Summary

Decellularization do coração humana dentro de uma bolsa pressurizada em uma orientação invertida

Published: November 26, 2018
doi:

Summary

Esse método permite a decellularization de um órgão complexo sólido usando um protocolo simples baseado em choque osmotic e perfusão de detergente iônico com o mínimo de órgão matriz de interrupção. É composto por uma técnica de novela decellularization para corações humanos dentro uma bolsa pressurizada com monitoramento em tempo real da saída de detritos de celular e dinâmica de fluxo.

Abstract

A solução definitiva para pacientes com insuficiência cardíaca de estágio final é o transplante de órgãos. Mas corações doadores são limitadas, imunossupressão é necessária e, finalmente, a rejeição pode ocorrer. Criando um funcional, coração artificial-bio autólogo poderia resolver esses desafios. Biofabrication de um coração composto por células e andaime é uma opção. Um andaime natural com composição de tecido-específica, bem como micro e macroarquitetura pode ser obtido por decellularizing corações de seres humanos ou animais de grandes porte como porcos. Decellularization envolve lavagem restos celulares ao mesmo tempo preservando a vasculatura e 3D da matriz extracelular e permitindo que “celularização” em um Commit depois. Capitalizando sobre nosso romance encontrar aquele decellularization de perfusão de órgãos complexos é possível, nós desenvolvemos um método mais “fisiológico” para decellularize os corações humanos não-transplantáveis, colocando-os dentro de uma bolsa pressurizada, em uma invertida orientação, sob pressão controlada. O propósito de usar uma bolsa pressurizada é criar gradientes de pressão através da válvula aórtica para mantê-lo fechado e melhorar a perfusão do miocárdio. Avaliação simultânea da dinâmica de fluxo e remoção de restos celulares durante decellularization permitida-nos monitorar tanto o fluido influxo e o efluxo de detritos, gerando assim um andaime que pode ser usado também para simples reparação cardíaca (por exemplo, como um patch ou andaime de válvula) ou como um andaime de todo o órgão.

Introduction

Insuficiência cardíaca leva a elevada taxa de mortalidade em pacientes. A opção final tratamento para insuficiência cardíaca de estágio final é allo-transplante. No entanto, há uma longa lista de espera para transplante devido a escassez de órgãos de doador, e rosto de pacientes pós-transplante barreiras que variam de imunossupressão ao longo da vida a rejeição de órgãos crônica1,2. Corações funcionais de bioengenharia pelo repovoamento decellularized corações de tamanho humano, com do próprio paciente células poderiam contornar estes obstáculos3.

Um grande passo em “engenharia” um coração é a criação de um andaime com adequada estrutura vascular e parenquimatosa, composição e função para orientar o alinhamento e organização de células entregues. Na presença de quadro apropriado, células semeadas no andaime devem reconhecer o ambiente e executar a função prevista como parte do órgão. Em nossa opinião, matriz extracelular de órgão decellularized (dECM) compreende as características necessárias de andaime ideal.

Utilizando a vasculatura intrínseca, complexo todo-órgão decellularization pode ser alcançado através de hemorragias anterógradas ou perfusão retrógrada4 para remover componentes celulares preservando o delicado 3D matriz extracelular e vasculatura2, 5,6,7. Uma vasculatura funcional é importante em órgãos inteiros de bioengenharia apenas como na vivo, para a distribuição de nutrientes e remoção de lixo8. Decellularization de perfusão coronariana tem sido provado para ser eficaz na criação de decellularized de corações de ratos4, ou porcos4,7,9,10,11 ,12,13e os seres humanos5,7,14,15,16. Ainda, a integridade das válvulas, átrios e outras regiões “finos” pode sofrer.

Decellularized coração humano-tamanho andaimes podem ser obtidas de porcos usando pressão controle7,9,10,11,12 ou infusão fluxo taxa controle13, 17 e de doadores humanos usando pressão de controle5,7,14,15. Decellularization de corações de doador humano ocorre em 4-8 dias sob pressão controlada em 80-100 mmHg na orientação vertical5,15,16 ou mais de 16 dias sob pressão controlada em 60 mmHg14 . Sob hemorragias anterógradas, decellularization pressão controlada, a competência da valva aórtica desempenha um papel crucial na manutenção da eficiência de perfusão coronariana e pressão estável na raiz da aorta. Nosso trabalho anterior revelou que a orientação do coração influencia sua eficiência de perfusão coronariana durante o procedimento de decellularization e, portanto, a integridade de andaime na final9.

Como uma continuação da nossa anterior trabalho9, apresentamos um novo conceito no qual um malote do pericárdio, como é adicionado para melhorar a decellularization de todo o coração. Descrevemos o decellularization de corações humanos colocadas dentro de bolsas pressurizadas, inversamente orientadas e sob pressão controlada em 120 mmHg na raiz da aorta. Este protocolo inclui o monitoramento do perfil de fluxo e coleção de mídia de saída ao longo do processo de decellularization para avaliar a eficiência de perfusão coronariana e remoção de detritos de células. Ensaios bioquímicos são então realizados para testar a eficácia do método.

