Summary

Vann fordelingen fra Xylem i Woody Plants

Published: June 20, 2019
doi:

Summary

Observere vann fordelingen i xylem gir betydelig informasjon om vannstrømmen dynamikk i Woody planter. I denne studien viser vi den praktiske tilnærmingen til å observere vannfordeling i xylem ved hjelp av en kryostaten og en fryse-SEM, som eliminerer artifactual endringer i vann statusen under prøve forberedelsen.

Abstract

Et skanner elektronmikroskop som er installert på fryse enheten (Frys-SEM) gjør det mulig å observere prøven ved Subzero temperaturer og har blitt brukt til å utforske vannfordeling i plante vev i kombinasjon med fryse fiksering teknikker ved hjelp av flytende nitrogen (LN 2). for Woody arter, men forberedelser for å observere xylem tverrgående-cut overflaten innebære noen vanskeligheter på grunn av retningen av tre fibre. I tillegg kan høyere spenning i vannsøylen i xylem-kanaler av og til forårsake artifactual endringer i vann fordelingen, spesielt under prøve fiksering og-oppsamling. I denne studien, viser vi en effektiv prosedyre for å observere vann fordelingen i xylem av Woody planter in situ ved hjelp av en kryostaten og fryse-SEM. Ved første, under prøvetaking samling, måle xylem vann potensialet bør avgjøre om høy spenning er til stede i xylem rør. Når vann potensialet i xylem er lavt (< ca. − 0,5 MPa), er det nødvendig med en spennings hvile prosedyre for å tilrettelegge for bedre bevaring av vann statusen i xylem-rør under prøve fryse fiksering. Deretter festes en vanntett krage rundt trestammen og fylles med LN2 for fryse fiksering av vann statusen til xylem. Etter høsting, forsiktighet bør utvises for å sikre at prøven er bevart frosset mens fullføre prosedyrene for prøven forberedelse til observasjon. En kryostaten er ansatt for å tydelig avdekke xylem tverrgående overflate. I Freeze-SEM observasjoner, tid justering for fryse-etsing er nødvendig for å fjerne frost støv og fremheve kanten av celleveggene på visningsflaten. Våre resultater viser anvendelsen av fryse-SEM teknikker for observasjon av vann distribusjon innen xylem på mobilnettet og subcellulære nivåer. Kombinasjonen av fryse-SEM med ikke-ødeleggende in situ observasjon teknikker vil dypt forbedre utforskningen av Woody plante vannstrømmen dynamikk.

Introduction

Tilgjengelighet av vannressurser (dvs. nedbør, jord vanninnhold) avgjør strengt dødelighet og Geografisk fordeling av plantearter, siden de trenger å absorbere vann fra jorda og transportere den til bladene for fotosyntetiske produksjon. Planter må opprettholde sitt vann transport system under varierende vannforsyninger. Spesielt, Woody planter generere høye spenninger i sine kanaler langs transpirasjon bekker som, i noen tilfeller, de trenger for å holde sin krone mer enn ~ 100 m over bakken. For å opprettholde vannsøyler under så høyt negativt trykk, består xylem-kanalene av et kontinuum av rørformede celler med stive og hydrofobe lignified celle vegger1. Sårbarheten for å xylem dysfunksjon av xylem-kanaler i hver art er en god avgjørende faktor for arten overlevelse under varierende vannforsyning2. I tillegg studere vann status xylem energibærere er viktig for evalueringen av helsetilstanden til enkelte trær utsatt for abiotiske eller biotiske påkjenninger. Måler SAP flyte eller vann muligheter kanne skaffe anslår av en Woody plante ‘ vann rang på grunn av det integrert hydraulisk funksjonen av xylem rør. Videre kan visualisering av vann fordelingen i xylem-cellene avklare tilstanden til de enkelte komponentene i hydraulikksystemet i xylem.

