Summary

Funktionell magnetresonans-spektroskopi på 7 T i råtta fat Cortex under morrhår aktiveringen

Published: February 08, 2019
doi:

Summary

Efter kontroll av blod-syre-nivå-beroende funktionell magnetisk resonanstomografi (fet fMRI) som motsvarande somatosensoriska fat fältet cortex område (kallas S1BF) är korrekt aktiverad, viktigaste målet med denna studie är att kvantifiera Laktathalten fluktuationer i aktiverade råtta hjärnor av lokaliserade proton magnetisk resonans spektroskopi (1H-MRS) på 7 T.

Abstract

Kärnmagnetisk resonans (NMR) erbjuder möjlighet att mäta cerebral metabolit innehållet i vivo och noninvasivt. Tack vare teknisk utveckling under det senaste decenniet och ökningen av magnetisk fältstyrka är det nu möjligt att få bra upplösning spectra i vivo i råtthjärna. Neuroenergetics (dvs., studier av hjärnans metabolism) och, särskilt, metaboliska interaktioner mellan de olika celltyper har lockade mer och mer intresse under de senaste åren. Bland dessa metaboliska interaktioner, är förekomsten av laktat transfer mellan nervceller och astrocyter fortfarande omdebatterat. Det är därför av stort intresse att utföra funktionella proton magnetisk resonans spektroskopi (1H-MRS) i en råtta modell av hjärnan aktivering och övervaka laktat. Dock metyl laktat toppen överlappar lipid resonanstoppar och är svårt att kvantifiera. Protokollet beskrivs nedan tillåter metabola och laktat fluktuationer som ska övervakas i ett aktiverat hjärnområde. Cerebral aktiveringen erhålls genom morrhår stimulering och 1H-MRS utförs i motsvarande aktiverade fat cortex, vars område detekteras med hjälp av blod-syre-nivå-beroende funktionell magnetisk resonanstomografi (fet fMRI). Alla stegen fullt beskrivs: valet av bedövningsmedel, spolar och sekvenser, att uppnå effektiv morrhår stimulering direkt i magnet och databehandling.

Introduction

Hjärnan besitter inneboende mekanismer som gör att regleringen av dess stora substrat (dvs, glukos), både för dess bidrag och kapacitetsutnyttjande, beroende på variationer i lokal cerebral aktivitet. Glukos är den främsta energi substraten för hjärnan, har experiment utförts under de senaste åren visat att laktat, som produceras av astrocyterna, kan vara en effektiv energi substrat för nervceller. Detta väcker hypotesen om en laktat transfer mellan astrocyter och nervceller1. Känd som ANLS, för Astrocyten-neuron laktat transfer2, teorin diskuteras fortfarande högt men har lett till förslaget att glukos, i stället för att gå direkt in i nervceller, kan ange astrocyterna, där det metaboliseras till laktat, en metabolit som är , sedan, överförs till nervceller, som använder det som effektiv energi substrat. Om sådan en pendelbuss finns i vivo, skulle det ha flera viktiga konsekvenser, både för att förstå grundläggande tekniker i funktionell cerebral imaging (positronemissionstomografi [sällskapsdjur]) och för att dechiffrera de metaboliska förändringar som observerats i hjärnans sjukdomar.

Att studera hjärnans metabolism och i synnerhet, metaboliska interaktioner mellan nervceller och astrocyter, fyra huvudsakliga tekniker är tillgänglig (inte inklusive mikro-/ nanosensorer): autoradiografi, PET, två-photon fluorescerande konfokalmikroskopi och MRS. Autoradiografi var en av de första metoder som föreslås och ger bilder av regionala ansamling av radioaktivt 14C-2-deoxyglucose i hjärnan skivor, medan PET avkastning i vivo bilder av det regionala upptaget av radioaktivt 18 F-deoxyglucose. De båda har nackdelen med att använda irradiative molekyler samtidigt som det producerar bilder med låg-spatial upplösning. Två-foton mikroskopi cellulära lösning av fluorescerande sonder, men ljusspridning av vävnad begränsar imaging djupet. Dessa tre tekniker har tidigare använts för att studera neuroenergetics hos gnagare under morrhår stimulering3,4,5,6. In vivo MRS har den dubbla fördelen av att vara icke-invasiv och nonradioactive, och någon hjärnstruktur kan utforskas. MRS kan dessutom utföras under neuronal aktivering, en teknik som kallas funktionell MRS (fMRS), som har utvecklats mycket nyligen i gnagare7. Därför föreslås ett protokoll för att övervaka hjärnans metabolism under cerebral aktivitet av 1H-MRS i vivo och noninvasivt. Förfarandet beskrivs i vuxna friska råttor med hjärnans aktivering erhålls genom en luft-puff morrhår stimulering utförd direkt i 7 T (herr) magnetkamera men kan anpassas i genetiskt modifierade djur samt i alla sjukdomstillstånd .

