Summary

تحريض الموت الدماغي في الفئران باستخدام مراقبة ضغط الدم داخل الشرايين والتهوية عبر القصبة الهوائية

Published: April 17, 2020
doi:

Summary

نحن نقدم نموذج مورين من التعريفي الموت الدماغي من أجل تقييم تأثير آثاره المرضية الفسيولوجية على الأعضاء وكذلك على الطعوم المتتالية في سياق زرع الأعضاء الصلبة.

Abstract

في حين أن كل من التبرع الحي والتبرع بعد موت الدورة الدموية يوفران فرصًا بديلة لزرع الأعضاء ، فإن التبرع بعد موت الدماغ المتبرع (BD) لا يزال يمثل المصدر الرئيسي لعمليات زرع الأعضاء الصلبة. لسوء الحظ ، من المعروف أن فقدان وظيفة الدماغ الذي لا رجعة فيه يسبب تغييرات فيالفيزيولوجية متعددة ، بما في ذلك التغيرات الهيموديناميكية وكذلك التعديلات الهرمونية ، مما يؤدي في النهاية إلى استجابة التهابية الجهازية. النماذج التي تسمح بإجراء تحقيق منهجي لهذه الآثار في الجسم الحي نادرة. نحن نقدم نموذج مورين من التعريفي دينار بحريني، والتي يمكن أن تساعد التحقيقات في الآثار المدمرة للدينار بحريني على جودة allograft. بعد تنفيذ قياس ضغط الدم داخل الشرايين عبر الشريان السباتي المشترك والتهوية الموثوقة عن طريق القصبة الهوائية ، يتم حث BD عن طريق الضغط الداخلي المتزايد باطراد باستخدام قسطرة البالون. بعد أربع ساعات من تحريض دينار بحريني، يمكن حصاد الأعضاء للتحليل أو لمزيد من إجراءات زرع الأعضاء. تمكن استراتيجيتنا من التحليل الشامل للمتبرع دينار بحريني في نموذج مورين ، مما يسمح بفهم متعمق للآثار المتعلقة بدينار بحريني في زرع الأعضاء الصلبة وربما يمهد الطريق إلى الشروط المسبقة المثلى للأعضاء.

Introduction

زرع هو حاليا العلاج العلاجي الوحيد لفشل الجهاز في المرحلة النهائية. حتى الآن، كان مرضى الموت الدماغي (BD) المصدر الرئيسي للتبرع بالأعضاء، على الرغم من أن التبرع الحي والتبرع بعد موت الدورة الدموية هما بديلان قيمان1. يتم تعريف دينار بحريني من قبل غيبوبة لا رجعة فيها (مع سبب معروف), عدم وجود ردود الفعل الجذعية في الدماغ وانقطاع النفس2. لسوء الحظ، تظهر أجهزة BD نتائج أقل شأنافيا في البقاء على قيد الحياة الكسب غير المشروع على المدى الطويل مستقلة عن مستضد الكريات البيض البشرية (HLA) – عدم التطابق والوقت نقص التروية الباردة3. وفي الوقت نفسه، تم إجراء بحوث مكثفة على هذا العامل خطر المستضد مستقلة مما أدى إلى ثلاثة جوانب رئيسية من التغيرات الفسيولوجية المرضية بوساطة نتيجة لBD: الهيموديناميكي، الهرمونية، والتهابات4.

حتى الآن، تم تنفيذ نماذج BD التجريبية في القوارض في الغالب باستخدام الفئران. من أجل الحصول على مزيد من البصيرة في العواقب المناعية على الأعضاء الصلبة بعد دينار بحريني، ونحن تهدف إلى إنشاء نموذج المورين من دينار بحريني، كما حاليا نماذج الماوس فقط تسمح لإجراء تحقيقات شاملة في العوامل الوراثية أو المناعية. في هذا السياق، يوفر نظام الماوس مجموعة أكبر من الأدوات التحليلية.

ويستند مبدأ التعريفي دينار بحريني كما هو موضح هنا على زيادة في الضغط داخل الجمجمة الناجمة عن تضخم قسطرة بالون إدراجها تحت الجمجمة. زيادة الضغط داخل الجمجمة يحاكي الآلية الفسيولوجية للدينار بحريني عن طريق منع تقرحات المخيخ، المخيخ، وجذع الدماغ5،6. لضمان ما يكفي من التروية في الأعضاء الطرفية ، يكون قياس ضغط الدم إلزاميًا أثناء الإجراء. القسطرة المستخدمة لهذا الغرض في نفس الوقت يخدم لإدارة المالحة من أجل تثبيت ضغط الدم عن طريق استبدال السوائل. بما أن دينار بحريني مصحوب بتوقف التنفس التلقائي ، يجب ضمان التهوية الكافية. بطانية كهربائية تحافظ على درجة حرارة الجسم الأساسية الفسيولوجية.

وباختصار، فإن هذا النموذج تمكين دراسات متعمقة في تأثير الإصابة الناجمة عن دينار بحريني، على هجرة الكريات البيضالتنشيط مجاملةإصابة إعادة الترويةوغيرها من العوامل.