Protocol

Todos os experimentos respeitadas as orientações do Comitê de ética do Instituto do coração do Texas. 1. o órgão preparação Nota: Em colaboração com LifeGift, uma organização de compras de órgãos sem fins lucrativos no Texas (http://www.lifegift.org), doou corações humanos não são adequadas para transplante foram usados para pesquisa com consentimento aprovado. Para adquirir os corações, infundi por via intravenosa 30.000 heparina de …

Representative Results

Depois de um decellularization de 7 dias com hemorragias anterógradas perfusão aórtica sob pressão constante de 120 mmHg, o coração humano virou translúcido (Figura 6B). O coração foi grosseiramente dissecado em 19 seções para análise bioquímica (DNA, mordaça e SDS) (Figura 6) para avaliar o produto final de decellularized. Durante todo o processo de decel…

Discussion

A nosso conhecimento, este é o primeiro estudo a decellularization relatório invertido de corações humanos dentro uma bolsa pressurizada com lapso de tempo, acompanhamento de remoção de entulhos de taxa e célula de fluxo. A bolsa do pericárdio, como mantém a orientação do coração estável durante todo o processo de decellularization. Submergindo e invertendo os corações inteiro dentro de uma bolsa impede a desidratação e minimiza a tensão excessiva na aorta (a partir de peso do coração) quando compara…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Esta pesquisa foi apoiada pelo grant Endowment de Houston e o fundo de tecnologia emergente do Texas. Os autores reconhecem a agência de aquisição de órgãos LifeGift, Inc. e as famílias do doador para tornar possível este estudo.

Materials

2-0 silk suture Ethicon SA85H Suture used to ligate superior and inferior vena cava
1/4" x 3/8" connector with luer NovoSci 332023-000 Connect aorta and pulmonary artery
Masterflex platinum-cured silicone tubing Cole-Parmer HV-96410-16 Tubing to connect heart chambers/veins
infusion and outflow line Smiths Medical MX452FL For flowing solutions through the vasculature
Polyester pouch (Ampak 400 Series SealPAK Pouches) Fisher scientific 01-812-17 Pericardium-like pouch for containing heart during decellularization
Snapware Square-Grip Canister Snapware 1022 1-liter Container used for perfusing heart
Black rubber stoppers VWR 59586-162 To seal the perfusion container
Peristaltic pump Harvard Apparatus 881003 To pump fluid through the inflow lines and to drain fluids
2 L aspirator bottle with bottom sidearm VWR 89001-532 For holding solutions/perfusate
Quant-iT PicoGreen dsDNA Assay kit Life Technologies P7589 For quantifying dsDNA
Calf thymus standard Sigma D4522 DNA standard
Blyscan Glycosaminoglycan Assay Kit Biocolor Ltd Blyscan #B1000 GAG assay kit
Plate reader Tecan Infinite M200 Pro For analytical assays
GE fluoroscopy General Electric OEC 9900 Elite Angiogram
Visipaque GE 13233575 Contrast agent

