Summary

デジタルPCRを用いたマウス組織における異種マウスモデルにおける移植片対宿主病の誘導とスコア付け

Published: May 23, 2019
doi:

Summary

ここでは、異種系移植片対宿主病(xenoGVHD)モデルにおける疾患を誘導し、スコア付けするプロトコルを提示する。xenoGVHDは、ヒトT細胞の免疫抑制を研究するためのインビボモデルを提供する。さらに、免疫抑制を定量化するツールとしてデジタルPCRを用いて組織内のヒトT細胞を検出する方法について述べた。

Abstract

急性移植片対宿主病(GVHD)は、血液学的欠乏および悪性腫瘍の治療として造血幹細胞移植を受けている患者にとって重要な制限である。急性GVHDは、ドナーT細胞が宿主組織を外来抗原として認識し、宿主に免疫応答をマウントするときに起こる。現在の治療には、患者が感染や再発を受けやすくする有毒な免疫抑制薬が含まれます。したがって、ドナーT細胞を効果的に標的にし、副作用を減らすことができる急性GVHD療法を提供するための継続的な研究があります。この前臨床研究の多くは、生体内系のマウス細胞ではなくヒト細胞に対する免疫抑制療法の試験を可能にする異種生成GVHD(xenoGVHD)マウスモデルを使用しています。このプロトコルは、xenoGVHDを誘導する方法と、一貫した結果を確実にするために臨床スコアリングを盲目にし、標準化する方法を概説します。さらに、このプロトコルは、デジタルPCRを使用してマウス組織内のヒトT細胞を検出する方法について説明し、その後、試験された治療の有効性を定量化するために使用することができる。xenoGVHDモデルは、GVHD療法をテストするモデルを提供するだけでなく、ヒトT細胞を抑制できる任意の治療法を提供し、多くの炎症性疾患に適用することができる。

Introduction

同種造血幹細胞移植(HSCT)は、予後不良の白血病などの血液学的悪性腫瘍に苦しむ患者の日常的な治療となっている。HSCTの有意な合併症は急性移植片対宿主病(GVHD)である。2012年の研究では、急性GVHDが兄弟ドナーから移植を受けているHSCT患者の39%と無関係なドナー1からの移植を受けている患者の59%で開発されたと報告されています。急性GVHDは、ドナー由来のT細胞がレシピエントの臓器を攻撃するときに起こる。GVHDの唯一の成功した治療法は、非常に毒性が高く、感染および腫瘍再発のリスクを高める高い免疫抑制薬2による治療である。したがって、近年3、4、5の急性GVHD生存率で行われた改善にもかかわらず、長期寛解を促進する毒性を最小限に抑えたGVHD療法の改善が依然として重要である。

以下の方法の全体的な目標は、異種系GVHD(xenoGVHD)を誘導し、スコア付けすることです。xenoGVHDモデルは、前臨床GVHD研究を臨床試験6に直接翻訳することを可能にするマウス細胞ではなくヒト細胞で急性GVHDを誘導するツールとして開発された。このモデルは、ヒト末梢血単核細胞(PBMC)を、非致死的に照射されるNOD-SCID IL-2Rγヌル(NSG)マウスに静脈内注入することを含む。注入されたヒトT細胞は、マウス抗原を提示するヒト抗原提示細胞(APC)によって活性化され、活性化されたT細胞は、全身性炎症および最終的に死亡する遠隔組織に移行する6、7、8,9,10.xenoGVHDモデルにおける疾患病理および進行は、ヒト急性GVHDを密接に模倣する。具体的には、病原性ヒトT細胞は、マウス主要組織適合性複合体(MHC)タンパク質に反応し、ヒトGVHD6、9におけるT細胞アロア活性に類似している。マウスMHCミスマッチモデルに対するxenoGVHDモデルの主な利点は、他の広く使用されているGVHDモデルは、マウス細胞ではなくヒト細胞上の治療法の試験を可能にすることである。これにより、ヒト細胞を標的とするため、変更を加えずに直接クリニックに翻訳できる製品のテストが可能になります。近年、このモデルは、急性GVHDの潜在的な治療法としてヒト抗IL-2抗体11、ヒト胸腺調節T細胞(Tregs)12およびヒト間葉系幹細胞13を試験するために用いられている。より広い文脈において、このモデルは、ヒトT細胞活性を抑制することができる任意の薬物または細胞型に対する生体内抑制アッセイとして使用することができる。例えば、Stockis et al.14はxenoGVHDモデルを用いて、生体内のトレグ抑制活性に対するインテグリンαVβ8のブロッキング効果を研究した。したがって、xenoGVHDモデルは、インビボ設定でT細胞を標的とする任意の治療のメカニズムに関する洞察を提供することができる。