Protocol

وأجريت التجارب على الحيوانات وفقا لمبادئ رعاية الحيوانات المختبرية التي صاغتها الجمعية الوطنية للبحوث الطبية ودليل رعاية واستخدام الحيوانات المختبرية الذي أعدته الأكاديمية الوطنية للعلوم ونشرته المعاهد الوطنية للصحة (المنشور رقم 86-23 الصادر عن المعاهد الوطنية للصحة، المنقح في عام 1985). ?…

Representative Results

تم تنفيذ نموذج المورين BD بنجاح أكثر من 100 مرة مع معدل نجاح أكثر من 90٪. بالإضافة إلى ذلك، تم إجراء زرع الأعضاء التدخلية بعد القلب والكلى بأمان7. BD يحفز مجموعة متنوعة من التغيرات المرضية التي يمكن مزيد من التحقيق باستخدام هذا الن…

Discussion

BD، عامل خطر لجودة allograft في المتبرعين متعددي الأعضاء، ينطوي على عدد كبير من التغيرات الفيزيولوجية المرضية، والتي لا يمكن تقييمها إلا بما فيه الكفاية باستخدام نماذج الحي. لا يمكن تحليل التغيرات الهيموديناميكية ، عاصفة السيتوكين ، والتغيرات الهرمونية وتأثيرها النهائي على جودة الكسب غير ال?…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

(ن. أ)

Materials

Arterial catheter (BD Neoflon 26G) BD 391349
Blood Pressure Transducers (APT300) Harvard Apparatus Inc. 73-3862
Fogarty Arterial Embolectomy Catheter N° 3 Edwards Lifesciences Corporation 120403F
Forceps FST 11271-30
Homeothermic Blanket Systems with Flexible Probe Harvard Apparatus Inc. 55-7020
Ketansol Graeub 6680110
Micro scissor FST 15018-10
Needle holder FST 12060-02
Prolene 5-0 Ethicon 8698H
Pump 11 Elite Infusion Only Single Harvard Apparatus Inc. 70-4500
Scissor FST 14075-11
Stereotactic microscope Olympus SZX7
Transpore Tape 3M 1527-1
Underpads Molinea.A 274301
Ventilator for mice (MiniVent Model 845) Harvard Apparatus Inc. 73-0043
Xylasol Graeub 7630109

References

  1. Hart, A., et al. OPTN/SRTR 2017 Annual Data Report: Kidney. American Journal of Transplantation. 19 (Suppl 2), 19 (2019).
  2. The Quality Standards Subcommittee of the American Academy of Neurology. Practice parameters for determining brain death in adults (summary statement). Neurology. 45 (5), 1012-1014 (1995).
  3. Terasaki, P. I., Cecka, J. M., Gjertson, D. W., Takemoto, S. High survival rates of kidney transplants from spousal and living unrelated donors. New England Journal Medicine. 333 (6), 333-336 (1995).
  4. Pratschke, J., Neuhaus, P., Tullius, S. G. What can be learned from brain-death models?. Transplant International. 18 (1), 15-21 (2005).
  5. Wilhelm, M. J., et al. Activation of the heart by donor brain death accelerates acute rejection after transplantation. Circulation. 102 (19), 2426-2433 (2000).
  6. Pomper, G., et al. Introducing a mouse model of brain death. Journal of Neuroscience Methods. 192 (1), 70-74 (2010).
  7. Ritschl, P. V., et al. Donor brain death leads to differential immune activation in solid organs but does not accelerate ischaemia-reperfusion injury. Journal of Pathology. 239 (1), 84-96 (2016).
  8. Atkinson, C., et al. Donor brain death exacerbates complement-dependent ischemia/reperfusion injury in transplanted hearts. Circulation. 127 (12), 1290-1299 (2013).
  9. Oberhuber, R., et al. Treatment with tetrahydrobiopterin overcomes brain death-associated injury in a murine model of pancreas transplantation. American Journal of Transplantation. 15 (11), 2865-2876 (2015).
  10. Floerchinger, B., et al. Inflammatory immune responses in a reproducible mouse brain death model. Transplant Immunology. 27 (1), 25-29 (2012).
  11. Steen, P. A., Milde, J. H., Michenfelder, J. D. No barbiturate protection in a dog model of complete cerebral ischemia. Annals of Neurology. 5 (4), 343-349 (1979).
  12. Cooper, D. K., Novitzky, D., Wicomb, W. N. The pathophysiological effects of brain death on potential donor organs, with particular reference to the heart. Annals of the Royal College of Surgeons of England. 71 (4), 261-266 (1989).
  13. Herijgers, P., Leunens, V., Tjandra-Maga, T. B., Mubagwa, K., Flameng, W. Changes in organ perfusion after brain death in the rat and its relation to circulating catecholamines. Transplantation. 62 (3), 330-335 (1996).
check_url/kr/60831?article_type=t

Play Video

Cite This Article
Ritschl, P. V., Hofhansel, L., Flörchinger, B., Oberhuber, R., Öllinger, R., Pratschke, J., Kotsch, K. Brain Death Induction in Mice Using Intra-Arterial Blood Pressure Monitoring and Ventilation via Tracheostomy. J. Vis. Exp. (158), e60831, doi:10.3791/60831 (2020).

View Video