Flere teknikker for å visualisere vannet status for xylem energibærere finnes3. Den klassiske og nyttige metoder for å observere vann trasé i Woody vev innebære farging av vannsøylen ved å senke endene av kuttet grener i et fargestoff eller ved å injisere et fargestoff i stående trestammer4. Soft x-ray Photography også tillater visualisering av vann distribusjon av skiver av tre plater på grunn av differensial X-ray absorpsjon intensiteten av fuktigheten i xylem5,6. Disse metodene, men bare gi spor av vann bevegelse eller demonstrere makroskopisk distribusjoner av vann. Nylig, ikke-destruktive observasjons teknikker, slik som Micro Focus X-ray beregnet tomografi (benvolum)7,8,9,10og magnetisk resonans imaging (MRI)11, 12, har blitt betydelig forbedret for å tillate observasjon av vann i xylem-kanaler innenfor intakt saplings. Disse ikke-destruktive metoder har store fordeler i at vi kan observere xylem ‘ s vann status uten kunstige skjære effekter, og vi kan spore vannstrømmen dynamikk ved sekvensiell Imaging eller innføre en kontrast agent10. Men vi trenger å bruke en tilpasset MRI for anlegget Imaging eller et spesialisert anlegg for Synchrotron-baserte Benvolum for å få bilder som kan identifisere cellulære nivå vanninnhold. I tillegg, selv om den Synchrotron-baserte benvolum system aktivert for å oppnå fine bilder med høy romlig oppløsning, som kan sammenlignes med lys mikroskopi7,8,9, kan levende celler bli skadet av stråling av høy energi X-ray13,14. Ansette en skanning elektronmikroskop der fryse-enheter er installert (fryse-SEM) er en svært nyttig metode for nøyaktig lokalisering av vann i xylem på cellenivå, selv om dette krever ødeleggende måte høsting prøven for observasjon. For å fikse vannet i xylem-kanaler, er en del av stilkene (dvs. kvister, grener eller stengler) frosset in situ av flytende nitrogen (LN2). Observasjoner av overflaten av trimmet, frosne eksemplarer av fryse-SEM gir svært forstørret bilder av xylem strukturen som vi kan identifisere vannet i xylem energibærere som is. En betydelig begrensning av denne metoden er at sekvensiell observasjon av vann bevegelighet innenfor samme prøve er umulig. Imidlertid er anvendelsen av Benvolum eller MRI for sekvensiell observasjon av trær som bor i et felt ekstremt utfordrende fordi disse instrumentene ikke er bærbare. I kontrast, har fryse-SEM et potensial for å bruke denne teknikken på store trær i feltet eksperimenter for å tydelig visualisere vanninnholdet på ikke bare cellenivå, men også på et finere struktur nivå, for eksempel vann i intervascular groper15, vann i intercellulære mellomrom16, eller bobler i vann kolonne17.

Mange studier observere xylem Water av fryse-SEM har blitt rapportert 5,12,18,19,20,21,23. Utsumi et al. (1996) etablerte først protokollen for observasjon av xylem in situ ved å fryse-fiksering av en levende stamme via fylling LN2 inn i en beholder satt på stammen21. Temperaturen på prøven ble opprettholdt under-20 ° c under prøvetaking og under fryse-SEM forberedelse for å unngå å smelte isen i xylem-kanaler. Denne metoden har blitt brukt til å observere vannet i xylem for å klargjøre vann fordelingen under skiftende vannregime11,12,24,25,26, 27,28, den sesongmessige variasjonen av vann distribusjon21,29,30, effekten av fryse-tine sykluser17,31, 32, fordelingen av vann i vått tre5, endringer i vann fordelingen under overgangen fra yteved til kjerne ved20, sesongmessige tid løpet av cambial aktivitet og differensiering av fartøy33, og kavitasjon indusert av visse biotiske spenninger23,34. Hydrauliske ledningsevne og rør sårbarhet for kavitasjon har også blitt verifisert ved hjelp av fryse-SEM35,36. Den er utstyrt med energi dispersive X-ray-massespektrometri (EDX eller EDS) som har blitt brukt til å studere element fordeling over overflaten av en prøve som inneholder vann37.

Freeze-fiksering av en levende stamme som inneholder rør under høy hydraulisk spenning noen ganger fører til kunstige kavitasjoner som er observert av Frys-SEM som brukket iskrystaller i lumen av energibærere38,39. Spesielt er løvtrær arter med lengre og bredere energibærere sårbare for spennings induserte artefakter, slik som kavitasjon forårsaket av prøve kutting, selv om det ble utført under vann3,40. Kavitasjon artefakter blir iøynefallende etter prøvetaking av et transpiring tre (dvs. prøvetaking i løpet av dagtid) eller under alvorlige tørke forhold, og de kan villede til en overvurdering av kavitasjon forekomst3,38, i 39. Derfor må spenningen som arbeider i energi rør frigis for å unngå artifactual kavitasjon3,12,39.

