Desenvolvimento e uso angiográfico do modelo VX2 coelho para câncer de fígado
Summary
O objetivo deste artigo é fornecer uma cartilha para o desenvolvimento e a utilização do modelo VX2 carcinoma coelho para câncer de fígado.
Abstract
O tumor de VX2 coelho é um modelo animal, comumente utilizado para a investigação de translação sobre carcinoma hepatocelular (HCC) no campo da radiologia intervencionista. Este modelo emprega um anaplásico carcinoma de células escamosas facilidade e confiabilidade propagada no músculo esquelético de coelhos de doador para eventual implantação colheita e aloenxerto em fígado de destinatários de ingênuo. Este enxerto tumor cresce rapidamente dentro do fígado de coelhos destinatários em um tumor angiographically identificável caracterizado por um núcleo necrótico cercado por uma cápsula de injetados viável. O tamanho físico da anatomia coelho é suficiente para facilitar a instrumentação vascular, permitindo a aplicação e teste de várias técnicas de intervenção. Apesar desses benefícios, existe uma escassez de recursos técnicos para atuar como uma referência concreta para pesquisadores que trabalham com o modelo. Neste documento, apresentamos um contorno visual abrangente para os aspectos técnicos do desenvolvimento, crescimento, propagação e utilização angiográfica do coelho VX2 tumor modelo para ser usado por novatos e experientes pesquisadores.
Introduction
O modelo de tumor VX2 coelho tem desempenhado um papel em Oncologia experimental desde seu desenvolvimento em 19351,2. Este tumor é um vírus-induzida anaplásico carcinoma espinocelular caracterizada por hypervascularity, crescimento rápido e fácil propagação no músculo esquelético3,4. Enquanto o modelo de tumor coelho VX2 tem sido usado para investigar uma infinidade de cancros5,6,7,8; o foco deste artigo é de câncer de fígado9.
O objetivo do método descrito é apresentar um modelo para câncer de fígado primário, ou carcinoma hepatocelular (HCC), que pode ser usado por radiologistas intervencionistas para investigação de translação. Ele pode ser usado para estudos farmacocinéticos, investigações terapêuticas e ablativo método testando10,11,12,13,14,15.
O método detalhado neste documento produz várias vantagens sobre outros modelos dentro da mesma esfera tais como modelos de roedores como ratos, ratos e marmotas ou modelos maiores como primatas16. Um dos principais benefícios é o crescimento do tumor rápida e confiável que permite que os investigadores estabelecer uma linha de tumor ativo dentro de um mês do primeiro membro posterior propagação17. Além disso, este tumor tem visibilidade sonográfico simples e uma periferia de injetados que permite tanto transarterial locorregional de tratamentos e terapias ablativas. Finalmente e mais importante, o tamanho da vasculatura coelho permite utilização viável e tecnicamente fácil de instrumentação vascular18.
Protocol
Representative Results
Discussion
O primeiro passo crítico na metodologia de tumor VX2 é propagação bem sucedida de um tumor no membro hind de um coelho de doador. Referem-se ao primeiro parágrafo na seção “Representante resultados” para obter mais informações sobre esta etapa.
O próximo passo crítico é assegurar que a cápsula do tumor viável é devidamente identificada. Não somente isto será necessário para a preparação de suspensão de tumor, mas também é importante para a seleção e gerando pedaços de…
Disclosures
The authors have nothing to disclose.
Acknowledgements
Nós gostaríamos de reconhecer o pessoal veterinário da Universidade de Illinois – laboratório de Chicago de recursos biológicos.
Materials
| MethoCult (Methycellulose) | Stemcell Technologies | M3134 | |
| VX2 Cell Line | NCI | VX-2 | |
| 5 mL Syringe | BD | 309646 | |
| 16-Gauge Needle | BD | 305197 | |
| 22-Gauge Needle | BD | 305155 | |
| Hair Clippers | Wahl | 41870-0438 | |
| Foam Insulated Box | Mr. Box Online | 10 x 10 x 4 | |
| Acepromazine | Henry Schein | 003845 | |
| Buprenorphine | Par | 42023-179-05 | |
| Meloxicam | Henry Schein | 049755 | |
| Alcohol Pads | Covidien | 5033 | |
| Ketamine | Henry Schein | 056344 | |
| Xylazine | Akorn | 59399-110-20 | |
| Pentobarbital (Fatal-Plus) | Vortech | 9373 | |
| Sterile Petri Dish | Thermo Fisher | 172931 | |
| DMEM | Gibco | 11965092 | |
| Saline | Baxter | 2F7124 | |
| 15-Blade | Steris | 02-050-015 | |
| Scalpel Handle x 2 | Steris | 22-2381 | |
| Curved Hemostat | WPI | 501288 | |
| Atraumatic Forceps | Sklar | 52-5077 | |
| Gauze | Medline | NON21430LF | |
| 11-Blade | Steris | 02-050-011 | |
| Surgicel | Ethicon | 1951 | |
| 3-0 PDS / Taper | Ethicon | Z305H | |
| 4 – 0 Vicryl / Cutting | Ethicon | J392H | |
| 40 micron strainer | BD | 352340 | |
| 50 mL conical tube | Thermo Fisher | 339652 | |
| plastic pipette | Thomas Scientific | HS206371B | |
| Centrifuge | Sorvall | 75004240 | |
| 1.40mL Tubes (Internal Thread) | Micronic | MP32131-Z20 | |
| 3-F VSI Micro-HV Introducer Kit | Vascular Solutions | Custom Order (P15180391) | |
| .018 45-degree angle glidewire | Terumo | RG*GA1818SA | |
| Direxion bern-shape microcatheter | Boston Scientific | M001195230 | |
| Omnipaque | GE | Y510 |
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