פרוטוקול זה מתאר כיצד לבודד keratinocytes העור מדגמי העכבר, כדי להכתים עם מתכת מתויג נוגדנים, ולנתח תאים ויטראז על ידי cy, try המונית כדי לפרופיל את דפוס הביטוי של חלבונים של עניין בשלבים שונים מחזור התא.
המטרה של פרוטוקול זה היא לזהות ולכמת ביטוי חלבון שינויים באופן תלוי מחזור התא באמצעות תאים בודדים מבודדים האפידרמיס של העור העכבר. ישנם שבעה צעדים חשובים: הפרדת האפידרמיס מן dermis, העיכול של האפידרמיס, כתמים של אוכלוסיות תאים באפידרמיס עם cisplatin טינית, מדגם barcoding, צביעת עם נוגדנים מתויג מתכת עבור סמנים מחזור התא וחלבונים של ריבית, זיהוי של נוגדנים מתויגים מתכת על ידי cy, המוניים לנסות, ואת ניתוח הביטוי בשלבים מחזור התא השונים. היתרון של גישה זו על שיטות היסטולוגית הוא הפוטנציאל לסדר את תבנית הביטוי של > 40 סמנים שונים בתא בודד בשלבים שונים של מחזור התא. גישה זו מאפשרת גם ניתוח מתאם מרובה משתנים של ביטוי חלבון הניתן לכימות יותר מאשר שיטות היסטולוגית/דימות. החיסרון של פרוטוקול זה הוא כי השעיה של תאים בודדים נדרש, אשר מביא לאובדן מידע מיקום שסופקו על ידי הצביעת של מקטעי רקמות. גישה זו עשויה גם לדרוש הכללה של סמנים נוספים כדי לזהות סוגים שונים של תאים בשעיות תא גולמי. היישום של פרוטוקול זה ניכרת בניתוח של מחלת עור hyperplastic מחלות. יתר על כן, פרוטוקול זה יכול להיות מותאם לניתוח של תת סוג ספציפי של תאים (למשל, תאי גזע) על ידי הוספת נוגדנים ספציפיים לשושלת היוחסין. פרוטוקול זה יכול גם להיות מותאם לניתוח של תאי העור במינים ניסיוניים אחרים.
קורלציה של ביטוי גנים עם שלבי מחזור התא נשאר אתגר בניתוח של מודלים בעלי חיים של מחלות hyperplastic כמו סרטן. חלק מאתגר זה הוא שיתוף זיהוי של חלבונים של עניין (פוי) עם סמנים של התפשטות. תאים מתרבים ניתן למצוא שלבים שונים מחזור התא כולל G1, S, G2, ו-M. Ki67 הוא אחד הסמנים הנפוצים ביותר של התפשטות והוא מתבטא בכל השלבים של מחזור התא. זה נעשה בשימוש נרחב בניתוח של רקמות האדם והעכבר1,2,3. עם זאת, כמו סמני התפשטות כלליות אחרים, Ki67 אינו משנה שלבים במחזור תאים בודדים. גישה מדויקת יותר משתמשת התאגדות של הנוקלאוטידים האנמיטין האנלוגיים כמו ברומאודאוקסילדין (brdu) לתאים הנמצאים באופן פעיל משכפל הגנום שלהם (כלומר, S-שלב)4,5. חיסרון אחד לשימוש של נוקלאוטיד מקבילים הוא הצורך לנהל אותם לחיות בחיים שעות לפני הניתוח. Ki67 ו BrdU מזוהים בדרך כלל על מקטעים רקמה קבועה על ידי שימוש של נוגדנים. אחד היתרונות של גישה זו היא כי המיקום של POIs ניתן לברר בתוך הארכיטקטורה רקמה (למשל, שכבת הבסיס של אפידרמיס העור). גישה זו גם אינה דורשת דיסוציאציה של רקמות שעלולה להוביל לשינויים בביטוי הגנים. חיסרון אחד הוא כי קיבוע רקמות או עיבוד של הרקמה עבור OCT קפוא או הפרפין מאפשר לסגר מטרות נוגדנים (כלומר, אנטיגנים). אחזור של אנטיגנים בדרך כלל דורש עיכול חום או רקמה. הכמת של עוצמות מכתים יכול גם להיות מאתגר. הדבר נובע מווריאציות של כתמים, עובי מקטעים, זיהוי אותות והטיית מע. יתר על כן, מספר מוגבל של סמנים ניתן להבחין בו זמנית ברוב הגדרות המעבדה טיפוסי. עם זאת, גישות חדשות יותר לצביעת מחדש מבטיחים להתגבר על מגבלות אלה; דוגמאות הן הדמיה מאסיבית של cy, והגברה אות של טירמידה6,7.
