Summary

金ナノ粒子を用いた蛋白質キナーゼ C デルタ阻害ペプチド製剤

Published: March 09, 2019
doi:

Summary

静脈内合成ペプチド、蛋白質キナーゼ C デルタ阻害剤は、虚血再灌流惹起急性肺傷害の減少を提供する金ナノ粒子のペプチド ハイブリッド以前使いました。ここで、製剤の詳細なプロトコルを示す.他の細胞内ペプチドは同様に定式化することができます。

Abstract

蛋白質キナーゼ C デルタ阻害剤 (PKCδi) は、虚血再灌流による臓器損傷を防ぐために有望な薬剤です。通常、細胞透過性ペプチド、TAT の細胞内動態を活用します。しかし、TAT は、非固有の生物学的活性を示しています。金ナノ粒子 (GNPs) は、認識された毒性のない薬配信キャリアとして使用できます。したがって、我々 は PKCδi を提供する GNP/ペプチド ハイブリッドを使いました。2 つの短いペプチド (P2: CAAAAE と P4: CAAAAW)、95:5 の比率で GNP のサーフェスのプロパティを変更する使用されました。GNPs PKCδi (GNP/PKCi) と共役が蒸留水で安定して 0.9% 塩化ナトリウムとリン酸緩衝生理食塩水 (PBS) ウシ血清アルブミンやウシ胎児血清を含みます。GNP PKCi の静脈注射は以前肺の虚血再灌流障害を防ぐために示されました。この資料では、GNP/PKCi を策定し、ハンナラ党/PKCi の理化学特性を評価するためのプロトコルについて説明します。ハンナラ党と他のペプチド ベースの薬を策定する同じような方法を使いました。この記事は、うまく行けばこの細胞内薬剤デリバリー技術とその応用を体内にもっと注意を引くでしょう。

Introduction

肺移植は末期肺疾患1患者を保存します。ただし、肺移植後の重篤な合併症では、障害が残っています。肺移植初期段階で主な移植臓器機能不全は最も有害な合併症1で、その主な原因は虚血再灌流 (IR)-誘発急性肺傷害2

低温保蔵下ドナー肺における代謝は非常に低いレベルに制限されます。しかし、活性酸素と一酸化窒素合成血流3の停止のためにアクティブ化されます。移植後血行が復元され、活性酸素種と冷たい虚血時に生成される酸化窒素を高める組織の損傷に伴う炎症や細胞死。

IR の傷害を防ぐためには、蛋白質キナーゼ c δ 阻害剤 (PKCδi) は、心、脳と肺4,5,6,7,8で使用されています。これらの研究は、PKCδi が、再灌流時に、炎症とアポトーシスを減少することを示した。それはまた肺の IR 損傷ラットおよび肺移植モデル6を許可していません。PKCδi は通常、細胞浸透性ペプチド、TAT の細胞内動態と共役系します。ただし、単独で TAT ペプチドが複数サイトカイン9,10,11の阻害、アポトーシス、血管新生の促進を含む非固有生物学的効果を持っていることが示されています。ナノ粒子、1 から 100 までの小粒子径12nm は薬配信13を容易に候補として検討されています。特に、金ナノ粒子 (GNPs) は無毒、非侵襲的にみなされます。そこで、ペプチド ベースの薬14,15薬配信キャリアとして GNPs を開発しました。

GNPs の表面は、分子認識16,17、化学センシング18、イメージング19、薬剤投与などの特定のアプリケーションを操作できます。20 nm GNPs と 2 つの短いペプチドを含む、ハンナラ党/ペプチド ハイブリッド システムを開発されている (P2: CAAAAE と P4: CAAAAW) GNPs の表面の特性を変更するのには、95:5 の比率で。P2 ペプチド、最後に、負荷電のグルタミン酸 (E) を水溶液中で GNPs を安定化し、最後に、疎水性トリプトファン (W) と、P4 のペプチドに役立ちます GNPs セル14への入口。これらのペプチドの N 末端のシステイン (C) 残基には、金表面14に共役することができますチオール グループが含まれています。このペプチド/GNP ハイブリッドはさらに PKCδi (CSFNSYELGSL) を提供する使用されました。PKCδi に P2:P4 の最適化のモル比は、47.5:2.5:50 です。GNPs PKCδi (GNP/PKCi) と共役安定蒸留水、0.9% の NaCl、牛アルブミンまたはウシ胎児血清14を含む PBS が。GNP/PKCi の静脈注射は、15肺の虚血再灌流障害を防ぐために示されています。この記事では、GNP/PKCi を定式化する方法の概要を説明し、ハンナラ党/PKCi の物理化学的特性を評価する方法について説明します。他のペプチド ベースの薬 GNP20,21,22に共役を策定する同じような方法を使いました。この記事がこの新規製剤細胞内薬物送達のためにもっと注目されると思います。