このプロトコルに記載されている追加の方法は、デジタルポリメラーゼ連鎖反応(dPCR)を用いてマウス組織中のヒトT細胞を検出する方法である。この方法の目的は、このモデルで試験されている免疫抑制療法の有効性を測定する標的組織におけるT細胞の移動および増殖を定量化するツールを提供することである。dPCRは、核酸15の定量のための比較的新しい方法である。簡単に言えば、PCR反応混合物は、ターゲット配列の少数を含むパーティションに分割されるか、またはターゲットがまったく含まれていません。次に、標的配列を増幅し、DNAインターカシング染料または蛍光標的特異的プローブを用いて検出します。dPCR は、正のパーティションとポアソンの統計15,16の割合に基づいて、ターゲット シーケンスのコピー数を定量化します。dPCRを用いてT細胞を検出することは、フローサイトメトリーおよび組織学を含む他の代替方法と比較してはるかに少ない組織を必要とし、凍結または固定組織上で行うことができる。dPCR は、コピー番号を決定するための標準曲線を必要とせず、技術的な反復も必要ありません。これにより、従来の定量的PCR(qPCR)16と比較して、dPCRに必要な試薬およびテンプレートDNAの量が減少します。pcR反応をdPCRのサブ反応に分割すると、ターゲット17が効果的に濃縮されます。したがって、dPCRは、主に大量の非標的DNA中の希少標的を検出するためのツールである。例えば、dPCRは、牛乳18における細菌汚染を検出し、エストロゲン受容体遺伝子19のまれな変異を同定し、患者20の血液中の循環腫瘍DNAを検出するために使用されている。このプロトコルでは、dPCRはxenoGVHDを有するマウスの組織におけるヒトT細胞を検出および定量するための効率的なツールとして機能する。

Protocol

すべてのマウス実験は、カンザス大学医療センター機関動物ケア・使用委員会の承認を得て、コンプライアンスに従って行われました。すべての健康なヒト血液サンプルは、インフォームドコンセントの下で、カンザス大学医療センターの機関審査委員会の承認を得ました。 1. NSGマウスの照射 PBMC注射の1日前に、8〜12週齢のNSGマウスを照射する(どちらの性別も使…

Representative Results

ヒトPBMCを受けた両男女の8〜12週齢のNSGマウスを、PBSのみを受け取った陰性対照マウスと比較して10日目のポスト注射の臨床徴候を示し始めた(図1A)。XenoGVHDマウスは23.5日の中央値生存期間を有した(図1B)。デジタルPCRを用いて、CD3イプシロン陽性ヒトT細胞は、ヒトPBMCを受けたマウスの肺および肝臓サンプルで検出することが…

Discussion

疾患の進行は、一般的に異なるドナーからのPBMCの注入であっても、xenoGVHDモデルで一貫しているので、複数の実験を組み合わせることができます。この一貫性を維持するために必要な重要な手順は、適切なi.v.インジェクション技術、ブラインドと一貫性のあるスコアリングです。Nervi et al.25による研究は、静脈内尾静脈注射と比較して、PBMCのレトロ軌道注射がより一貫性の…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

レーン・クリステンソンの研究室では、これらの実験で使用されるデジタルPCRマシンを提供し、提供される技術サポートを提供することを認めしたいと思います。また、トーマス・ヤンキー博士の指導と指導に感謝します。これらの研究は、トリップファミリー財団によって支援されました。

