Summary

使用IBA1和TMEM119进行小鼠脑微胶质密度、形态学和周围骨髓细胞渗透分析的免疫荧光染色

Published: October 27, 2019
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Summary

该协议描述了IBA1和TMEM119免疫荧光结化的分步工作流程,除了分析微胶质密度、分布和形态,以及小鼠脑组织中外周髓细胞渗透。

Abstract

这是一种用于微胶质和渗透小鼠脑组织巨噬细胞的双重可视化的协议。TMEM119(选择性地标记微胶质),当与IBA1(提供其形态的异常可视化)相结合时,可以调查密度、分布和形态的变化。量化这些参数对于深入了解微胶体(大脑的常驻巨噬细胞)所扮演的角色非常重要。在正常生理条件下,微胶质定期以马赛克状模式分布,并呈现具有模压过程的小索马。然而,作为对环境因素(即创伤、感染、疾病或伤害)的反应,微胶质密度、分布和形态会以各种方式改变,具体取决于侮辱。此外,所述双染色方法允许根据其IBA1的表达,在不与TMEM119共定位的情况下,对大脑中渗透巨噬细胞进行可视化。因此,这种方法允许区分微胶质和渗透巨噬细胞,这是提供功能见解,使他们在健康和疾病的不同背景下对大脑平衡的独特参与。该协议集成了神经免疫学中与选择性标记物鉴定相关的最新发现。它还作为一个有用的工具,为有经验的神经免疫学家和研究人员寻求将神经免疫学纳入项目。

Introduction

无论是急性还是慢性,神经炎症都受到微胶质(大脑常住巨噬细胞)的严重影响。通过免疫染色可视化微胶质对于使用光显微镜(一种高度可访问的技术)研究神经炎症有价值。在静时条件下,微胶质通常以非重叠的马赛克状模式分布。他们表现出小索马,延长冲撞过程1,有时相互接触2。在正常生理条件下,微胶质电肿过程动态地测量脑气囊瘤,与神经元、其他胶质细胞和血管相互作用3。Microglia 配备了一个受体库,允许他们执行免疫学任务,并应对大脑环境的变化、细胞死亡或组织损伤。此外,它们还发挥关键的生理功能,特别是在突触形成、维持和消除4、5。

在用于研究微胶质的现有标记中,离子钙结合适配器分子1(IBA1)是使用最广泛的指标之一。IBA1是一种钙结合蛋白,提供微胶质形态的卓越可视化,包括精细的远端过程,电子显微镜6证实了这一点。该工具在描述微胶质转化(以前称为”活化”)方面起到了重要作用,在动物疾病模型7、8、9中。在神经炎症的存在,微胶质反应包括:微胶质症,定义为细胞密度增加,分布变化,有时导致聚类,细胞体扩大,以及增厚和缩短与更多ameboid形状相关的过程10,11,12,13。

免疫染色受针对特定标记物的抗体的可用性的限制。重要的是,IBA1是由微胶质表达的,但也由渗入大脑14的外围巨噬细胞表达。虽然观察脑内的IBA1阳性细胞已成为这一研究领域微胶质的标志,但周围巨噬细胞渗透在各种条件下被报道,甚至在健康大脑中略有渗透。 1718.因此,单单使用IBA1并不能选择性地可视化微胶质。此外,巨噬细胞在渗入大脑后,采用居民微胶质的分子和形态特征,从而阻碍分化。这是一个挑战,当调查微胶质和渗透巨噬细胞的功能。

虽然微胶质和周围巨噬细胞有不同的起源(例如,从胚胎蛋黄囊和骨髓,分别20,21),有越来越多的发现表明,两个细胞群发挥不同的角色在大脑19。因此,使用无侵入性操作(即骨髓嵌合体或寄生虫)来区分这两个种群的方法至关重要,这些方法可以调节它们的密度、分布、形态和功能。TMEM119已成为一个微胶质特异性标记跨越健康和疾病条件22。当与IBA1结合使用时,该标记对于区分这些细胞与渗透巨噬细胞(TMEM119阴性和IBA1阳性)非常有用。虽然它是发育调节,TMEM119早在产后第3天(P3)和6(P6),稳步增加,直到达到P10和P1422之间的成人水平。IBA1最早表示在胚胎日10.5 (E10.5)23。因此,拟议的双标签方案有助于研究这两个种群的产后生活。

该协议提供了一个分步免疫染色程序,允许在微胶质和周围巨噬细胞之间进行区分。并解释了如何对微胶质密度、分布和形态进行定量分析,以及对周围巨噬菌体渗透的分析。虽然微胶质和周围巨噬细胞的调查本身是有用的,但该协议进一步允许神经炎门厅的本地化;因此,它还作为一个平台,利用补充(然而,更耗费时间和资源)技术,确定要调查的特定区域。