Den fryse-brudd teknikk ved hjelp av en kniv installert i et prøve kammer er ofte brukt for å avdekke prøveoverflaten for Freeze-SEM observasjon. Men fryse-brukket flyene av Woody plante vev, spesielt tverrgående deler av sekundær xylem, er for grovt til å tydelig observere Anatomiske egenskaper og vann i vevet6. Anvendelsen av en kryostaten for trimming av en prøve tillater rask og høy kvalitet utarbeidelse av prøve overflater20,23. Det overordnede målet med denne metoden er å gi bevis med elektron mikroskopi oppløsning av vann fordelingen i ulike typer xylem-celler in situ uten forekomst av prøvetaking gjenstander. Vi introduserer vår oppdaterte prosedyre, som har blitt stadig bedre siden vi først vedtok det, om prøvetaking, trimming og rengjøring av prøveoverflaten for å oppnå høy kvalitet elektron micrographs av fryse-faste prøver av xylem.

Protocol

Merk: et skjematisk diagram av denne protokollen er vist i figur 1. 1. prøvetaking: strekk avslapping innen Vannsøyle av Xylem energibærere Merk: følgende spenning avslapping behandling anbefales før LN2 -programmet for å unngå både frysing og spenning-indusert gjenstander i xylem vann fordelingen. Legg en gren og blader for prøvetaking med en svart plastpose for å likevekt vann potensialet mellom xylem og…

Representative Results

Representative bilder av tverrgående overflater av bartre og løvtrær Tree xylem, observert av fryse-SEM, er vist i figur 2. Ved lav forstørrelse, viser det svarte området i bildene hulrom som vannet helt eller delvis forsvinner, og det grå området indikerer xylem celle vegger, cytoplasma, og vann (figur 2A). Ved høy forstørrelse, er det tydelig at vannet ikke er helt tapt fra Lumina av tre tracheids, ind…

Discussion

The fryse-SEM observasjon metoder innført i dette papiret er praktisk for å tydelig visualisere vann fordelingen på en mobilnettet skala. Gjennom denne metoden, utforske endringene i fordelingen av vann i xylem kan potensielt bidra til å avklare mekanismen av treslag toleranse for abiotiske stress (vannmangel eller frysing) eller biotiske stress (tre sykdom).

Det mest avgjørende skritt i denne metoden er å bevare vann fordelingen karakteristisk for den innfødte vann status under prøvet…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Dette arbeidet ble støttet av JSP KAKENHI (nr. 20120009, 20120010, 19780129, 25292110, 23780190, 23248022, 15H02450, 16H04936, 16H04948, 17H03825, 18H02258)

Materials

coating material JOEL Ltd., Japan Gold wire, 0.50 × 1000 mm, 99.99 %, Parts No. 125000499 
cryo scanning electron microscope JOEL Ltd., Japan JSM-6510 installed with MP-Z09085T / MP-51020ALS
cryostat Thermo Scientific CryoStar NX70
microtome blade Thermo Scientific HP35 ULTRA Disposable Microtome Blades, 3153735
tissue freezing embedding medium Thermo Scientific Shandon Cryomatrix embedding resin, 6769006

