Summary

Phase solide 11C-Méthylation, purification et formulation pour la production de traceurs de PET

Published: October 24, 2019
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Summary

Nous rapportons une technique efficace de radioétiquetage de carbone-11 pour produire des traceurs médicalement pertinents pour la tomographie d’émission de Positron (PET) utilisant des cartouches d’extraction de phase pleine. 11 Ans, états-unis ( L’agent de méthylating C est passé par une cartouche préchargée avec le précurseur et l’élution successive avec l’éthanol aqueux fournit des traceurs chimiquement et radiochimiquement purs de PET dans des rendements radiochimiques élevés.

Abstract

La production courante de radiotraceurs utilisés dans la tomographie par émission de positon (TEP) repose principalement sur la chimie humide où le synthétise radioactif réagit avec un précurseur non radioactif en solution. Cette approche nécessite la purification du traceur par une chromatographie liquide de haute performance (HPLC) suivie d’une reformulation dans un solvant biocompatible pour l’administration humaine. Nous avons récemment développé une nouvelle approche de 11C-méthylation pour la synthèse très efficace des radiopharmaceutiques PET étiquetés carbone-11, tirant parti des cartouches de phase solide comme unités jetables « 3-en-1 » pour la synthèse, la purification et reformulation des traceurs. Cette approche évite l’utilisation de HPLC préparatif et réduit les pertes du traceur dans les lignes de transfert et dues à la désintégration radioactive. En outre, la technique basée sur les cartouches améliore la fiabilité de la synthèse, simplifie le processus d’automatisation et facilite le respect des exigences de bonnes pratiques de fabrication (GMP). Ici, nous démontrons cette technique sur l’exemple de la production d’un traceur DE PET Pittsburgh composé B ([11C]PiB), un agent d’imagerie in vivo de référence pour les plaques amyloïdes dans le cerveau humain.

Introduction

La tomographie par émission de positrons (TEP) est une modalité d’imagerie moléculaire qui repose sur la détection de la désintégration radioactive d’un isotope attaché à une molécule biologiquement active pour permettre la visualisation in vivo des processus biochimiques, des signaux et des transformations . Le carbone-11 (t1/2 à 20,3 min) est l’un des radio-isotopes les plus couramment utilisés dans le PET en raison de son abondance dans les molécules organiques et de sa courte demi-vie qui permet de multiples administrations de traceurs le même jour au même sujet humain ou animal et réduit le fardeau de rayonnement sur les patients. De nombreux traceurs étiquetés avec cet isotope sont utilisés dans des études cliniques et dans la recherche en santé fondamentale pour l’imagerie TEP in vivo de cibles classiques et émergentes biologiquement pertinentes – [11C]raclopride pour les récepteurs D2/D3, [11C] PiB pour les plaques amyloïdes, [11C]PBR28 pour la protéine translocator – pour n’en nommer que quelques-uns.

Les traceurs de PET étiquetés carbone-11 sont principalement produits par 11c-méthylation des précurseurs non radioactifs contenant -OH (alcool, phénol et acide carboxylique), -NH (amine et amide) ou -SH (thiol) groupes. En bref, l’isotope est généré dans la cible de gaz d’un cyclotron par l’intermédiaire d’une réaction nucléaire de 14N(p,) 11C sous forme chimique de [11C]CO2. Ce dernier est ensuite converti en [11C]liodide méthyle ([11C]CH3I) via soit la chimie humide (réduction à [11C]CH3OH avec LiAlH4 suivie d’étanchéité avec HI)1 ou sec chimie (réduction catalytique à [11C]CH4 suivie d’une iodure radicale avec moléculaire I2)2. [11C] CH3Je peux ensuite être converti en 11Triflate C-méthyle plus réactif ([11C]CH3OTf) en le passant sur une colonne de triflateargentée 3. La méthylation 11C est ensuite effectuée soit en bouillonnant le gaz radioactif dans une solution de précurseur non radioactif dans le solvant organique ou par l’intermédiaire de la plus élégante captive solvant “boucle” méthode4,5. Le 11C-tracer est ensuite purifié au moyen de HPLC, reformulé dans un solvant biocompatible, et passé par un filtre stérile avant d’être administré à des sujets humains. Toutes ces manipulations doivent être rapides et fiables compte tenu de la courte demi-vie du carbone-11. Cependant, l’utilisation d’un système HPLC augmente considérablement les pertes de traceur et de temps de production, nécessite souvent l’utilisation de solvants toxiques, complique l’automatisation et conduit parfois à des synthèses défaillantes. De plus, le nettoyage requis des réacteurs et de la colonne HPLC prolonge les délais entre les synthèses des lots de traceurs subséquents et augmente l’exposition du personnel aux radiations.