Protocol

所有实验程序均符合机构动物伦理委员会的指导方针,符合加拿大动物护理理事会和拉瓦尔大学动物护理委员会。 1. 免疫染色 在大脑地图集的帮助下,选择三个包含感兴趣区域(ROI)(即海马)的小鼠大脑部分。将各部分放入塑料多孔板中,用 350 μL 的磷酸盐缓冲盐 (PBS) 覆盖它们(表 1)。注:为了获得最佳效果,大脑应注入4%的甲醛,并使用振动…

Representative Results

图1显示了使用IBA1和TMEM119在背海马的日冕部分使用的微胶合体共标记,通过荧光显微镜以20倍成像。成功的染色揭示了微胶质细胞体及其精细过程(图1A+C)。这种染色允许确定微胶质密度和分布,并识别微胶质簇(图1I)和渗透巨噬细胞(图1F)。</stro…

Discussion

该协议可以分为两个关键部分:染色和分析的质量。如果染色不是最佳的,它将无法充分表示微胶质细胞,从而影响密度、分布和形态测量。此外,渗透周围骨髓细胞的比例可能被低估。这是染色协议的优化版本,但有几个因素可能会导致图像不理想。即使动物的灌注不包括在本协议中,但如果大脑固定没有很好地执行,染色的质量将受到损害。此外,需要足够的灌注,以确保血管内没有可能干?…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

我们感谢娜塔莉·韦尔努对实验的指导和协助。我们还要感谢伊曼纽尔·普朗内尔博士和谢尔盖·里夫斯特博士分别使用荧光显微镜和共聚焦显微镜。这项工作的部分经费来自墨西哥科学技术委员会(CONACYT;F.G.I)、法米尔-乔奎特基金会和神经科学研究中心(CTRN;K.P.)、魁北克基金会-圣地基金会(至医学硕士)的奖学金。Shastri Indo-Canada 研究所(至 K.B.),以及加拿大自然科学和工程研究委员会(NSERC)向 M.E.T.M.E.T.提供的发现补助金,担任加拿大健康与治疗神经免疫可塑性研究主席(第二级)。

Materials

Alexa Fluor 488 donkey anti-mouse Invitrogen/Thermofisher A21202
Alexa Fluor 568 goat anti-rabbit Invitrogen/Thermofisher A11011
Biolite 24 Well multidish Thermo Fisher 930186
Bovine serum albumin EMD Millipore Corporation 2930
Citric acid Sigma-Aldrich C0759-500G
DAPI Nuceleic acid stain Invitrogen/Thermofisher MP 01306
Fine Brush Art store
Fluoromount-G Southern Biotech 0100-01
Gelatin from coldwater fish skin Sigma-Aldrich G7765
Microscope coverglass Fisher Scientific 1254418
Microslides positively charged VWR 48311-703
Monoclonal mouse Anti-IBA1 Millipore MABN92
Na2H2PO4·H2O BioShop Canada Inc. SPM306, SPM400
Na2HPO4 BioShop Canada Inc. SPD307, SPD600
NaBH4 Sigma-Aldrich 480886
NaCl Fisher Scientific S642500
Normal donkey serum (NDS) Jackson ImmunoResearch laboratories Inc. 017-000-121
Normal goat serum (NGS) Jackson ImmunoResearch laboratories Inc. 005-000-121
Parafilm-M Parafilm PM-999
Rabbit monoclonal Anti-TMEM119 Abcam ab209064
Reciprocal Shaking bath model 25 Precision Scientific
Transfer pipette
Tris buffer hydrochloride BioShop Canada Inc. TRS002/TRS004
Triton-X-100 Sigma-Aldrich T8787
Tween 20 Sigma-Aldrich P7949-100ML