References

  1. Writing Group Members. Executive Summary: Heart Disease and Stroke Statistics–2016 Update: A Report From the American Heart Association. Circulation. 133 (4), 447-454 (2016).
  2. Zia, S., et al. Hearts beating through decellularized scaffolds: whole-organ engineering for cardiac regeneration and transplantation. Critical Reviews in Biotechnology. 36 (4), 705-715 (2016).
  3. Zimmermann, W. H. Strip and Dress the Human Heart. Circulation Research. 118 (1), 12-13 (2016).
  4. Ott, H. C., et al. Perfusion-decellularized matrix: Using nature’s platform to engineer a bioartificial heart. Nature Medicine. 14 (2), 213-221 (2008).
  5. Sanchez, P. L., et al. Acellular human heart matrix: A critical step toward whole heart grafts. Biomaterials. 61, 279-289 (2015).
  6. Peloso, A., et al. Current achievements and future perspectives in whole-organ bioengineering. Stem Cell Research & Therapy. 6, 107 (2015).
  7. Guyette, J. P., et al. Perfusion decellularization of whole organs. Nature Protocols. 9 (6), 1451-1468 (2014).
  8. Momtahan, N., Sukavaneshvar, S., Roeder, B. L., Cook, A. D. Strategies and Processes to Decellularize and Cellularize Hearts to Generate Functional Organs and Reduce the Risk of Thrombosis. Tissue Engineering Part B-Reviews. 21 (1), 115-132 (2015).
  9. Lee, P. F., et al. Inverted orientation improves decellularization of whole porcine hearts. Acta Biomaterialia. , (2016).
  10. Momtahan, N., et al. Automation of Pressure Control Improves Whole Porcine Heart Decellularization. Tissue Eng Part C Methods. , (2015).
  11. Weymann, A., et al. Development and Evaluation of a Perfusion Decellularization Porcine Heart Model – Generation of 3-Dimensional Myocardial Neoscaffolds. Circulation Journal. 75 (4), 852-860 (2011).
  12. Weymann, A., et al. Bioartificial heart: A human-sized porcine model–the way ahead. PLoS One. 9 (11), e111591 (2014).
  13. Remlinger, N. T., Wearden, P. D., Gilbert, T. W. Procedure for decellularization of porcine heart by retrograde coronary perfusion. Journal of Visualized Experiments. (70), e50059 (2012).
  14. Guyette, J. P., et al. Bioengineering Human Myocardium on Native Extracellular Matrix. Circulation Research. 118 (1), 56-72 (2016).
  15. Sanchez, P. L., et al. Data from acellular human heart matrix. Data Brief. 8, 211-219 (2016).
  16. Garreta, E., et al. Myocardial commitment from human pluripotent stem cells: Rapid production of human heart grafts. Biomaterials. 98, 64-78 (2016).
  17. Wainwright, J. M., et al. Preparation of Cardiac Extracellular Matrix from an Intact Porcine Heart. Tissue Engineering Part C-Methods. 16 (3), 525-532 (2010).
  18. Larson, A. M., Yeh, A. T. Ex vivo characterization of sub-10-fs pulses. Optics Letters. 31 (11), 1681-1683 (2006).
  19. Lee, P. F., Yeh, A. T., Bayless, K. J. Nonlinear optical microscopy reveals invading endothelial cells anisotropically alter three-dimensional collagen matrices. Experimental Cell Research. 315 (3), 396-410 (2009).
  20. Lee, P. F., Bai, Y., Smith, R. L., Bayless, K. J., Yeh, A. T. Angiogenic responses are enhanced in mechanically and microscopically characterized, microbial transglutaminase crosslinked collagen matrices with increased stiffness. Acta Biomaterialia. 9 (7), 7178-7190 (2013).
  21. Wu, Z., et al. Multi-photon microscopy in cardiovascular research. Methods. 130, 79-89 (2017).
  22. Ramanathan, T., Skinner, H. Coronary blood flow. Continuing Education in Anaesthesia Critical Care & Pain. 5 (2), 61-64 (2005).
  23. Murthy, V. L., et al. Clinical Quantification of Myocardial Blood Flow Using PET: Joint Position Paper of the SNMMI Cardiovascular Council and the ASNC. Journal of Nuclear Cardiology. 25 (1), 269-297 (2018).
  24. Molina, D. K., DiMaio, V. J. Normal organ weights in men: Part I-the heart. The American Journal of Forensic Medicine and Pathology. 33 (4), 362-367 (2012).
  25. Molina, D. K., DiMaio, V. J. Normal Organ Weights in Women: Part I-The Heart. The American Journal of Forensic Medicine and Pathology. 36 (3), 176-181 (2015).
  26. Robertson, M. J., Dries-Devlin, J. L., Kren, S. M., Burchfield, J. S., Taylor, D. A. Optimizing cellularization of whole decellularized heart extracellular matrix. PLoS One. 9 (2), e90406 (2014).
  27. Robertson, M. J., Soibam, B., O’Leary, J. G., Sampaio, L. C., Taylor, D. A. Cellularization of rat liver: An in vitro model for assessing human drug metabolism and liver biology. PLoS One. 13 (1), e0191892 (2018).
  28. Baghalishahi, M., et al. Cardiac extracellular matrix hydrogel together with or without inducer cocktail improves human adipose tissue-derived stem cells differentiation into cardiomyocyte-like cells. Biochemical and Biophysical Research Communications. , (2018).
  29. Perea-Gil, I., et al. In vitro comparative study of two decellularization protocols in search of an optimal myocardial scaffold for recellularization. American Journal of Translational Research. 7 (3), 558-573 (2015).
  30. Freytes, D. O., O’Neill, J. D., Duan-Arnold, Y., Wrona, E. A., Vunjak-Novakovic, G. Natural cardiac extracellular matrix hydrogels for cultivation of human stem cell-derived cardiomyocytes. Methods Molecular Biology. 1181, 69-81 (2014).
  31. Oberwallner, B., et al. Preparation of cardiac extracellular matrix scaffolds by decellularization of human myocardium. Journal of Biomedical Materials Research Part A. 102 (9), 3263-3272 (2014).
check_url/kr/58123?article_type=t

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Taylor, D. A., Sampaio, L. C., Cabello, R., Elgalad, A., Parikh, R., Wood, R. P., Myer, K. A., Yeh, A. T., Lee, P. Decellularization of Whole Human Heart Inside a Pressurized Pouch in an Inverted Orientation. J. Vis. Exp. (141), e58123, doi:10.3791/58123 (2018).

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