References

  1. Tyree, M. T., Zimmermann, M. H. . Xylem structure and the ascent of sap. , (2002).
  2. Choat, B., Jansen, S., et al. Global convergence in the vulnerability of forests to drought. Nature. 491 (7426), 752-755 (2012).
  3. Klein, T., Zeppel, M. J. B., et al. Xylem embolism refilling and resilience against drought-induced mortality in woody plants: processes and trade-offs. Ecological Research. 33 (5), 839-855 (2018).
  4. Sano, Y., Okamura, Y., Utsumi, Y. Visualizing water-conduction pathways of living trees: selection of dyes and tissue preparation methods. Tree Physiology. 25 (3), 269-275 (2005).
  5. Sano, Y., Fujikawa, S., Fukazawa, K. Detection and features of wetwood in Quercusmongolica var. grosseserrata. Trees – Structure and Function. 9 (5), 261-268 (1995).
  6. Utsumi, Y., Sano, Y. Freeze stabilization and cryopreparation technique for visualizing the water distribution in woody tissues by X-ray imaging and cryo-scanning electron microscopy. Electron Microscopy. (Chapter 30), 677-688 (2014).
  7. Brodersen, C. R., McElrone, A. J., Choat, B., Matthews, M. A., Shackel, K. A. The dynamics of embolism repair in xylem: in vivo visualizations using high-resolution computed tomography). Plant Physiology. 154 (3), 1088-1095 (2010).
  8. Brodersen, C. R., McElrone, A. J., Choat, B., Lee, E. F., Shackel, K. A., Matthews, M. A. In vivo visualizations of drought-induced embolism spread in Vitis vinifera. Plant Physiology. 161 (4), 1820-1829 (2013).
  9. Choat, B., Badel, E., Burlett, R. E. G., Delzon, S., Cochard, H., Jansen, S. Noninvasive measurement of vulnerability to drought-induced embolism by X-ray microtomography. Plant Physiology. 170 (1), 273-282 (2016).
  10. Pratt, R. B., Jacobsen, A. L. Identifying which conduits are moving water in woody plants: a new HRCT-based method. Tree Physiology. 38 (8), 1200-1212 (2018).
  11. Fukuda, K., Kawaguchi, D., et al. Vulnerability to cavitation differs between current-year and older xylem: nondestructive observation with a compact MRI of two deciduous diffuse-porous species. Plant, Cell and Environment. 38 (12), 2508-2518 (2015).
  12. Ogasa, M. Y., Utsumi, Y., Miki, N. H., Yazaki, K., Fukuda, K. Cutting stems before relaxing xylem tension induces artefacts in Vitis coignetiae, as evidenced by magnetic resonance imaging. Plant, Cell and Environment. 39 (2), 329-337 (2016).
  13. Petruzzellis, F., Pagliarani, C., et al. The pitfalls of in vivo imaging techniques: evidence for cellular damage caused by synchrotron X-ray computed micro-tomography. New Phytologist. 220 (1), 104-110 (2018).
  14. Savi, T., Miotto, A., et al. Drought-induced embolism in stems of sunflower: A comparison of in vivo micro-CT observations and destructive hydraulic measurements. Plant Physiol Biochem. 120, 24-29 (2017).
  15. Choat, B., Jansen, S., Zwieniecki, M. A., Smets, E., Holbrook, N. M. Changes in pit membrane porosity due to deflection and stretching: the role of vestured pits. Journal of Experimental Botany. 55 (402), 1569-1575 (2004).
  16. Nakaba, S., Hirai, A., et al. Cavitation of intercellular spaces is critical to establishment of hydraulic properties of compression wood of Chamaecyparis obtusa seedlings. Annals of Botany. 117 (3), 457-463 (2016).
  17. Utsumi, Y., Sano, Y., Funada, R., Fujikawa, S., Ohtani, J. The progression of cavitation in earlywood vessels of Fraxinus mandshurica var japonica during freezing and thawing. Plant Physiology. 121 (3), 897-904 (1999).
  18. McCully, M., Canny, M. J., Huang, C. X. Cryo-scanning electron microscopy (CSEM) in the advancement of functional plant biology. Morphological and anatomical applications. Functional Plant Biology. 36 (2), 97-124 (2009).
  19. Canny, M. J. Vessel contents of leaves after excision – A test of Scholander’s assumption. American Journal of Botany. 84 (9), 1217-1222 (1997).
  20. Kuroda, K., Yamashita, K., Fujiwara, T. Cellular level observation of water loss and the refilling of tracheids in the xylem of Cryptomeria japonica during heartwood formation. Trees – Structure and Function. 23 (6), 1163-1172 (2009).
  21. Utsumi, Y., Sano, Y., Ohtani, J., Fujikawa, S. Seasonal changes in the distribution of water in the outer growth rings of Fraxinus mandshurica var. Japonica: A study by cryo-scanning electron microscopy. IAWA Journal. 17 (2), 113-124 (1996).
  22. Ohtani, J., Fujikawa, S. Cryo-SEM observations on vessel lumina of a living tree: Ulmus davidiana var. japonica. IAWA Journal. 11 (2), 183-194 (1990).