Protocol

1. ペプチド溶液の調製 ペプチドを取得 (P2: CAAAAE, P4: CAAAAW、PKCδi: CSFNSYELGSL)-20 ° C のフリーザーと室温 (RT) 雪解けから。注意: ボトル、ペプチドの凝縮から湿気を防ぐために閉じる。 マイクロ スケールの各ペプチドが 0.01 g の重量を量る。各ペプチドを別の 50 mL の円錐管に入れます。 P2 チューブに 18.74 mL 純水 (DI) を追加します。 P4 チューブに純水の 16.93 mL を…

Representative Results

ハンナラ党は、する傾向があるは、GNP/PKCi ハイブリッドの生物物理学的特性を評価する注意が必要溶媒中で集計。国民総生産を集約すると、ソリューションの色がピンクから紫 (図 1 a) に変更します。紫外可視分光光度計がより敏感に変化を検出することができます。GNP/PKCi が集約されていない場合吸収のピークは 525 でする必要があります (<str…

Discussion

適切な定式化を確保するため、δPKCi ソリューションが 1.6 で説明されている超音波処理ステップを経ることが重要です。ΔPKCi ペプチッド シーケンスには、50% アセトニ トリル溶液中 PKCi を溶解に役立ちます、超音波発生装置、疎水性の部分が含まれています。さらに、細心、手順 2.7 に示した溶媒を混合する非常に重要です。 23δPKCi ペプチドの凝集による手順が適切に行わ…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

この作品は、カナダ最初研究の卓越性のプログラム、トロント大学でデザインによる医療とオンタリオ州の革新 (日時-08-029) 研究省健康の研究のカナダの協会 (PJT-148847) からの研究補助金によってサポートされます。Mingyao リューはジェームズと肺の損傷、修復、および再生のメアリー デイビー椅子です。

Materials

negatively charged glutamic acid peptide (P2) CanPeptide Sequence: CAAAAE-NH2
Length: 6aa
Modification: C-terminal amidation
Quantity: 50mg
Purity: >95%
hydrophobic tryptophan peptide (P4) CanPeptide Sequence: CAAAAW-NH2
Length: 6aa
Modification: C-terminal amidation
Quantity: 50mg
Purity: >95%
δPKCi peptide CanPeptide Seqeuence: CSFNSYELGSL-NH2
Length: 11aa
Modification: C-terminal amidation
Quantity: 50mg
Purity: >95%
Conical tube(50ml) Corning Life Sciences 3582070
Conical tube(15ml) Corning Life Sciences 3582096
Acetonitrile Sigma-Aldrich 271004-100ML
Sonicator Branson Ultrasonics Corp. Branson 2510MTH
Microtube Diamed.ca AD 150-N
Gold nanoparticle solution Ted Pella 15705-5 A particle size is 20nm
Rocking Platform shaker VWR international 40000-304 
Microcentrifuge Eppendorf 5417R
Acryl cuvette SARSREDT 67.758
UV-Vis spectrophotometer Agilent Caty 60 UV-Vis

