Summary

تفاعل الأوعية الدموية الشبكية كما تم تقييمه من قبل التصوير المقطعي التصويري التصويري التصويري

Published: March 26, 2020
doi:

Summary

تصف هذه المقالة طريقة لقياس تفاعل الأوعية الدموية في الشبكية في الجسم الحي مع الموضوعات البشرية باستخدام تقنية استفزاز التنفس بالغاز لتقديم محفزات نشطة مع الحصول على صور الشبكية.

Abstract

وقد ثبت أن إمدادات الأوعية الدموية إلى شبكية العين تتكيف بشكل حيوي من خلال تضيق الأوعية وتوسع الأوعية لاستيعاب المطالب الأيضية للشبكية. هذه العملية، التي يشار إليها باسم تفاعل الأوعية الدموية الشبكية (RVR)، يتم التوسط عن طريق اقتران الأوعية الدموية العصبية، والتي تضعف في وقت مبكر جدا في أمراض الأوعية الدموية الشبكية مثل اعتلال الشبكية السكري. لذلك ، قد تكون الطريقة الممكنة سريريًا لتقييم وظيفة الأوعية الدموية ذات أهمية كبيرة في كل من البيئات البحثية والسريرية. في الآونة الأخيرة، في تصوير الجسم الحي من الأوعية الدموية الشبكية على مستوى الشعيرات الدموية جعلت ممكنة من قبل موافقة ادارة الاغذية والعقاقير من التصوير المقطعي التصوير المقطعي التماسك البصري (OCTA)، وهو غير الغازية، والحد الأدنى من المخاطر وطريقة تصوير الأوعية بدون صبغمع قرار مستوى الشعيرات الدموية. وفي الوقت نفسه، أظهر العديد من المحققين تغيرات فسيولوجية ومرضية في RVR. تم تصميم الطريقة الموضحة في هذه المخطوطة للتحقيق في RVR باستخدام OCTA دون الحاجة إلى إدخال تعديلات على إجراءات التصوير السريري أو الجهاز. وهو يوضح التصوير في الوقت الحقيقي لشبكية العين والأوعية الدموية الشبكية أثناء التعرض لظروف فرط القدرة أو فرط أكسدة. يتم إجراء الامتحان بسهولة مع اثنين من الموظفين في أقل من 30 دقيقة مع الحد الأدنى من عدم الراحة الموضوع أو خطر. هذه الطريقة قابلة للتكيف مع أجهزة تصوير العيون الأخرى وقد تختلف التطبيقات استنادًا إلى تكوين خليط الغاز وعدد المرضى. قوة هذه الطريقة هي أنه يسمح بإجراء تحقيق في وظيفة الأوعية الدموية الشبكية على المستوى الشعري في البشر في الجسم الحي. القيود المفروضة على هذه الطريقة هي إلى حد كبير تلك التي من OCTA وغيرها من أساليب التصوير الشبكية بما في ذلك القطع الأثرية التصوير والنطاق الديناميكي المقيد. النتائج التي تم الحصول عليها من هذه الطريقة هي صور OCT و OCTA لشبكية العين. هذه الصور قابلة لأي تحليل ممكن على أجهزة OCT أو OCTA المتاحة تجاريًا. الطريقة العامة، ومع ذلك، يمكن تكييفها مع أي شكل من أشكال التصوير في العيون.

Introduction

يعتمد الطلب الأيضي على إمدادات كافية ومستمرة من الأكسجين التي يوفرها نظام منظم جيدًا من الشرايين والشعيرات الدموية والفينولين1. وقد أظهرت العديد من الدراسات أن وظيفة أكبر عيار الأوعية الشبكية البشرية يمكن تقييمها في الجسم الحي مع مختلف الفسيولوجية,,,5 والدوائية,7 محفزات. بالإضافة إلى ذلك ، وظيفة غير طبيعية من هذا الجهاز الوعائي هو شائع في أمراض الأوعية الدموية الشبكية مثل اعتلال الشبكية السكري حيث تفاعل الأوعية الدموية الشبكية (RVR) وقد ثبت أن تكون مخففة حتى في مراحله الأولى8،9 من خلال كل من الغاز استفزاز9 وتجارب الضوء الخفقان5،10،11. كما ارتبطت عوامل خطر الأوعية الدموية الشبكية مثل التدخين بضعف RVR12 وتدفق دم الشبكية13. هذه النتائج مهمة لأن الأعراض السريرية لمرض الأوعية الدموية في الشبكية تحدث في وقت متأخر نسبيا في عملية المرض وعلامات سريرية في وقت مبكر ثبت من المرض تفتقر إلى14. وبالتالي، يمكن أن يوفر تقييم RVR مقاييس مفيدة لسلامة الأوعية الدموية من أجل التقييم المبكر للتشوهات التي يمكن أن تبدأ أو تفاقم أمراض تنكسية الشبكية.