  23. Yazaki, K., Takanashi, T., et al. Pine wilt disease causes cavitation around the resin canals and irrecoverable xylem conduit dysfunction. Journal of Experimental Botany. 69 (3), 589-602 (2018).
  24. Tyree, M. T., Salleo, S., Nardini, A., Lo Gullo, M. A., Mosca, R. Refilling of embolized vessels in young stems of laurel. Do we need a new paradigm?. Plant Physiology. 120 (1), 11-21 (1999).
  25. Melcher, P. J., Goldstein, G., et al. Water relations of coastal and estuarine Rhizophora mangle: xylem pressure potential and dynamics of embolism formation. Oecologia. 126 (2), 182-192 (2001).
  26. Yazaki, K., Sano, Y., Fujikawa, S., Nakano, T., Ishida, A. Response to dehydration and irrigation in invasive and native saplings: osmotic adjustment versus leaf shedding. Tree Physiology. 30 (5), 597-607 (2010).
  27. Yazaki, K., Kuroda, K., et al. Recovery of physiological traits in saplings of invasive Bischofia tree compared with three species native to the Bonin Islands under successive drought and irrigation cycles. PLoS ONE. 10 (8), e0135117 (2015).
  28. Umebayashi, T., Morita, T., et al. Spatial distribution of xylem embolisms in the stems of Pinus thunbergii at the threshold of fatal drought stress. Tree Physiology. 36 (10), 1210-1218 (2016).
  29. Utsumi, Y., Sano, Y., Funada, R., Ohtani, J., Fujikawa, S. Seasonal and perennial changes in the distribution of water in the sapwood of conifers in a sub-frigid zone. Plant Physiology. 131 (4), 1826-1833 (2003).
  30. Utsumi, Y., Sano, Y., Fujikawa, S., Funada, R., Ohtani, J. Visualization of cavitated vessels in winter and refilled vessels in spring in diffuse-porous trees by cryo-scanning electron microscopy. Plant Physiology. 117 (4), 1463-1471 (1998).
  31. Ball, M. C., Canny, M. J., Huang, C. X., Egerton, J. J. G., Wolfe, J. Freeze/thaw-induced embolism depends on nadir temperature: the heterogeneous hydration hypothesis. Plant, Cell and Environment. 29 (5), 729-745 (2006).
  32. Mayr, S., Cochard, H., Ameglio, T., Kikuta, S. B. Embolism formation during freezing in the wood of Picea abies. Plant Physiology. 143 (1), 60-67 (2007).
  33. Kudo, K., Utsumi, Y., et al. Formation of new networks of earlywood vessels in seedlings of the deciduous ring-porous hardwood Quercus serrata in springtime. Trees – Structure and Function. 32 (3), 725-734 (2018).
  34. Crews, L., McCully, M., Canny, M. J., Huang, C., Ling, L. Xylem feeding by spittlebug nymphs: Some observations by optical and cryo-scanning electron microscopy. American Journal of Botany. 85 (4), 449-460 (1998).
  35. Hukin, D., Cochard, H., Dreyer, E., Le Thiec, D., Bogeat-Triboulot, M. B. Cavitation vulnerability in roots and shoots: does Populus euphratica Oliv., a poplar from arid areas of Central Asia, differ from other poplar species?. Journal of Experimental Botany. 56 (418), 2003-2010 (2005).
  36. Mayr, S., Cochard, H. A new method for vulnerability analysis of small xylem areas reveals that compression wood of Norway spruce has lower hydraulic safety than opposite wood. Plant, Cell and Environment. 26 (8), 1365-1371 (2003).
  37. Kuroda, K., Yamane, K., Itoh, Y. Cellular level in planta analysis of radial movement of artificially injected caesium in Cryptomeria japonica xylem. Trees – Structure and Function. 100 (8), 1-13 (2018).
  38. Cochard, H., Bodet, C., Ameglio, T., Cruiziat, P. Cryo-scanning electron microscopy observations of vessel content during transpiration in walnut petioles. Facts or artifacts?. Plant Physiology. 124 (3), 1191-1202 (2000).
  39. Umebayashi, T., Ogasa, M. Y., Miki, N. H., Utsumi, Y., Haishi, T., Fukuda, K. Freezing xylem conduits with liquid nitrogen creates artifactual embolisms in water-stressed broadleaf trees. Trees – Structure and Function. 30 (1), 305-316 (2016).
  40. Wheeler, J. K., Huggett, B., Tofte, A. N., Rockwell, F. E., Holbrook, N. M. Cutting xylem under tension or supersaturated with gas can generate PLC and the appearance of rapid recovery from embolism. Plant, Cell and Environment. 36 (11), 1938-1949 (2013).
  41. Canny, M. J., Huang, C. X. The cohesion theory debate continues. Trends In Plant Science. 6 (10), 454-456 (2001).
  42. Suuronen, J. -. P., Peura, M., Fagerstedt, K., Serimaa, R. Visualizing water-filled versus embolized status of xylem conduits by desktop x-ray microtomography. Plant Methods. 9 (1), 11 (2013).
check_url/kr/59154?article_type=t

Play Video

Cite This Article
Yazaki, K., Ogasa, M. Y., Kuroda, K., Utsumi, Y., Kitin, P., Sano, Y. Xylem Water Distribution in Woody Plants Visualized with a Cryo-scanning Electron Microscope. J. Vis. Exp. (148), e59154, doi:10.3791/59154 (2019).

View Video