Materials

1.5 mL eppendorf tubes Fisher 05-408-129
10 mL serological pipet VWR International 89130-898
10mL BD Vacutainers – Green capped with Sodium Heparin Becton Dickinson 366480
250 µL Ranin pipette tips Rainin 17001118 Do not use other pipettes or pipet tips for droplet generation
50 mL conical tube VWR International 89039-656
96-Well ddPCR plate Bio-Rad 12001925
ACK (Ammonium-Chloride-Potassium) Lysing Buffer Lonza 10-548E Optional
Alcohol Wipes Fisher Scientific 6818
Anesthesia Chamber World Precision Instruments EZ-178 Provided by animal facility
Anesthesia Machine Parkland Scientific PM1002 Provided by animal facility
BD Vacutainer Safety-Lok Blood Collection Set Becton Dickinson 367281
DG8 Cartridges and Gaskets for QX100/QX200 Droplet Generator Bio-Rad 1864007
DNAse and RNAse free Molecular Grade H2O Life Technologies 1811318
Ethyl alcohol, Pure,200 proof, for molecular biology Sigma-Aldrich E7023-500ML
Fetal Bovine Serum Atlanta Biologicals S11150
Ficoll Fisher Scientific 45001750
Insulin Syringe Fisher Scientific 329424
Isoflurane Sigma-Aldrich CDS019936 Provided by animal facility
Liquid nitrogen N/A N/A
Mouse Irradiator Pie Cage Braintree Scientific, Inc. MPC 1 Holds up to 11 mice
Nexcare Gentle Paper Tape (a.k.a. 3M Micropore Surgical Tape / 3/4") Fisher Scientific 19-027-761
P1000 pipetman MidSci A-1000
P200 pipetman MidSci A-200
Pierceable Foil Heat Seal Bio-Rad 1814040
Pipetaid Gilson Macroman Fisher Scientific F110756
Pipet-Lite Multi Pipette L8-200XLS+ Rainin 17013805 Do not use other pipettes or pipet tips for droplet generation
Qiagen DNeasy Blood and Tissue Kit Qiagen 69506
qPCR plates VWR International 89218-292
QX200 Droplet Digital PCR System Bio-Rad 12001925 Includes droplet generator, droplet reader, laptop computer, software, associated component consumables, for EvaGreen or probe-based digital PCR applications
QX200 Droplet Generation Oil for EvaGreen Bio-Rad 1864006
QX200 ddPCR EvaGreen Supermix Bio-Rad 1864033
RNase and DNase-free plate seal Thermo Scientific 12565491
RPMI Advanced 1640 Life Technologies 12633012
Sterile Gauze Pads (2" x 2", 12-Ply) Fisher Scientific 67522
Sterile Phosphate Buffered Saline Fisher Scientific 21040CV
Sterile reservoir VWR International 89094-662
Surgial Scissors Kent Scientific INS600393-4
Surgical Forceps Kent Scientific INS650914-4