Cy, הזרמת הזרימה היא טכנולוגיה חזקה נוספת כדי לזהות תאים מתרבים. זה מאפשר זיהוי מולטיפלקס של סמנים בתאים זהים אך דורש הדיסוציאציה רקמות עבור סוגי תאים שאינם המטבטיים ביותר. ניתוח של תאים מתרבים נעשה באופן שגרתי על ידי שימוש בצבעים לאגד DNA (למשל, Propidium יודיד (PI))8. Cy, הזרמת מיתרים גם מאפשרת קביעה מדויקת יותר של שלבי מחזור התא כאשר ביחד עם זיהוי של התאגדות BrdU9. למרות גישה רבת עוצמה, BrdU/PI הזרימה cy, הזורם יש חסרונות שלה. אין אפשרות לפתור את השלבים G2/M ו-G0/G1 ללא הכללה של נוגדנים ספציפיים לפאזה. עם זאת, מספר נוגדנים שניתן להשתמש בו מוגבל על ידי הסלולר autoפלואורסצנטית, גולש ספקטרלי של פליטת fluorophore, ואת השימוש של שולטת פיצוי. מגבלה זו קומות אותו יותר מאתגרת ומפרך כדי לזהות את הביטוי של סמנים מחזור התא עם pois. גישה יותר נתיישב היא להשתמש cy, המסה המוני10,11. טכנולוגיה זו משתמשת בנוגדנים מצוצרים מתכת כי יש ספקטרום זיהוי צר. ברגע שהתאים מוכתמים בנוגדנים עם מתכת-מתויג, הם מתאדה, ואת המתכות שזוהו על ידי cy, לנסות זמן הטיסה (Cyתוף) המסה ספקטרומטריה. בשל מאפיינים אלה, cy, ההמוני הגדול מאפשר זיהוי של > 40 סמנים שונים באמצעות פלטפורמות קיימות10,11. בנוסף, ניתן לבצע דגימות ברקוד עם מתכות הגורמות לחיסכון של נוגדנים יקר תוך הפחתת דגימת לדוגמה לשונות מכתים. מצד שני, לציטומה ההמוני יש כמה חסרונות. יש מספר מצומצם של נוגדנים מסחרי זמין מתכת מתויג עבור תאים שאינם בדם נגזר. הכמת של תוכן ה-DNA הוא רגיש פחות לעומת השימוש של צבע ה-DNA פלורסנט ו cy, לנסות ההמוני יש טווח דינמי מופחת של זיהוי אותות לעומת זרם הזריחה cy, try.
הפרוטוקול המתואר כאן נועד לנתח את הדינמיקה מחזור התא מן keratinocytes מבודדים (KCs) מעור העכבר ולאפיין את מחזור התא ביטוי חלבון ספציפי בתאים אלה באמצעות cy, מאסה המונית. פרוטוקול זה יכול לשמש גם עם תאים מתורבתים או מותאמים לסוגי תאים אחרים.