References

  1. Lawson, L. J., Perry, V. H., Dri, P., Gordon, S. Heterogeneity in the distribution and morphology of microglia in the normal adult mouse brain. 신경과학. 39 (1), 151-170 (1990).
  2. Milior, G., et al. Fractalkine receptor deficiency impairs microglial and neuronal responsiveness to chronic stress. Brain, Behavior, and Immunity. 55, 114-125 (2016).
  3. Nimmerjahn, A., Kirchhoff, F., Helmchen, F. Resting Microglial Cells Are Highly Dynamic Surveillants of Brain Parenchyma in Vivo. Science. 308 (5726), 1314-1318 (2005).
  4. Hickman, S., Izzy, S., Sen, P., Morsett, L., Khoury, J. E. Microglia in neurodegeneration. Nature Neuroscience. 21 (10), 1359 (2018).
  5. Tay, T. L., Savage, J. C., Hui, C. W., Bisht, K., Tremblay, M. &. #. 2. 0. 0. ;. Microglia across the lifespan: from origin to function in brain development, plasticity and cognition. The Journal of Physiology. 595 (6), 1929-1945 (2017).
  6. Tremblay, M. &. #. 2. 0. 0. ;., Lowery, R. L., Majewska, A. K. Microglial Interactions with Synapses Are Modulated by Visual Experience. PLoS Biology. 8 (11), (2010).
  7. Jakovljevic, M., et al. Induction of NTPDase1/CD39 by Reactive Microglia and Macrophages Is Associated With the Functional State During EAE. Frontiers in Neuroscience. 13, (2019).
  8. Taylor, A. M. W., et al. Microglia Disrupt Mesolimbic Reward Circuitry in Chronic Pain. The Journal of Neuroscience. 35 (22), 8442-8450 (2015).
  9. Poliani, P. L., et al. TREM2 sustains microglial expansion during aging and response to demyelination. The Journal of Clinical Investigation. 125 (5), 2161-2170 (2015).
  10. Lu, S. M., et al. HIV-1 Tat-Induced Microgliosis and Synaptic Damage via Interactions between Peripheral and Central Myeloid Cells. PLoS ONE. 6 (9), e23915 (2011).
  11. Rodríguez, J. J., et al. Increased densities of resting and activated microglia in the dentate gyrus follow senile plaque formation in the CA1 subfield of the hippocampus in the triple transgenic model of Alzheimer’s disease. Neuroscience Letters. 552, 129-134 (2013).
  12. Rasmussen, S., et al. Persistent activation of microglia is associated with neuronal dysfunction of callosal projecting pathways and multiple sclerosis-like lesions in relapsing-remitting experimental autoimmune encephalomyelitis. Brain. 130 (11), 2816-2829 (2007).
  13. Walker, F. R., et al. Dynamic structural remodelling of microglia in health and disease: a review of the models, the signals and the mechanisms. Brain, Behavior, and Immunity. 37, 1-14 (2014).
  14. Ohsawa, K., Imai, Y., Kanazawa, H., Sasaki, Y., Kohsaka, S. Involvement of Iba1 in membrane ruffling and phagocytosis of macrophages/microglia. Journal of Cell Science. 113 (17), 3073-3084 (2000).
  15. Yamasaki, R., et al. Differential roles of microglia and monocytes in the inflamed central nervous system. Journal of Experimental Medicine. 211 (8), 1533-1549 (2014).
  16. Wohleb, E. S., et al. Peripheral innate immune challenge exaggerated microglia activation, increased the number of inflammatory CNS macrophages, and prolonged social withdrawal in socially defeated mice. Psychoneuroendocrinology. 37 (9), 1491-1505 (2012).
  17. Shemer, A., et al. Engrafted parenchymal brain macrophages differ from microglia in transcriptome, chromatin landscape and response to challenge. Nature Communications. 9, (2018).
  18. Geissmann, F., et al. Development of monocytes, macrophages and dendritic cells. Science (New York, N.Y). 327 (5966), 656-661 (2010).
  19. Minogue, A. M. Role of infiltrating monocytes/macrophages in acute and chronic neuroinflammation: Effects on cognition, learning and affective behaviour. Progress in Neuro-Psychopharmacology and Biological Psychiatry. 79, 15-18 (2017).
  20. Ginhoux, F., et al. Fate Mapping Analysis Reveals That Adult Microglia Derive from Primitive Macrophages. Science (New York, N.Y). 330 (6005), 841-845 (2010).
  21. Kierdorf, K., et al. Microglia emerge from erythromyeloid precursors via Pu.1- and Irf8-dependent pathways. Nature Neuroscience. 16 (3), 273-280 (2013).
  22. Bennett, M. L., et al. New tools for studying microglia in the mouse and human CNS. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 113 (12), E1738-E1746 (2016).
  23. Mizutani, M., et al. The fractalkine receptor but not CCR2 is present on microglia from embryonic development throughout adulthood. Journal of Immunology. 188 (1), 29-36 (2012).

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González Ibanez, F., Picard, K., Bordeleau, M., Sharma, K., Bisht, K., Tremblay, M. Immunofluorescence Staining Using IBA1 and TMEM119 for Microglial Density, Morphology and Peripheral Myeloid Cell Infiltration Analysis in Mouse Brain. J. Vis. Exp. (152), e60510, doi:10.3791/60510 (2019).

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