Summary

In Vivo Évaluation du développement de cals de Fracture au cours de la guérison osseuse chez la souris en utilisant un dispositif d’ostéosynthèse IRM-compatible pour le fémur de souris

Published: November 14, 2017
doi:

Summary

L’évaluation du développement des tissus dans le CAL de fracture au cours de la guérison osseuse endochondrale est indispensable pour surveiller le processus de guérison. Nous rapportons ici l’utilisation d’une résonance magnétique imagerie (IRM)-fixateur externe compatible pour le fémur de la souris pour permettre à MRI scans pendant la régénération osseuse chez la souris.

Abstract

Guérison des fractures d’os endochondral est un processus complexe impliquant le développement de tissu fibreux, cartilagineux et osseux dans le CAL de fracture. La quantité des différents tissus dans le CAL fournit des informations importantes sur la rupture des progrès de la guérison. Disponible en vivo techniques longitudinalement surveille l’évolution de tissu de cals dans des études précliniques de guérison des fractures à l’aide de petits animaux comprennent la radiographie numérique et imagerie µCT. Toutefois, ces deux techniques ne sont en mesure de distinguer les tissus minéralisés et non minéralisée. Par conséquent, il est impossible de distinguer le cartilage de tissu fibreux. En revanche, l’imagerie par résonance magnétique (IRM) visualise les structures anatomiques basés sur leur teneur en eau et pourrait donc être en mesure d’identifier une façon non envahissante des tissus mous et le cartilage dans le CAL de fracture. Nous rapportons ici, l’utilisation d’un fixateur externe compatible IRM-compatible pour le fémur de la souris pour permettre des IRM au cours de la régénération osseuse chez la souris. Les expériences ont démontré que le fixateur et un dispositif de montage sur mesure permettent répétitives IRM, permettant ainsi une analyse longitudinale du développement des tissus fracture-Cal.

Introduction

Guérison de la fracture secondaire est la forme la plus courante de la guérison osseuse. C’est un processus complexe imitant des aspects spécifiques du endochondrale ontogénique ossification1,2,3. L’hématome au début de la fracture se compose principalement de cellules immunitaires, de granulation et de tissu fibreux. Faible tension d’oxygène et des souches biomécaniques hautes entravent une différenciation ostéoblastique à l’écart de la fracture, mais promouvoir la différenciation des cellules progénitrices en chondrocytes4,5,6. Ces cellules commencent à proliférer à l’endroit de la blessure pour former une matrice cartilagineuse assurant une stabilité initiale de l’OS fracturé. Durant la maturation des cals, devenus hypertrophiques, les chondrocytes subissent l’apoptose, ou trans-se différencient en ostéoblastes. La néovascularisation dans la zone de transition du cartilage-aux-os fournit des niveaux élevés d’oxygène, permettant la formation de tissu osseux7. Après le pont osseux de l’écart de la fracture, stabilité biomécanique est augmentée et ostéoclastique remodelage du cal fracture externe se produit pour avoir des os physiologique de contour et la structure3. Par conséquent, les quantités de tissu fibreux, cartilagineux et osseux dans le CAL de fracture fournissent des informations importantes concernant l’OS, processus de guérison. Perturbés ou retardé la guérison devient visible par des altérations du développement des tissus cals tant chez les humains et les souris8,9,10,11. Disponible en vivo techniques pour surveiller longitudinalement cals développement des tissus en préclinique fracture guérison des études à l’aide de petits animaux comprennent la radiographie numérique et µCT imagerie12,13. Toutefois, ces deux techniques ne sont capables de distinguer les tissus minéralisés et non minéralisée. En revanche, l’IRM fournit des tissus mous excellent contraste et pourrait donc être en mesure d’identifier les tissus mous et le cartilage dans le CAL de fracture.

Travaux antérieurs a montré des résultats prometteurs pour post mortem MRI chez la souris avec les fractures articulaires des IRM14 et in vivo chez des souris pendant intramembranaires défect osseux-guérison15. Cependant, les deux études a également déclaré limité contraste tissus et la résolution spatial. Nous avons précédemment démontré la faisabilité de haute résolution en vivo IAM pour une évaluation longitudinale de formation de cals doux pendant endochondrale murine fracture guérison16. Nous rapportons ici le protocole afin d’utiliser un fixateur externe compatible IRM-compatible pour ostéotomie du fémur chez la souris, afin de surveiller le développement des tissus cals longitudinalement au cours de la fracture de l’os endochondral processus de guérison. La conception d’un dispositif de montage sur mesure pour l’insertion du fixateur externe assuré une position normalisée lors d’analyses répétées.