הפרוטוקול המתואר בנייר זה ניתן להשלים בערך 8 h. התוצאה הסופית היא השעיה של תאים מועשר KCs שניתן לנתח עבור ביטוי חלבון באופן תלוי מחזור התא. מספר מחקרים קודמים יש שיטות מתווה לבידוד kcs מעור אדם ועכבר16,25. מחקרים אלה כוללים גם פרוטוקולים עבור בידוד של KCs עבור זרימה …
The authors have nothing to disclose.
תמיכה עבור עבודה זו הגיע מהמחלקה לדרמטולוגיה, מרכז השערים לרפואה רגנרטיבית באוניברסיטת קולורדו ואוניברסיטת קולורדו (UC) מחלת העור המרכז מורפולוגיה וליבות פנוטיפים (NIAMS P30 AR057212). המחברים מכירים את ה-UC סרטן מרכז זרימה Cy, משאב משותף ותמיכה מענק (NCI P30 CA046934) עבור הפעולה של cytometry המוני ואסירי תודה על קארן הלם וכריסטין צ’יילדס בליבה עבור הייעוץ המומחים שלהם על הזרימה המונית cy, המוני טכניקות.
12-well plate | Cell Treat | 229512 | |
Intercalator solution | Fluidigm | 201192A | 125 µM – Ir intercalator solution |
Paraformaldehyde | Electron Microscopy Sciences | 30525-89-4 | 16 % PFA |
Strainer cap flow tubes | Fisher/Corning | 352235 | 35 µm pore size |
Cell sieve | Fisher | 22363547 | 40 μm pore size |
Cell detatchment solution | CELLnTEC | CnT-ACCUTASE-100 | Accutase |
Iodine Solution | ThermoFisher/Purdue | 67618-151-17 | Betadine 7.5%-iodine surgical scrub |
Barcode permeabilization buffer | Fluidigm | 201060 | Cell-ID 20-Plex Pd Barcoding Kit |
Barcodes | Fluidigm | 201060 | Cell-ID 20-Plex Pd Barcoding Kit |
pH strips | EMD | 9590 | colorpHast |
DMEM | Hyclone | SH30022.01 | Dulbecco’s Modified Eagle Media |
Fine forceps | Dumont & Fils | 0109-5-PO | Dumostar #5 |
Curved precision forceps | Dumont & Fils | 0109-7-PO | Dumostar #7 |
Calibration Beads | Fluidigm | 201078 | EQ Four Element Calibration Beads |
HBSS | Gibco | 14175-095 | Hank's Balanced Salt Solution |
Water | Fisher | SH30538.03 | Hyclone Molecular Biology grade water |
Iododeoxyuridine | Sigma | I7125 | IdU |
Cryo vials | ThermoFisher | 366656PK | internal thread |
Cell Staining buffer | Fluidigm | 201068 | Maxpar Cell Staining buffer |
Fix & Perm buffer | Fluidigm | 201067 | Maxpar Fix & Perm buffer |
Fix I buffer | Fluidigm | 201065 | Maxpar Fix I buffer |
Phosphate buffered saline | Rockland | MB-008 | Metal free 10x PBS |
isopropanol-freezing container | ThermoFisher | 5100-0001 | Mr.Frosty |
Sodium hydroxide | Fisher | BP359-500 | NaOH |
Petri dish | Kord-Valmark | 2900 | Supplied by Genesee 32-107 |
15 mL conical | Olympus/Genesee | 28-101 | |
50 mL conical | Olympus/Genesee | 28-106 | |
6-well plate | Cell Treat | 229506 | |
Cisplatin | Sigma | 479306 | |
Dispase II | Sigma/Roche | 4942078001 | |
DMSO | Sigma | D2650 | |
FBS | Atlanta Biologicals | S11150 | |
Hydrochloric acid | Fisher | A144-212 | |
Nuclear Antigen Staining permeabilization buffer | Fluidigm | 201063 | |
Nuclear Antigen Staining buffer | Fluidigm | 201063 | |
Trypan blue | Sigma | T8154 | |
Tuberculin syringe | BD | 309626 | |
Type IV Collagenase | Worthington Bioscience | CLSS-4 |