References

  1. Jagasia, M., et al. Risk factors for acute GVHD and survival after hematopoietic cell transplantation. Blood. 119 (1), 296-307 (2012).
  2. Bolanos-Meade, J., et al. Phase 3 clinical trial of steroids/mycophenolate mofetil vs steroids/placebo as therapy for acute GVHD: BMT CTN 0802. Blood. 124 (22), 3221-3227 (2014).
  3. Gooley, T. A., et al. Reduced mortality after allogeneic hematopoietic-cell transplantation. New England Journal of Medicine. 363 (22), 2091-2101 (2010).
  4. Hahn, T., et al. Significant improvement in survival after allogeneic hematopoietic cell transplantation during a period of significantly increased use, older recipient age, and use of unrelated donors. Journal of Clinical Oncology. 31 (19), 2437-2449 (2013).
  5. Khoury, H. J., et al. Improved survival after acute graft-versus-host disease diagnosis in the modern era. Haematologica. 102 (5), 958-966 (2017).
  6. King, M. A., et al. Human peripheral blood leucocyte non-obese diabetic-severe combined immunodeficiency interleukin-2 receptor gamma chain gene mouse model of xenogeneic graft-versus-host-like disease and the role of host major histocompatibility complex. Clinical & Experimental Immunology. 157 (1), 104-118 (2009).
  7. Lucas, P. J., Shearer, G. M., Neudorf, S., Gress, R. E. The human antimurine xenogeneic cytotoxic response. I. Dependence on responder antigen-presenting cells. Journal of Immunology. 144 (12), 4548-4554 (1990).
  8. Ito, R., et al. Highly sensitive model for xenogenic GVHD using severe immunodeficient NOG mice. Transplantation. 87 (11), 1654-1658 (2009).
  9. Kawasaki, Y., et al. Comprehensive Analysis of the Activation and Proliferation Kinetics and Effector Functions of Human Lymphocytes, and Antigen Presentation Capacity of Antigen-Presenting Cells in Xenogeneic Graft-Versus-Host Disease. Biology of Blood and Marrow Transplantation. 24 (8), 1563-1574 (2018).
  10. Ito, R., et al. A Novel Xenogeneic Graft-Versus-Host Disease Model for Investigating the Pathological Role of Human CD4(+) or CD8. T Cells Using Immunodeficient NOG Mice. American Journal of Transplantation. 17 (5), 1216-1228 (2017).
  11. Trotta, E., et al. A human anti-IL-2 antibody that potentiates regulatory T cells by a structure-based mechanism. Nature Medicine. 24 (7), 1005-1014 (2018).
  12. Dijke, I. E., et al. Discarded Human Thymus Is a Novel Source of Stable and Long-Lived Therapeutic Regulatory T Cells. American Journal of Transplantation. 16 (1), 58-71 (2016).
  13. Huang, F., et al. Human Gingiva-Derived Mesenchymal Stem Cells Inhibit Xeno-Graft-versus-Host Disease via CD39-CD73-Adenosine and IDO Signals. Frontiers in Immunology. 8, 68 (2017).
  14. Stockis, J., et al. Blocking immunosuppression by human Tregs in vivo with antibodies targeting integrin alphaVbeta8. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 114 (47), E10161-E10168 (2017).
  15. Vogelstein, B., Kinzler, K. W. Digital PCR. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 96 (16), 9236-9241 (1999).
  16. Quan, P. L., Sauzade, M., Brouzes, E. dPCR: A Technology Review. Sensors (Basel). 18 (4), (2018).
  17. Sykes, P. J., et al. Quantitation of targets for PCR by use of limiting dilution. Biotechniques. 13 (3), 444-449 (1992).
  18. Ma, H., et al. Evaluation of Bacterial Contamination in Goat Milk Powder Using PacBio Single Molecule Real-Time Sequencing and Droplet Digital PCR. Journal of Food Protection. , 1791-1799 (2018).
  19. Vitale, S. R., et al. An optimized workflow to evaluate estrogen receptor gene mutations in small amounts of cell-free DNA. Journal of Molecular Diagnostics. , (2018).
  20. Gorgannezhad, L., Umer, M., Islam, M. N., Nguyen, N. T., Shiddiky, M. J. A. Circulating tumor DNA and liquid biopsy: opportunities, challenges, and recent advances in detection technologies. Lab Chip. 18 (8), 1174-1196 (2018).
  21. Yardeni, T., Eckhaus, M., Morris, H. D., Huizing, M., Hoogstraten-Miller, S. Retro-orbital injections in mice. LabAnimal. 40 (5), 155-160 (2011).
  22. Machholz, E., Mulder, G., Ruiz, C., Corning, B. F., Pritchett-Corning, K. R. Manual restraint and common compound administration routes in mice and rats. Journal of Visualized Experiments. (67), (2012).
  23. Cooke, K. R., et al. An experimental model of idiopathic pneumonia syndrome after bone marrow transplantation: I. The roles of minor H antigens and endotoxin. Blood. 88 (8), 3230-3239 (1996).
  24. Weisdorf, D. J., et al. Prospective grading of graft-versus-host disease after unrelated donor marrow transplantation: a grading algorithm versus blinded expert panel review. Biology of Blood and Marrow Transplantation. 9 (8), 512-518 (2003).
  25. Nervi, B., et al. Factors affecting human T cell engraftment, trafficking, and associated xenogeneic graft-vs-host disease in NOD/SCID beta2mnull mice. Experimental Hematology. 35 (12), 1823-1838 (2007).
  26. Leon-Rico, D., et al. Comparison of haematopoietic stem cell engraftment through the retro-orbital venous sinus and the lateral vein: alternative routes for bone marrow transplantation in mice. LabAnimal. 49 (2), 132-141 (2015).
  27. Ali, N., et al. Xenogeneic graft-versus-host-disease in NOD-scid IL-2Rgammanull mice display a T-effector memory phenotype. PLoS One. 7 (8), e44219 (2012).
  28. van Rijn, R. S., et al. A new xenograft model for graft-versus-host disease by intravenous transfer of human peripheral blood mononuclear cells in RAG2-/- gammac-/- double-mutant mice. Blood. 102 (7), 2522-2531 (2003).
  29. Wunderlich, M., et al. OKT3 prevents xenogeneic GVHD and allows reliable xenograft initiation from unfractionated human hematopoietic tissues. Blood. 123 (24), e134-e144 (2014).
  30. Schroeder, M. A., DiPersio, J. F. Mouse models of graft-versus-host disease: advances and limitations. Disease Models & Mechanisms. 4 (3), 318-333 (2011).
  31. Zeiser, R., Blazar, B. R. Preclinical models of acute and chronic graft-versus-host disease: how predictive are they for a successful clinical translation?. Blood. 127 (25), 3117-3126 (2016).
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Seng, A., Markiewicz, M. A. Induction and Scoring of Graft-Versus-Host Disease in a Xenogeneic Murine Model and Quantification of Human T Cells in Mouse Tissues using Digital PCR. J. Vis. Exp. (147), e59107, doi:10.3791/59107 (2019).

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