Summary

Nucleofección y Propagación In Vivo de Parásitos de La Eimeria de Pollo

Published: February 14, 2020
doi:

Summary

Aquí, proporcionamos un método para lograr la transfección estable de parásitos de pollo Eimeria mediante la nucleofectación de esporozoitos o merozoites de segunda generación. Los parásitos eimerianos modificados genéticamente que expresen genes antigénicos hetrólogos podrían utilizarse como vehículos de administración de vacunas.

Abstract

La transfección es un proceso técnico a través del cual el material genético, como el ADN y el ARN de doble cadena, se entregan en las células para modificar el gen de interés. Actualmente, la tecnología transgénica se está convirtiendo en una herramienta indispensable para el estudio de Eimeria,los agentes causales de la coccidiosis en aves de corral y ganado. Este protocolo proporciona una descripción detallada de la transfección estable en parásitos eimerianos: purificación y nucleofección de esporozoítos o merozoitos de segunda generación, y propagación in vivo de parásitos transinfectados. Utilizando este protocolo, logramos la transfección en varias especies de Eimeria. En conjunto, la nucleofección es una herramienta útil para facilitar la manipulación genética en parásitos eimerianos.

Introduction

Eimeria spp. causa coccidiosis, lo que conduce a pérdidas económicas sustanciales en la industria ganadera y avícola. Aunque los medicamentos anticoccidiales, y en cierta medida, las vacunas anticoccidiales atenuadas, se han utilizado ampliamente para el control de la coccidiosis, todavía existen deficiencias con respecto a su resistencia a los medicamentos, residuos de drogas y la posible difusión de cepas vacunales que recuperan la virulencia1. Con el desarrollo de la biología molecular, la transfección se ha convertido en una herramienta vital para estudiar las funciones genéticas, desarrollar nuevas vacunas y detectar nuevas dianas farmacológicas para Eimeria.

En las últimas décadas, la transfección se ha aplicado con éxito para parásitos apicomplexianos como Plasmodium y Toxoplasma gondii2,3,4,5,6. Un estudio con la galone como reportero para la transfección en E. tenella pilotó tal trabajo en Eimeria7. La transfección de E. tenella8,9, E. mitis10,y E. acervulina (Zhang et al., datos inéditos) tuvo éxito en pollos. Recientemente, logramos la transfección utilizando merozoitas de E. necatrix a través de la nucleofección11.

Los estudios mostraron que Eimeria que expresa un antígeno hetrólogo tiene el potencial de desarrollarse como una vacuna recombinante, como las que expresan el antígeno A de Campylobacter jejuni (CjaA) o la interleucina de pollo 2 (chIL-2)12,13. Por lo tanto, este protocolo describe un estudio de nucleofección de Eimeria spp. en pollos. El procedimiento describe la purificación de esporozoítos o merozoitos, nucleofección con plasma, inoculación cloacal/inyección intravenosa y propagación in vivo para ayudar a los investigadores a iniciar estudios sobre parásitos transgénicos de Eimeria.

Protocol

Los pollos para todos los experimentos con animales fueron alojados y mantenidos de acuerdo con las directrices del Comité Institucional de Cuidado y Uso de Animales de la Universidad Agrícola de China y siguieron los Principios Rectores Internacionales para la Investigación Biomédica que involucran a los animales. Los experimentos fueron aprobados por el Comité de Animales de Laboratorio de la Administración de Beijing. 1. Extracción y purificación de esporozoítos de Eimeria s…

Representative Results

Este protocolo se ha utilizado para transfectar parásitos eimeicos. En este estudio, los merontes y merozoites de2a generación de E. necatrix se mostraron en la Figura 2A y la Figura 2B,mientras que la Figura 2C y la Figura 2D mostraron los esporoquistes y esporozoitos de E. ten…

Discussion

En la década de 1990, se desarrolló un sistema de transfección para parásitos apicomplexanos, y se utilizó para estudios sobre parásitos eimerianos. Recientemente, se llevó a cabo un transfectado estable en E. tenella8,9 y E. nieschulzi15. Logramos la transfección estable de E. necatrix transfectando merozoites de segunda generación11. La inoculación de esporozoitas transtrofadas…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Este trabajo fue apoyado por el Programa Nacional De Investigación y Desarrollo Clave de China (2017YFD0501200) y la Fundación Nacional de Ciencias Naturales de China (31572507, 31772728 y 31873007).

Materials

ATP-disodium Sigma A26209
Cellulose DE-52 Solarbio C8350
Constant Flow Pump SHANGHAI JINGKE INDUSTRIAL CO., LTD. HL-2B
DMEM MACGENE CM15019
Glass beads Sigma Z250473-1PAK
Glucose Sigma No. V900116
Glycine Biotopped G6200
HBSS MACGENE CC016
KH2PO4 Sigma No. V900041
Low Speed Centrifuge BEIJING ERA BEILI CENTRIFUGE CO., LTD. DT5-2
Magnetic Mixer SCILOGEX MS-H280-Pro
MgCl2 Sigma 449164
MoFlo cell sorter BeckMan Coulter, US 201309995
NaHCO3 Sigma 144-55-8
Nucleofection device LONZA/amaxa 90900012 (Nucleofector II)
PBS Solarbio P1010
Percoll (DG gradient stock solution) GE Healthcare 17-0891-09
Sodium taurodeoxycholate hydrate Sigma T0875
Sorvall Legend Micro 17 Microcentrifuge ThermoFisher Scientific 75002430
The composition of DMEM: 4.5 g/L glucose with sodium pyruvate, L-glutamine, and 25 mM HEPES.
Trypsin Solarbio T8150
Vortex Mixer Beijing North TZ-Biotech Develop.co. HQ-60-II
Water Bath Thermostat Grant Instruments (Cambridge), Ltd. GD120,GM0815010

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Duan, C., Tang, X., Hu, D., Zhang, S., Liu, J., Bi, F., Hao, Z., Suo, J., Yu, Y., Wang, M., Sun, P., Du, L., Suo, X., Liu, X. Nucleofection and In Vivo Propagation of Chicken Eimeria Parasites. J. Vis. Exp. (156), e60552, doi:10.3791/60552 (2020).

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