Het doel van dit artikel is bedoeld als een primer voor de ontwikkeling en het gebruik van de VX2 carcinoom konijn model voor leverkanker.
De konijn VX2 tumor is een dierlijk model vaak gebruikt voor translationeel onderzoek met betrekking tot hepatocellulaire carcinoom (HCC) op het gebied van Interventionele radiologie. Dit model maakt gebruik van een anaplastic plaveiselcelcarcinoom is gemakkelijk en betrouwbaar doorvoeren in de skeletspieren van donor konijnen voor uiteindelijke oogst en allograft innesteling in de lever van naïeve ontvangers. Deze tumor graft groeit snel in de lever van geadresseerden konijnen in een angiographically identificeerbare tumor gekenmerkt door een necrotische kern omgeven door een haalbare hypervascular-capsule. De fysieke grootte van de anatomie van het konijn is voldoende om vasculaire instrumentatie toestaan voor de toepassing en het testen van verschillende Interventionele technieken. Ondanks deze voordelen bestaat er een gebrek aan technische middelen om op te treden als een concrete verwijzing voor onderzoekers die werken met het model. Hierin presenteren wij een uitgebreide visuele schets voor de technische aspecten van de ontwikkeling, groei, voortplanting en angiographic gebruik van het konijn VX2 tumor model voor gebruik door beginnende en ervaren onderzoekers gelijk.
Het konijn VX2 tumor model heeft een rol gespeeld in de experimentele oncologie sinds haar ontwikkeling in 19351,2. Deze tumor is een virus-geïnduceerde anaplastic plaveiselcelcarcinoom gekenmerkt door hypervascularity, snelle groei en gemakkelijke vermeerdering in skeletspieren3,4. Terwijl het konijn VX2 tumor model is gebruikt om te onderzoeken van een veelheid aan kanker5,6,7,8; de focus van deze paper is leverkanker9.
Het doel van de beschreven methode is om een model van primaire leverkanker of hepatocellulaire carcinoom (HCC), die kan worden gebruikt door Interventionele radiologen voor translationeel onderzoek. Het kan worden gebruikt voor farmacokinetisch onderzoek, therapeutische onderzoeken en ablatieve methode voor het testen van10,11,12,13,14,15.
De methode gedetailleerd hierin levert meerdere voordelen ten opzichte van andere modellen binnen de dezelfde sfeer zoals knaagdieren modellen zoals ratten, muizen, en woodchucks, of grotere modellen zoals primaten16. Een van de belangrijkste voordelen is de snelle en betrouwbare tumorgroei waarmee onderzoekers om een actieve tumor lijn binnen een maand na de eerste hind-limb propagatie17. Bovendien heeft deze tumor eenvoudig sonographic zichtbaarheid en de periferie van een hypervascular die het mogelijk voor zowel transarterial regionale behandelingen en ablatieve therapieën maakt. Tot slot, en dit is het belangrijkst, staat de grootte van het konijn therapieën haalbaar en technisch gemakkelijk gebruik van vasculaire instrumentatie18.
De eerste kritieke stap in de methodologie van de tumor VX2 is succesvolle voortplanting van een tumor in de hind-limb van een donor-konijn. Verwijzen naar de eerste alinea in de sectie “Vertegenwoordiger resultaten” voor meer informatie over deze stap.
De volgende kritieke stap is ervoor te zorgen dat de levensvatbare tumor capsule op de juiste manier wordt geïdentificeerd. Niet alleen zal dit noodzakelijk is voor de voorbereiding van de opschorting van de tumor, maar het is ook belangrijk v…
The authors have nothing to disclose.
Wij willen erkennen het veterinaire personeel van de Universiteit van Illinois – Chicago’s biologische middelen laboratorium.
MethoCult (Methycellulose) | Stemcell Technologies | M3134 | |
VX2 Cell Line | NCI | VX-2 | |
5 mL Syringe | BD | 309646 | |
16-Gauge Needle | BD | 305197 | |
22-Gauge Needle | BD | 305155 | |
Hair Clippers | Wahl | 41870-0438 | |
Foam Insulated Box | Mr. Box Online | 10 x 10 x 4 | |
Acepromazine | Henry Schein | 003845 | |
Buprenorphine | Par | 42023-179-05 | |
Meloxicam | Henry Schein | 049755 | |
Alcohol Pads | Covidien | 5033 | |
Ketamine | Henry Schein | 056344 | |
Xylazine | Akorn | 59399-110-20 | |
Pentobarbital (Fatal-Plus) | Vortech | 9373 | |
Sterile Petri Dish | Thermo Fisher | 172931 | |
DMEM | Gibco | 11965092 | |
Saline | Baxter | 2F7124 | |
15-Blade | Steris | 02-050-015 | |
Scalpel Handle x 2 | Steris | 22-2381 | |
Curved Hemostat | WPI | 501288 | |
Atraumatic Forceps | Sklar | 52-5077 | |
Gauze | Medline | NON21430LF | |
11-Blade | Steris | 02-050-011 | |
Surgicel | Ethicon | 1951 | |
3-0 PDS / Taper | Ethicon | Z305H | |
4 – 0 Vicryl / Cutting | Ethicon | J392H | |
40 micron strainer | BD | 352340 | |
50 mL conical tube | Thermo Fisher | 339652 | |
plastic pipette | Thomas Scientific | HS206371B | |
Centrifuge | Sorvall | 75004240 | |
1.40mL Tubes (Internal Thread) | Micronic | MP32131-Z20 | |
3-F VSI Micro-HV Introducer Kit | Vascular Solutions | Custom Order (P15180391) | |
.018 45-degree angle glidewire | Terumo | RG*GA1818SA | |
Direxion bern-shape microcatheter | Boston Scientific | M001195230 | |
Omnipaque | GE | Y510 |