Protocol

Alla djur förfaranden genomfördes enligt de riktlinjer som djur experiment av Europeiska gemenskapernas direktiv av den 24 November 1986 (86/609/EEG). Protokollet träffade de etiska riktlinjerna av det franska ministeriet för jordbruk och skogar och godkändes av de lokala etiska kommittéerna (Comité d ‘éthique pour L’ expérimentation Animale Bordeaux n ° 50112090-A). Obs: Under herr mätningarna, adekvat anestesi och fysiologiska övervakning (kroppstemperatur, andningsfrekvens) är …

Representative Results

Detta protokoll tillåter kvantifiering av metaboliten fluktuationer under hjärnans aktivering, som erhålls genom rätt morrhår stimulering direkt i magneten. I denna studie var det övergripande målet för DJÄRVA fMRI att kontrollera att morrhår stimulering var effektiva, att visualisera området aktiveras S1BF och korrekt lokalisera voxel för 1H-fMRS. Byggd för morrhår aktivering av enheten är effektiv. Ve…

Discussion

Fat cortex, även kallad S1BF för fältet somatosensoriska cortex eller fat, är en region inom det kortikala skiktet IV som kan observeras med hjälp av cytokrom c oxidas färgning9, och dess organisation är väl kända eftersom det har varit till stor del beskrivs 10,11. En vibrissa är ansluten till ett fat, som omkring 19.000 nervceller är organiserade i en kolumn12. Whisker-till-fat cortex vägen har flera f…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Detta arbete stöds av LabEx TRAIL bidraget, referens ANR-10-LABX-57 och en Fransman-Schweizare ANR-FNS bevilja referens ANR-15-CE37-0012. Författarna vill tacka Aurélien Trotier för hans teknisk support.

Materials

0.5 mL syringe with needle Becton, Dickinson and Company, USA 2020-10 0.33 mm (29 G) x 12.7 mm
1H spectroscopy surface coil Bruker, Ettlingen, Germany T116344
7T Bruker Biospec system Bruker, Ettlingen, Germany 70/20 USR
Arduino Uno based pulsing device custom made
Atipamezole Vétoquinol, S.A., France V8335602 Antisedan, 4.28 mg
Breathing mask custom made
Eye ointment TVM laboratoire, France 40365 Ocry gel 10 g
Induction chamber custom made 30x17x15 cm
Inlet flexible pipe Gardena, Germany 1348-20 4.6-mm diameter, 3m long
Isoflurane pump, Model 100 series vaporizer, classic T3 Surgivet, Harvard Apparatus WWV90TT from OH 43017, U.S.A
Isoflurane, liquid for inhalation Vertflurane, Virbac, France QN01AB06 1000 mg/mL
KD Scientific syringe pump KD sientific, Holliston, USA Legato 110
LCModel software LCModel Inc., Ontario, Canada 6.2
Medetomidine hydrochloride Vétoquinol, S.A., France QN05CM91 Domitor, 1 mg/mL
Micropore roll of adhesive plaster 3M micropore, Minnesota, United States MI912
Micropore roll of adhesive plaster 3M micropore, Minnesota, United States MI925
Monitoring system of physiologic parameter SA Instruments, Inc, Stony Brook, NY, USA Model 1025
NaCl Fresenius Kabi, Germany B05XA03 0.9 % 250 mL
Outlet flexible pipe Gardena, Germany 1348-20 4.6-mm diameter, 4m long
Paravision software Bruker, Ettlingen, Germany 6.0.1
Peripheral intravenous catheter Terumo, Shibuya, Tokyo, Japon SP500930S 22 G x 1", 0.85×25 mm, 35 mL/min
Rat head coil Bruker, Ettlingen, Germany
Sodic heparin, injectable solution Choai, Sanofi, Paris, France B01AB01 5000 IU/mL
Solenoid control valves, plunger valve 2/2 way direct-acting Burkert, Germany 3099939 Model type 6013
Terumo 2 ml syringe Terumo, Shibuya, Tokyo, Japon SY243 with 21 g x 5/8" needle
Terumo 5 mL syringe Terumo, Shibuya, Tokyo, Japon 05SE1
Wistar RJ-Han rats Janvier Laboratories, France