La radiochimie du fluor-18 (t1/2 – 109,7 min), l’autre isotope DE TEP largement utilisé, a été récemment avancée par le développement de kits à cassette s’il y a des outils qui évitent la nécessité d’une purification du HPLC. En utilisant des cartouches d’extraction en phase solide (SPE), ces kits entièrement jetables permettent la production de routine fiable de 18F-tracers, y compris [18F]FDG, [18F]FMISO, [18F]FMC et d’autres, avec une synthèse plus courte , une participation réduite du personnel et un minimum d’entretien de l’équipement. L’une des raisons pour lesquelles le carbone-11 demeure un isotope moins populaire dans l’imagerie TEP est l’absence de trousses similaires pour la production de routine de 11Traceurs C. Leur développement améliorerait considérablement la fiabilité synthétique, augmenterait les rendements radiochimiques et simplifierait l’automatisation et l’entretien préventif des modules de production.

Les kits de production actuellement disponibles tirent parti des cartouches SPE peu coûteuses et jetables au lieu des colonnes HPLC pour séparer le radiotraceur des isotopes radioactifs non réagis, des précurseurs et d’autres sous-produits radioactifs et non radioactifs. Idéalement, la réaction d’étiquetage radio se produit également sur la même cartouche ; par exemple, la [18F]fluoromethylation du diméthylaminoethanol avec gazeux [18F]CH2BrF dans la production du traceur de PET d’imagerie de cancer de la prostate [18F]fluoromethylcholine se produit sur une cartouche de résine de cation-échange 6. Bien que des procédures similaires pour la radioétiquetage de plusieurs 11Traceurs C sur cartouches aient été signalées7,8 et sont devenues particulièrement puissantes pour la radiosynthèse de [11C]choline9 et [11C]methionine10, ces exemples restent limités aux traceurs de PET oncologiques où la séparation du précurseur n’est souvent pas nécessaire. Nous avons récemment signalé le développement de «[11C]kits» pour la production de [11C]CH3I11 et 11C-méthylation ultérieures, ainsi que la synthèse solide soutenue par phase12 dans nos efforts pour simplifier la production de routine de 11Traceurs C. Ici, nous souhaitons démontrer nos progrès à l’aide de l’exemple de la radiosynthèse soutenue par phase solide de [11C]PiB, un radiotracer pour l’imagerie A qui a révolutionné le domaine de l’imagerie de la maladie d’Alzheimer (MA) lors de son développement en 2003 ( Figure 1) 13,14. Dans cette méthode, volatile [11C]CH3OTf (bp 100 oC) est passé au-dessus du précurseur 6-OH-BTA-0 déposé sur la résine d’une cartouche jetable. Pet traceur [11C]PiB est alors séparé du précurseur et des impuretés radioactives par l’élution de la cartouche avec de l’éthanol aqueuse biocompatible. De plus, nous avons automatisé cette méthode de radiosynthèse[11C]PiB à l’aide d’un module de synthèse radiochimique télécommandé et de trousses de cassettes jetables. Plus précisément, nous avons mis en œuvre cette radiosynthèse sur un module de radiochimie de 20 soupapes, équipé d’une seringue (distributeur) qui s’adapte à la seringue en plastique jetable standard de 20 ml, contrôleur de flux de gaz, pompe à vide et jauge. En raison de la simplicité de cette méthode, nous sommes confiants qu’elle peut être modifiée à la plupart des synthétiseurs automatisés disponibles dans le commerce, soit à base de cassettes ou ceux équipés de vannes fixes. Cette technique solide soutenue par phase facilite la production[11C]PiB conforme aux réglementations de bonnes pratiques de fabrication (GMP) et améliore la fiabilité de synthèse. La technique décrite ici réduit également la quantité de précurseur nécessaire à la radiosynthèse, n’utilise que des solvants biocompatibles « verts » et diminue le temps entre les lots de production consécutifs.

