantitativt i de voksne og umodne hjerne at studere virkningerne af andre interventioner, såsom sensorisk, miljømæssige, farmakologiske eller genetiske manipulationer. Derudover kan man også ønsker at vurdere potentielle udviklingsmæssige ændringer i fordelingen af synaptic zink i andre kortikale eller subkortikale strukturer i andre modelsystemer. De kvantitative oplysninger, der densitometric analyse giver i denne metode kan være fordelagtigt for følgende hjernens udvikling over tid. Denne protokol giver en følgesvend til andre immuno- og histokemiske markører for at afsløre laminar og areal grænser.

Protocol

følgende protokol følger dyrs pleje retningslinier af institutionelle dyrs pleje og brug udvalg (IACUC) på The City College of New York, som i overensstemmelse med alle relevante statslige og føderale retningslinjer. Anæstesi er relevant for fritter, og bør være tilpasset arter studerede. figur 1: Flowchart beskriver de vigtigste trin involveret i de 3 fase…

Representative Results

De vigtigste trin involveret i denne protokol at plette hjernen sektioner for synaptic zink er præsenteret i et rutediagram i figur 1. Protokollen kan opdeles i tre faser: 1) Perfusion og væv samling, 2) væv forberedelse og farvning, og 3) zink histokemi. Kort, under den første fase af protokollen, dyret er bedøvede og injiceres IP med den passende dosis af natrium selenite. Efter et tilstrækkeligt tidsrum (ideelt 60-90 min.), er dyret efterfølgende eu…

Discussion

Den nuværende undersøgelse beskæftiger en histokemiske teknik baseret på en modificeret version af Danscher (1982) metode10, hvorved synaptic zink lokalisering kan opdages og visualiseret i hjernen. Denne metode virker primært ved at indsprøjte dyr med zink chelator natrium selenite (Na2SeO3) (15 mg/kg). Efter injektion, selenite rejser til hjernen og binder sig til gratis zink, der er lokaliseret til præsynaptiske vesikler zink indeholdende neuroner. Zink-ioner bundet…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Dette arbejde blev støttet af tilskud fra National Center for Research ressourcer (2G12RR03060-26A1); National Institute on mindretal sundhed og sundhedsmæssige forskelle (8G12MD007603-27) fra de nationale kontorer i sundhed; Professionel personale kongres-City University of New York (PSC-CUNY); og Fakultet Research Grant (FRG II) American University i Sharjah. Vi takker Vidyasagar Sriramoju for at indføre os til disse metoder.

Materials

Euthasol (Euthanasia solution) Henry Schein 710101
Sodium selenite Sigma-Aldrich 214485
Ketamine (Ketaved) Henry Schein 48858 100 mg/ml injectables
Xylazine (Anased) Henry Schein 33198 100 mg/ml injectables
Paraformaldehyde Sigma-Aldrich F8775 Dilute to 4%
Gum arabic Sigma-Aldrich G9752-500G
Citric acid Sigma-Aldrich C1909
Sodium citrate Sigma-Aldrich W302600
Hydroquinone Sigma-Aldrich H9003
Silver lactate Sigma-Aldrich 85210
Fish gelatine Sigma-Aldrich G7765
Cytochrome c Sigma-Aldrich C2506 (Type III, from equine heart)
Catalse Sigma-Aldrich C10
Sucrose Domino
Xylene Fisher Scientific X5P-1GAL
Permount Fisher Scientific SP15-500
100% Ethanol Fisher Scientific A406-20 Used for dehydration prior to slide mounting
Coverslips Brain Research Laboratories #3660-1
Frosted unsubbed slides Brain Research Laboratories #3875-FR
Microtome American Optical Company 860
Microscope Olympus BX-60
Adope Photoshop Adobe Systems, San Jose, CA To assemble images
ImageJ Free software can be downloaded at http://rsb.info.nih.gov/ij/ For densometric measurements
Plastic tray Any standard plastic tray may be used to immerse slides in developer solution
Hot plate Any standard hotplate may be used

