Descriviamo un modello murino in vivo di invasione perineurale iniettando le cellule tumorali pancreatiche syngeneic nel nervo sciatico. Il modello consente per la quantificazione del grado di invasione del nervo e appoggia la indagine dei meccanismi cellulari e molecolari dell’invasione perineurale.
Le cellule tumorali invadono nervi attraverso un processo chiamato invasione perineurale (PNI), in cui il cancro cellule proliferano e migrano nel microambiente del nervo. Questo tipo di invasione è esposto da una varietà di tipi di cancro e molto spesso è trovato nel cancro del pancreas. Le dimensioni microscopiche di fibre nervose all’interno del pancreas del mouse rende difficile in modelli murini di orthotopic lo studio del PNI. Qui, descriviamo un modello heterotopic in vivo di PNI, dove iniettiamo la linea cellulare di cancro del pancreas syngeneic Panc02-H7 nel nervo sciatico murino. In questo modello, nervi sciatici dei topi anestetizzati sono esposti e iniettati con le cellule tumorali. Le cellule tumorali invadono nei nervi prossimalmente verso il midollo spinale dal punto di iniezione. Il nervo sciatico invaso vengono poi estratti e trattato con OCT per sezionamento congelati. H & E e colorazione di immunofluorescenza di queste sezioni permettono di quantificazione di entrambi il grado di invasione e cambiamenti nell’espressione della proteina. Questo modello può essere applicato ad una varietà di studi su PNI data la sua versatilità. Utilizzando topi con diverse modificazioni genetiche e/o diversi tipi di cellule tumorali permette di indagine dei meccanismi cellulari e molecolari di PNI e per diversi tipi di cancro. Inoltre, gli effetti di agenti terapeutici sulla invasione del nervo possono essere studiati mediante l’applicazione di trattamento a questi topi.
I nervi formano un microambiente tumorale specifico che stimola il cancro crescita e migrazione1,2,3. Invasione perineurale (PNI) è il processo attraverso cui il cancro cellule invadono in e intorno ai nervi. Può essere considerato come un unico itinerario della metastasi dall’invasione tumorale estende lontano dai siti di origine lungo i nervi. PNI è trovato in molti tipi di cancro tra cui testa del pancreas, della prostata & collo, salivario, cervicale e cancri colorettali con un’incidenza che varia da 22% a 100%1,2. PNI è associato con dolore e correla con la prognosi difficile e peggio sopravvivenza tariffe1,2.
Sviluppo di modelli di invasione perineurale è essenziale per delucidare i meccanismi cellulari e molecolari di questo processo e per candidati agenti terapeutici per ridurre PNI di test. Metodi in vitro di studiare le interazioni tra tumori e nervi comprendono la co-coltura delle cellule tumorali con nervo espianti4, con radice dorsale i gangli5,6,7o con celle specifiche dal nervo microambiente come Schwann cells7. In vivo gli approcci, tuttavia, sono più fisiologicamente rilevanti, includono l’uso di modelli murini di cancro in cui il cancro è stato indotto o trapiantato e hanno il vantaggio di contabilità per il microambiente intero nervo. In orthotopic modelli di cancro del pancreas o della prostata, PNI è stato segnalato8,9,10 e l’incidenza delle PNI può essere registrata, ma a causa delle piccole dimensioni dei nervi in quegli organi, è difficile da vedere l’intero nervo e quindi per quantificare l’entità del PNI. Il modello che qui descritto è un modello in vivo di PNI in cui il cancro le cellule vengono iniettate nel nervo sciatico dei topi tramite un semplice intervento chirurgico11. Il trapianto heterotopic invade all’interno del nervo verso il midollo spinale. La lunghezza dell’invasione del nervo dal sito di iniezione al midollo spinale può essere misurata, così come il volume del cancro all’interno del nervo. D’importanza, il nervo invaso possa essere raccolti anche per una varietà di analisi compreso analisi microscopiche e molecolare. Una varietà di cellule tumorali possa essere testata, e i topi di host che sono stati geneticamente modificati o trattati con composti specifici possono essere usati pure. Questo potente test permette di essere modificate per indagine sui meccanismi di PNI per le cellule tumorali e il microambiente di host.
In questo protocollo viene descritto un modello murino in vivo dell’invasione perineurale che permette per la quantificazione del nervo sciatico invasione dalle cellule di cancro del pancreas. Questo modello permette lo studio dei meccanismi molecolari dell’invasione del nervo. Esperimenti riusciti utilizzando questa tecnica richiedono un approccio attento a tre passaggi critici nel processo: 1) l’iniezione delle cellule tumorali (passi 2.7, 2.8), 2) l’estrazione dei nervi invasi (punto 3.4) e 3) elaborazione de…
The authors have nothing to disclose.
Gli autori riconoscono i servizi tecnici forniti dall’impianto di citologia molecolare e la struttura animale del Memorial Sloan Kettering Cancer Center. Questo lavoro è stato sostenuto da borse di studio NIH CA157686 (per R.J. Wong) e P30 CA008748 (concessione di supporto Memorial Sloan Kettering Cancer Center).
Mouse | Number and age variable depending on experimental needs | ||
Cell culture media (PBS, Trypsin, and DMEM+10% FBS) | Any | Steps 1.1, 1.2, 1.3. | |
Conical centrifuge tube, 50 mL | Falcon | 352098 | Step 1.1 |
Microcentrifuge tube 1.5 mL | Axygen | MCT-150-C-S | Step 1.2 |
Electric razor | WAHL | 9962 | Step 2.1. Can be substituted with commercial hair removal agent |
Isoflurane, 250 mL | Baxter | 1001936060 | Step 2.2 |
Hypoallergenic surgical tape | 3M Blenderm | 70200419342 | Step 2.3 |
Betadine Swapsticks | PDI | SKU 41350 | Step 2.4 |
Webcol Alcohol Preps | Covidien | 5110 | Step 2.4 |
Sterile surgical tools (scissors and forceps) | Steps 2.4, 2.5, 3.3, 3.4, 3.5 | ||
10 μL Hamilton syringe | Hamilton | 80308 | Steps 2.7, 2.8 |
Steel Micro spatula | Fisher Scientific | S50823 | Step 2.7 |
Dissecting microscope | Step 2.7 | ||
Bupivacine, 1 g | Enzo Life Sciences | BML-NA139-0001 | Step 2.9. Reconstitute to 0.5% |
5-0 Nylon suture | Ethicon | 698H | Step 2.9 |
Tissue-Tek O.C.T. Compound | VWR | 25608-930 | Step 4.1 |
Tissue-Tek Cryomold Molds | VWR | 25608-916 | Step 4.1 |