Protocol

animal toutes les expériences conformé au règlement international pour le soin et l’utilisation des animaux de laboratoire et ont été approuvées par les autorités de régulation régionales (no 1250, Regierungspräsidium Tübingen, Allemagne). Toutes les souris ont été maintenus en groupes de deux à cinq animaux par cage sur une lumière de 14 h, 10 h circadien sombre avec l’eau et la nourriture fournis ad libitum. 1. préparation du matériel chirurgical et de pré-trai…

Representative Results

Tout d’abord, le succès de l’intervention chirurgicale peut être confirmé par l’analyse de l’IRM (voir exemple à la Figure 2). Tous les quatre épingles doivent être placés au milieu de la tige fémorale. La taille de l’écart de l’ostéotomie doit être comprise entre 0,3 et 0,5 mm. Si la taille de l’écart de l’ostéotomie varie grandement de ces valeurs, la souris doivent être exclue de l’analyse. <p class="jove_content" fo:kee…

Discussion

Modifications et dépannage :

L’objectif principal de cette étude était de décrire un protocole pour l’utilisation d’un fixateur externe compatible MRI pour ostéotomie du fémur chez la souris avec la possibilité de surveiller le développement des tissus cals longitudinalement pendant le processus de guérison des fractures des os endochondral. La conception d’un dispositif de montage sur mesure pour l’insertion du fixateur externe assuré une position normali…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Nous remercions Sevil Essig, Stefanie Schroth, Verena Fischer, Katja Prystaz, Yvonne Hägele et Anne Subgang excellent soutien technique. Nous remercions également la Fondation de recherche allemande (CRC1149, INST40/499-1) et l’Allemagne AO Trauma Foundation pour le financement de cette étude.

Materials

Anaesthesia tube FMI, Seeheim, Germany ZUA-82-ANA-TUB-Mouse
Anaesthetic machine  FMI, Seeheim, Germany ZUA-82-GME-MA
Artery forceps  Aesculap, Tuttlingen, Germany BH104R
Autoclave Systec, Wettenberg, Germany DX-150
Autoclaving packaging Stericlin, Feuchtwangen, Germany 2301-04/06/10/12/16
Avizo software FEI, Burlington, USA Version 8.0.1
BioSpec 117/16 magnetic resonance imaging system Bruker Biospin, Ettlingen, Germany 117/16
Bulldog clamp  Aesculap, Tuttlingen, Germany BH 021R
Carbon steel scalpel no. 11/15 Aesculap, Tuttlingen, Germany BA211/215
Ceramic mounting pin 0.45 mm  RISystem, Davos, Switzerland HS691490
Clindamycin (300 mg / 2ml) Ratiopharm, Ulm, Germany
Dressing forceps 115 mm  Aesculap, Tuttlingen, Germany BD210R
Dressing forceps 130 mm  Aesculap, Tuttlingen, Germany BD025R
Drill bit coated 0.45 mm  RISystem, Davos, Switzerland HS820420
Durogrip needle holder 125 mm  Aesculap, Tuttlingen, Germany BM024R
Foliodrape  Hartmann, Heidenheim, Germany 2513026
Frekaderm Fresenius, Bad Homburg, Germany 4928211
Gigli saw 0.44 mm  RISystem, Davos, Switzerland RIS.590.110.25
Hand drill RISystem, Davos, Switzerland RIS.390.130-01
Heating plate  FMI, Seeheim, Germany IOW-3704
Hygonorm gloves  Hygi, Telgte, Germany 2706
Isoflurane Abbot, London, UK Forene
Micro forceps 155 mm  Aesculap, Tuttlingen, Germany BD343R
Micro scissors 120 mm  Aesculap, Tuttlingen, Germany FD013R
Mouse FixEx L 0.7 mm  RISystem, Davos, Switzerland RIS.611.300-10
Needle case for drills  Aesculap, Tuttlingen, Germany BL911R
Needle holder Aesculap, Tuttlingen, Germany BB078R
Octenisept Schülke, Norderstedt, Germany 121403
Osirix software Pixmeo SARL, Bernex, Switzerland Version 4.0
Oxygen, medical grade MTI, Ulm, Germany
Resolon 5/0 Resorba, Nürnberg, Germany 88143
Saline 0.9% Braun, Melsungen, Germany 3570350
Scalpel handle 125 mm Aesculap, Tuttlingen, Germany BB073R
Scissors 150 mm  Aesculap, Tuttlingen, Germany BC006R
Sealer for autoclave packaging  Hawo GmbH, Obrigheim, Germany HM500
Sterican 27 G  Braun, Melsungen, Germany 4657705
Sterile surgical blades no. 11/15  Aesculap, Tuttlingen, Germany BB511/515
Surgical gloves  Hartmann, Heidenheim, Germany Peha-micron 9425712
Surgical light  Maquet SA, Ardon, France Blue line 80
Syringes 5 ml  Braun, Melsungen, Germany Injekt 4606051V
Tissue forceps 80 mm  Aesculap, Tuttlingen, Germany OC091R
Tramadol 25 mg/l Grünenthal, Aachen, Germany 100mg/ml
Vasofix Safety  Braun, Melsungen, Germany 4268113S-01
Vicryl 5-0  Ethicon, Norderstedt, Germany V30371
Visdisic eye ointment  Bausch & Lomb, Berlin, Germany 3099559

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Haffner-Luntzer, M., Müller-Graf, F., Matthys, R., Abaei, A., Jonas, R., Gebhard, F., Rasche, V., Ignatius, A. In Vivo Evaluation of Fracture Callus Development During Bone Healing in Mice Using an MRI-compatible Osteosynthesis Device for the Mouse Femur. J. Vis. Exp. (129), e56679, doi:10.3791/56679 (2017).

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