References

  1. Nakashima, A., Dyck, R. H. Zinc and cortical plasticity. Brain Res. Rev. 59, 347-373 (2009).
  2. Frederickson, C. J. Neurobiology of zinc and zinc-containing neurons. Int Rev Neurobiol. 31, 145-238 (1989).
  3. Beaulieu, C., Dyck, R., Cynader, M. Enrichment of glutamate in zinc-containing terminals of the cat visual cortex. NeuroReport. 3 (10), 861-864 (1992).
  4. Martinez-Guijarro, F. J., Soriano, E., Del Rio, J. A., Lopez-Garcia, C. Zinc-positive boutons in the cerebral cortex of lizards show glutamate immunoreactivity. J Neurocytol. 20 (10), 834-843 (1991).
  5. Dyck, R., Beaulieu, C., Cynader, M. Histochemical localization of synaptic zinc in the developing cat visual cortex. J Comp Neurol. 329 (1), 53-67 (1993).
  6. Garrett, B., Geneser, F. A., Slomianka, L. Distribution of acetylcholinesterase and zinc in the visual cortex of the mouse. Anat Embryol. (Berl). 184 (5), 461-468 (1991).
  7. Garrett, B., Osterballe, R., Slomianka, L., Geneser, F. A. Cytoarchitecture and staining for acetylcholinesterase and zinc in the visual cortex of the Parma wallaby (Macropus parma). Brain Behav Evol. 43 (3), 162-172 (1994).
  8. Dyck, R., Cynader, M. An interdigitated columnar mosaic of cytochrome oxidase, zinc, and neurotransmitter-related molecules in cat and monkey visual cortex. Proc. Natl. Acad. Sci. (90), 9066-9069 (1993).
  9. Land, P. W., Akhtar, N. D. Experience-dependent alteration of synaptic zinc in rat somatosensory barrel cortex. Somatosens Mot Res. 16 (2), 139-150 (1999).
  10. Danscher, G. Exogenous selenium in the brain: a histochemical technique for light and electron microscopic localization of catalytic selenium bonds. Histochemistry. 76, 281-293 (1982).
  11. Danscher, G., Howell, G., Perez-Clausell, J., Hertel, N. The dithizone, Timm’s sulphide silver and the selenium methods demonstrate a chelatable pool of zinc in CNS: a proton activation (PIXE) analysis of carbon tetrachloride extracts from rat brains and spinal cords intravitall treated with dithizone. Histochemistry. 83, 419-422 (1985).
  12. Gallyas, F. Silver staining of myelin by means of physical development. Neurol Res. 1 (2), 203-209 (1979).
  13. Wong-Riley, M. Changes in the visual system of monocularly sutured or enucleated cats demonstrable with cytochrome oxidase histochemistry. Brain Res. 171 (1), 11-28 (1979).
  14. Miró-Bernié, N., Ichinohe, N., Perez-Clausell, J., Rockland, K. S. Zinc-rich transient vertical modules in the rat retrosplenial cortex during postnatal development. J Neurosci. 138 (2), 523-535 (2006).
  15. Ichinohe, N., Rockland, K. S. Distribution of synaptic zinc in the macaque monkey amygdala. J Comp Neurol. 489 (2), 135-147 (2005).
  16. Innocenti, G. M., Manger, P. R., Masiello, I., Colin, I., Tettoni, L. Architecture and callosal connections of visual areas 17, 18, 19 and 21 in the ferret (Mustela putorius). Cereb Cortex. 12 (4), 411-422 (2002).
  17. Khalil, R., Levitt, J. B. Zinc histochemistry reveals circuit refinement and distinguishes visual areas in the developing ferret cerebral cortex. Brain Struct Funct. 218, 1293-1306 (2013).
  18. Manger, P. R., Masiello, I., Innocenti, G. M. Areal organization of the posterior parietal cortex of the ferret (Mustela putorius). Cereb Cortex. 12, 1280-1297 (2002).
  19. Wong, P., Kaas, J. H. Architectonic subdivisions of neocortex in the gray squirrel (Sciurus carolinensis.). The anatomical record. 291, 1301-1333 (2008).
  20. Land, P. W., Shamalla-Hannah, L. Experience-dependent plasticity of zinc-containing cortical circuits during a critical period of postnatal development. J Comp Neurol. 447 (1), 43-56 (2002).
  21. Czupryn, A., Skangiel-Kramska, J. Distribution of synaptic zinc in the developing mouse somatosensory barrel cortex. J Comp Neurol. 386, 652-660 (1997).
  22. Timm, F. Zur Histochemie der Schwermetalle. Das Sulfid-Silber-Verfahren. Dtsch Z ges gerichtl Med. 46, 706-711 (1958).
check_url/kr/56547?article_type=t

Play Video

Cite This Article
Khalil, R., Levitt, J. B. Use of Synaptic Zinc Histochemistry to Reveal Different Regions and Laminae in the Developing and Adult Brain. J. Vis. Exp. (128), e56547, doi:10.3791/56547 (2017).

View Video