Développement et utilisation angiographique du lapin VX2 modèle pour un cancer du foie
Summary
L’objectif de cet article est de fournir une couche d’apprêt pour le développement et l’utilisation du modèle VX2 carcinome lapin pour un cancer du foie.
Abstract
La tumeur de VX2 lapin est un modèle animal couramment utilisé pour la recherche translationnelle sur le carcinome hépatocellulaire (CHC) dans le domaine de la radiologie interventionnelle. Ce modèle emploie un carcinome épidermoïde anaplasique qui est facilement et de manière fiable s’est propagé dans le muscle squelettique des lapins de donateurs pour éventuelle implantation récolte et allogreffe dans le foie des destinataires naïf. Cette greffe tumorale se développe rapidement dans le foie des lapins bénéficiaires dans une tumeur par angiographie identifiable caractérisée par un noyau nécrotique entouré par une capsule hypervascularisée viable. La taille physique de l’anatomie du lapin est suffisante pour faciliter l’instrumentation vasculaire permettant l’application et l’essai de diverses techniques interventionnelles. Malgré ces avantages, il existe un manque de ressources techniques d’agir comme une référence concrète pour les chercheurs qui travaillent avec le modèle. Ici, nous présentons un aperçu visuel complet pour les aspects techniques de développement, la croissance, propagation et angiographique utilisation du modèle de tumeur VX2 lapin pour novice et des chercheurs expérimentés.
Introduction
Le modèle de tumeur VX2 lapin a joué un rôle en oncologie expérimentale depuis sa mise au point en 19351,2. Cette tumeur est un Viro-induite anaplasique carcinome épidermoïde caractérisé par hypervascularity, une croissance rapide et facile propagation dans le muscle squelettique3,4. Alors que le modèle de tumeur lapin VX2 a été utilisé pour enquêter sur une multitude de cancers5,6,7,8; l’objectif de cet article est un cancer du foie,9.
Le but de la méthode décrite est de présenter un modèle pour le cancer primaire du foie ou carcinome hépatocellulaire (CHC), qui peut être utilisé par les radiologues interventionnels de recherche translationnelle. Il peut être utilisé pour les études pharmacocinétiques, enquêtes thérapeutiques et ablatif méthode essai10,11,12,13,14,15.
La méthode détaillée ci-après donne plusieurs avantages par rapport aux autres modèles dans la même sphère comme modèles de rongeurs comme les rats, souris et marmottes ou des modèles plus grands comme les primates16. L’un des principaux avantages est la croissance tumorale rapide et fiable qui permet aux chercheurs d’établir une ligne de tumeur active moins d’un mois du premier membre postérieur propagation17. En outre, cette tumeur a simple visibilité échographique et les confins hypervascularisée qui permet pour les transarterial locorégional traitements et thérapies ablatives. Enfin et surtout, la taille de la vascularisation du lapin permet faisable et techniquement facile utilisation d’instrumentation vasculaire18.
Protocol
Representative Results
Discussion
La première étape critique dans la méthodologie de tumeur VX2 est propagation réussie d’une tumeur à la patte d’un lapin de donateurs. Voir le premier paragraphe dans la section « Résultats représentant » pour plus d’informations au sujet de cette étape.
La prochaine étape critique est de s’assurer que la capsule de tumeur viable est correctement identifiée. Non seulement cela sera nécessaire pour la préparation de la solution tumeur, mais il est également important de…
Disclosures
The authors have nothing to disclose.
Acknowledgements
Nous tenons à remercier le personnel vétérinaire à l’Université de l’Illinois – Chicago Biological Resources Laboratory.
Materials
| MethoCult (Methycellulose) | Stemcell Technologies | M3134 | |
| VX2 Cell Line | NCI | VX-2 | |
| 5 mL Syringe | BD | 309646 | |
| 16-Gauge Needle | BD | 305197 | |
| 22-Gauge Needle | BD | 305155 | |
| Hair Clippers | Wahl | 41870-0438 | |
| Foam Insulated Box | Mr. Box Online | 10 x 10 x 4 | |
| Acepromazine | Henry Schein | 003845 | |
| Buprenorphine | Par | 42023-179-05 | |
| Meloxicam | Henry Schein | 049755 | |
| Alcohol Pads | Covidien | 5033 | |
| Ketamine | Henry Schein | 056344 | |
| Xylazine | Akorn | 59399-110-20 | |
| Pentobarbital (Fatal-Plus) | Vortech | 9373 | |
| Sterile Petri Dish | Thermo Fisher | 172931 | |
| DMEM | Gibco | 11965092 | |
| Saline | Baxter | 2F7124 | |
| 15-Blade | Steris | 02-050-015 | |
| Scalpel Handle x 2 | Steris | 22-2381 | |
| Curved Hemostat | WPI | 501288 | |
| Atraumatic Forceps | Sklar | 52-5077 | |
| Gauze | Medline | NON21430LF | |
| 11-Blade | Steris | 02-050-011 | |
| Surgicel | Ethicon | 1951 | |
| 3-0 PDS / Taper | Ethicon | Z305H | |
| 4 – 0 Vicryl / Cutting | Ethicon | J392H | |
| 40 micron strainer | BD | 352340 | |
| 50 mL conical tube | Thermo Fisher | 339652 | |
| plastic pipette | Thomas Scientific | HS206371B | |
| Centrifuge | Sorvall | 75004240 | |
| 1.40mL Tubes (Internal Thread) | Micronic | MP32131-Z20 | |
| 3-F VSI Micro-HV Introducer Kit | Vascular Solutions | Custom Order (P15180391) | |
| .018 45-degree angle glidewire | Terumo | RG*GA1818SA | |
| Direxion bern-shape microcatheter | Boston Scientific | M001195230 | |
| Omnipaque | GE | Y510 |
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