References

  1. Pellerin, L., et al. Activity-dependent regulation of energy metabolism by astrocytes: an update. Glia. 55, 1251-1262 (2007).
  2. Pellerin, L., Magistretti, P. J. Glutamate uptake into astrocytes stimulates aerobic glycolysis: a mechanism coupling neuronal activity to glucose utilization. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 91, 10625-10629 (1994).
  3. Cholet, N., et al. Local injection of antisense oligonucleotides targeted to the glial glutamate transporter GLAST decreases the metabolic response to somatosensory activation. Journal of Cerebral Blood Flow & Metabolism. 21, 404-412 (2001).
  4. Voutsinos-Porche, B., et al. Glial Glutamate Transporters Mediate a Functional Metabolic Crosstalk between Neurons and Astrocytes in the Mouse Developing Cortex. Neuron. 37, 275-286 (2003).
  5. Zimmer, E. R., et al. [18F]FDG PET signal is driven by astroglial glutamate transport. Nature Neuroscience. 20 (3), 393-395 (2017).
  6. Haiss, F., et al. Improved in vivo two-photon imaging after blood replacement by perfluorocarbon. The Journal of Physiology. , (2009).
  7. Mullins, P. G. Towards a theory of functional magnetic resonance spectroscopy (fMRS): A meta-analysis and discussion of using MRS to measure changes in neurotransmitters in real time. Scandinvian Journal of Psychology. 59, 91-103 (2018).
  8. Wong-Riley, M. T., Welt, C. Histochemical changes in cytochrome oxidase of cortical barrels after vibrissal removal in neonatal and adult mice. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 77, 2333-2337 (1980).
  9. Petersen, C. C. The functional organization of the barrel cortex. Neuron. 56, 339-355 (2007).
  10. Cox, S. B., Woolsey, T. A., Rovainen, C. M. Localized dynamic changes in cortical blood flow with whisker stimulation corresponds to matched vascular and neuronal architecture of rat barrels. Journal of Cerebral Blood Flow & Metabolism. 13, 899-913 (1993).
  11. Feldmeyer, D. Excitatory neuronal connectivity in the barrel cortex. Frontiers in Neuroanatomy. 6, 24 (2012).
  12. Boussida, S., Traore, A. S., Durif, F. Mapping of the brain hemodynamic responses to sensorimotor stimulation in a rodent model: A BOLD fMRI study. PLoS One. 12, e0176512 (2017).
  13. Heinke, W., Koelsch, S. The effects of anesthetics on brain activity and cognitive function. Current Opinion in Anesthesiology. 18, 625-631 (2005).
  14. Horn, T., Klein, J. Lactate levels in the brain are elevated upon exposure to volatile anesthetics: a microdialysis study. Neurochemistry International. 57, 940-947 (2010).
  15. Boretius, S., et al. Halogenated volatile anesthetics alter brain metabolism as revealed by proton magnetic resonance spectroscopy of mice in vivo. Neuroimage. 69, 244-255 (2013).
  16. Sinclair, M. D. A review of the physiological effects of alpha2-agonists related to the clinical use of medetomidine in small animal practice. Canadian Veterinary Journal. 44, 885-897 (2003).
  17. Weber, R., et al. A fully noninvasive and robust experimental protocol for longitudinal fMRI studies in the rat. Neuroimage. 29, 1303-1310 (2006).
  18. Hartmann, M. J., Johnson, N. J., Towal, R. B., Assad, C. Mechanical characteristics of rat vibrissae: resonant frequencies and damping in isolated whiskers and in the awake behaving animal. The Journal of Neuroscience. 23, 6510-6519 (2003).
  19. Prichard, J., et al. Lactate rise detected by 1H NMR in human visual cortex during physiologic stimulation. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 88, 5829-5831 (1991).
  20. Sappey-Marinier, D., et al. Effect of photic stimulation on human visual cortex lactate and phosphates using 1H and 31P magnetic resonance spectroscopy. Journal of Cerebral Blood Flow & Metabolism. 12, 584-592 (1992).
  21. Mazuel, L., et al. A neuronal MCT2 knockdown in the rat somatosensory cortex reduces both the NMR lactate signal and the BOLD response during whisker stimulation. PLoS One. 12, e0174990 (2017).
  22. Castellano, G., et al. NAA and NAAG variation in neuronal activation during visual stimulation. Brazilian Journal of Medical and Biological Research. 45, 1031-1036 (2012).
  23. Sarchielli, P., et al. Functional 1H-MRS findings in migraine patients with and without aura assessed interictally. Neuroimage. 24, 1025-1031 (2005).
  24. Baslow, M. H., Hrabe, J., Guilfoyle, D. N. Dynamic relationship between neurostimulation and N-acetylaspartate metabolism in the human visual cortex: evidence that NAA functions as a molecular water pump during visual stimulation. Journal of Molecular Neuroscience. 32, 235-245 (2007).
  25. Mangia, S., Tkac, I. Dynamic relationship between neurostimulation and N-acetylaspartate metabolism in the human visual cortex: evidence that NAA functions as a molecular water pump during visual stimulation. Journal of Molecular Neuroscience. 35, 245-248 (2008).
  26. Baslow, M. H., Hrabal, R., Guilfoyle, D. N. Response of the authors to the Letter by Silvia Mangia and Ivan Tkac. Journal of Molecular Neuroscience. 35, 247-248 (2008).
  27. Barros, L. F., Weber, B. CrossTalk proposal: an important astrocyte-to-neuron lactate shuttle couples neuronal activity to glucose utilisation in the brain. The Journal of Physiology. 596, 347-350 (2018).
  28. Bak, L. K., Walls, A. B. CrossTalk opposing view: lack of evidence supporting an astrocyte-to-neuron lactate shuttle coupling neuronal activity to glucose utilisation in the brain. The Journal of Physiology. 596, 351-353 (2018).
check_url/kr/58912?article_type=t

Play Video

Cite This Article
Blanc, J., Roumes, H., Mazuel, L., Massot, P., Raffard, G., Biran, M., Bouzier-Sore, A. Functional Magnetic Resonance Spectroscopy at 7 T in the Rat Barrel Cortex During Whisker Activation. J. Vis. Exp. (144), e58912, doi:10.3791/58912 (2019).

View Video