Protocol

1. Préparation des tampons et des eluents Dissoudre 2,72 g de trihydrate d’acétate de sodium dans 100 ml d’eau pour préparer une solution d’acétate de sodium de 0,2 M (solution A). Dissoudre 11,4 ml d’acide acétique glaciaire dans 1 L d’eau pour préparer une solution d’acide acétique de 0,2 M (solution B). Combinez 50 ml de solution A avec 450 ml de solution B pour préparer le tampon d’acétate au pH 3,7 (tampon 1) selon le centre de référence tampon15. Vér…

Representative Results

Pour résumer une radiosynthèse typique de [11C]PiB, gazeux [11C]CH3OTf est d’abord passé par une cartouche tC18 préchargée avec une solution de précurseur (Figure 1). La séparation du mélange de réaction est alors réalisée par l’élution successive avec des solutions d’éthanol aqueuse comme suit. Tout d’abord, 12,5% EtOH élude la majorité des non-réagis [11C]CH3OTf et 6-OH-BTA-0, puis 15% E…

Discussion

Malgré l’émergence récente et l’approbation par la FDA de plusieurs 18traceurs PET étiquetés F, tels que le florbetapir, le florbetaben et le flûtin, [11C]PiB demeure un traceur de référence pour l’imagerie amyloïde en raison de l’utilisation rapide du cerveau et de la faible reliure. Actuellement, ce traceur est synthétisé soit par la chimie humide16 ou en utilisant une approche “boucle sèche”4,17</sup…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Cette étude a été financée en partie par une subvention de 18-05 de la Société Alzheimer du Canada (pour A. K.) et de la Fondation Cerveau Canada avec l’appui de Santé Canada. Les auteurs aimeraient remercier la Faculté de médecine de l’Université McGill, l’Institut neurologique de Montréal et le Centre d’imagerie cérébrale McConnell pour leur appui à ce travail. Nous remercions également Mme Monica Lacatus-Samoila pour son aide dans les procédures de contrôle de la qualité et les Drs Jean-Paul Soucy et Gassan Massarweh pour l’accès aux radio-isotopes et à l’installation de radiochimie.

Materials

6-OH-BTA-0 ABX advanced biochemical compounds 5101 Non-radioactive precursor of [11C]PiB
6-OH-BTA-1 ABX advanced biochemical compounds 5140 Non-radioactive standard of [11C]PiB
Agilent 1200 HPLC system Agilent Agilent 1200 Analytical HPLC system
Ethanol absolute Commercial alcohols 432526
Hamilton syringe (luer-tip, 250 µL) Hamilton HAM80701
MZ Analytical PerfectSil 120 MZ-Analysentechik GmbH MZ1440-100040 Analytical HPLC column
Perkin Elmer Clarus 480 GC system Perkin Elmer Clarus 480 Gas chromotograph
polycarbonate manifold Scintomics ACC-101 Synthesis manifold
Restek MTX-Wax column (30 m, 0.53 mm) Restek 70625-273 Analytical GC column
Scintomics GRP module Scintomics Scintomics GRP Automated synthesis unit
Sep-Pak tC18 Plus Waters WAT020515 Solid phase extraction cartridge
solvent-resistant manifold Scintomics ACC-201 Synthesis manifold
Spinal needle BD 405181
Sterile extension line B. Braun 8255059
Sterile filter Millipore SLLG013SL
Sterile vial (20mL) Huayi SVV-20A
Sterile water Baxter JF7623
Synthra MeIplus Research Synthra MeIplus Research [11C]CH3I/[11C]CH3OTf module
Syringe (10 mL) BD 309604
Syringe (1mL) BD 309659
Syringe (20 mL) B. Braun 4617207V Dispenser syringe
Vent filter Millipore TEFG02525

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Singleton, T. A., Boudjemeline, M., Hopewell, R., Jolly, D., Bdair, H., Kostikov, A. Solid Phase 11C-Methylation, Purification and Formulation for the Production of PET Tracers. J. Vis. Exp. (152), e60237, doi:10.3791/60237 (2019).

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