References

  1. Yusen, R. D., et al. The registry of the International Society for Heart and Lung Transplantation: thirty-first adult lung and heart-lung transplant report–2014; focus theme: retransplantation. The Journal of Heart and Lung Transplantation. 33 (10), 1009-1024 (2014).
  2. Lee, J. C., Christie, J. D., Keshavjee, S. Primary graft dysfunction: definition, risk factors, short- and long-term outcomes. Seminars in Respiratory and Critical. 31 (2), 161-171 (2010).
  3. Chatterjee, S., Nieman, G. F., Christie, J. D., Fisher, A. B. Shear stress-related mechanosignaling with lung ischemia: lessons from basic research can inform lung transplantation. American Journal of Physiology-Lung Cellular and Molecular Physiology. 307 (9), 668-680 (2014).
  4. Inagaki, K., et al. Inhibition of delta-protein kinase C protects against reperfusion injury of the ischemic heart in vivo. Circulation. 108 (19), 2304-2307 (2003).
  5. Lincoff, A. M., et al. Inhibition of delta-protein kinase C by delcasertib as an adjunct to primary percutaneous coronary intervention for acute anterior ST-segment elevation myocardial infarction: results of the PROTECTION AMI Randomized Controlled Trial. European Heart Journal. 35 (37), 2516-2523 (2014).
  6. Kim, H., et al. deltaV1-1 Reduces Pulmonary Ischemia Reperfusion-Induced Lung Injury by Inhibiting Necrosis and Mitochondrial Localization of PKCdelta and p53. American Journal of Transplantation. 16 (1), 83-98 (2016).
  7. Lin, H. W., et al. Derangements of post-ischemic cerebral blood flow by protein kinase C delta. 신경과학. 171 (2), 566-576 (2010).
  8. Lin, H. W., et al. Protein kinase C delta modulates endothelial nitric oxide synthase after cardiac arrest. Journal of Cerebral Blood Flow Metabolism. 34 (4), 613-620 (2014).
  9. Albini, A., et al. HIV-tat protein is a heparin-binding angiogenic growth factor. Oncogene. 12 (2), 289-297 (1996).
  10. Kim, H., Moodley, S., Liu, M. TAT cell-penetrating peptide modulates inflammatory response and apoptosis in human lung epithelial cells. Drug Delivery and Translational Research. 5 (3), 275-278 (2015).
  11. Lee, D., Pacheco, S., Liu, M. Biological effects of Tat cell-penetrating peptide: a multifunctional Trojan horse. Nanomedicine (Lond). 9 (1), 5-7 (2014).
  12. Auffan, M., et al. Towards a definition of inorganic nanoparticles from an environmental, health and safety perspective. Nature Nanotechnology. 4 (10), 634-641 (2009).
  13. Ghosh, P., Han, G., De, M., Kim, C. K., Rotello, V. M. Gold nanoparticles in delivery applications. Advanced Drug Delivery Reviews. 60 (11), 1307-1315 (2008).
  14. Yang, H., Fung, S. Y., Liu, M. Programming the cellular uptake of physiologically stable peptide-gold nanoparticle hybrids with single amino acids. Angewandte Chemie International Edition. 50 (41), 9643-9646 (2011).
  15. Lee, D., et al. Effective delivery of a rationally designed intracellular peptide drug with gold nanoparticle-peptide hybrids. Nanoscale. 7 (29), 12356-12360 (2015).
  16. Cheng, M. M., et al. Nanotechnologies for biomolecular detection and medical diagnostics. Current Opinion in Chemical Biology. 10 (1), 11-19 (2006).
  17. Rosi, N. L., Mirkin, C. A. Nanostructures in biodiagnostics. Chemical Reviews. 105 (4), 1547-1562 (2005).
  18. Saha, K., Agasti, S. S., Kim, C., Li, X., Rotello, V. M. Gold nanoparticles in chemical and biological sensing. Chemical Reviews. 112 (5), 2739-2779 (2012).
  19. Boisselier, E., Astruc, D. Gold nanoparticles in nanomedicine: preparations, imaging, diagnostics, therapies and toxicity. Chemical Society Reviews. 38 (6), 1759-1782 (2009).
  20. Yang, H., et al. Amino Acid-Dependent Attenuation of Toll-like Receptor Signaling by Peptide-Gold Nanoparticle Hybrids. ACS Nano. 9 (7), 6774-6784 (2015).
  21. Yang, H., et al. Endosomal pH modulation by peptide-gold nanoparticle hybrids enables potent anti-inflammatory activity in phagocytic immune cells. Biomaterials. 111, 90-102 (2016).
  22. Yang, H., et al. Amino Acid Structure Determines the Immune Responses Generated by Peptide-Gold Nanoparticle Hybrids. Particle & Particle Systems Characterization. 30 (12), 1039-1043 (2013).
  23. Pamies, R., et al. Aggregation behaviour of gold nanoparticles in saline aqueous media. Journal of Nanoparticle Research. 16 (4), (2014).
  24. Perrault, S. D., Walkey, C., Jennings, T., Fischer, H. C., Chan, W. C. Mediating tumor targeting efficiency of nanoparticles through design. Nano Letters. 9 (5), 1909-1915 (2009).
  25. Connor, E. E., Mwamuka, J., Gole, A., Murphy, C. J., Wyatt, M. D. Gold nanoparticles are taken up by human cells but do not cause acute cytotoxicity. Small. 1 (3), 325-327 (2005).
  26. Kim, C. K., et al. Entrapment of Hydrophobic Drugs in Nanoparticle Monolayers with Efficient Release into Cancer Cells. Journal of the American Chemical Society. 131 (4), 1360 (2009).
  27. Sonavane, G., Tomoda, K., Makino, K. Biodistribution of colloidal gold nanoparticles after intravenous administration: Effect of particle size. Colloids and Surfaces B-Biointerfaces. 66 (2), 274-280 (2008).
  28. Balasubramanian, S. K., et al. Biodistribution of gold nanoparticles and gene expression changes in the liver and spleen after intravenous administration in rats. Biomaterials. 31 (8), 2034-2042 (2010).
  29. Lipka, J., et al. Biodistribution of PEG-modified gold nanoparticles following intratracheal instillation and intravenous injection. Biomaterials. 31 (25), 6574-6581 (2010).
check_url/kr/58741?article_type=t

Play Video

Cite This Article
Konoeda, H., Yang, H., Yang, C., Gower, A., Xu, C., Zhang, W., Liu, M. Protein Kinase C-delta Inhibitor Peptide Formulation using Gold Nanoparticles. J. Vis. Exp. (145), e58741, doi:10.3791/58741 (2019).

View Video