وقد اعتمدت تجارب RVR السابقة عادة على أجهزة مثل مقياس تدفق الدم بالليزر9 أو كاميرات ممولة مجهزة بمرشحات خاصة15 للحصول على صورة الشبكية. ومع ذلك ، يتم تحسين هذه التقنيات للأوعية ذات القطر الأكبر مثل الشرايين16 والأفير15، والتي ليست حيث يحدث الغاز والمغذيات الدقيقة والتبادل الجزيئي. وقد تمكنت دراسة أكثر حداثة لتحديد RVR من الشعيرات الدموية باستخدام التصوير البصريات التكيفية17، ولكن على الرغم من تحسين الاستبانة المكانية ، فإن هذه الصور لها حجم حقل أصغر ولا تمت الموافقة على إدارة الأغذية والعقاقير للاستخدام السريري18.

وقد قدم ظهور مؤخرا من التصوير المقطعي التصوير المقطعي البصري (OCTA) وافقت ادارة الاغذية والعقاقير, طريقة الأوعية غير الغازية والصباغة لتقييم التغيرات مستوى الشعيرات الدموية في المرضى الإنسان والمواضيع في الجسم الحي. يتم قبول الأوكتا على نطاق واسع في الممارسة السريرية كأداة فعالة لتقييم ضعف في التروية الشعرية في أمراض الأوعية الدموية في الشبكية مثل اعتلال الشبكية السكري19، انسداد الشبكية الوريدي20، التهاب الأوعية الدموية21 وغيرها الكثير22. لذلك يوفر OCTA فرصة ممتازة لتقييم التغيرات في مستوى الشعيرات الدموية ، والتي يمكن أن يكون لها تغايرية مكانية وزمنية كبيرة23 بالإضافة إلى التغيرات المرضية ، في بيئة سريرية. أظهرت مجموعتنا مؤخرًا أنه يمكن استخدام الأوكتا لتحديد مدى استجابة أوعية الشبكية في المستوى الشعري2 للتغيرات الفسيولوجية في الأكسجين الملهم ، وهو حافز انقباضي شبكية العين16،24، وثاني أكسيد الكربون ، وهو تحفيز الأوعية الشبكية3،5.

الهدف من هذه المقالة هو وصف بروتوكول من شأنها أن تسمح للقارئ لتقييم تفاعل الأوعية الدموية الشبكية من الشرايين الصغيرة وسرير الشعيرات الدموية باستخدام OCTA. يتم تكييف الأساليب من تلك المعروضة في لو وآخرون25 الذين وصفوا قياس التفاعل الأوعية الدموية الدماغية مع التصوير بالرنين المغناطيسي. على الرغم من أن الطرق الحالية تم تطويرها واستخدامها أثناء تصوير OCTA2، إلا أنها تنطبق على أجهزة تصوير شبكية العين الأخرى مع تعديلات بسيطة وواضحة نسبيًا.

Protocol

تمت الموافقة على هذه الدراسة من قبل مجلس المراجعة المؤسسية في جامعة جنوب كاليفورنيا والتزمت بمبادئ إعلان هلسنكي. 1. إعداد الغاز جهاز عدم التنفس الشكل 1: رسم بياني لجهاز عدم التنفس. وقد تم…

Representative Results

يتكون الناتج من هذه التجربة من القراءات اليدوية المأخوذة من مقياس أكسدة النبض ، والتوقيت الملاحظ للتعرض للغاز أو المسح الضوئي لـ OCTA وبيانات التصوير الأولية OCTA. تتكون صورة OCTA من الأشعة المقطعية OCT B وإشارة فك الارتباط المرتبطة بكل فحص B. يتم إعطاء معلمات البيانات حسب مواصفات الجهاز. تم استخد…

Discussion

المنهجية التي وصفت للتو هي البروتوكول الكامل لتجربة استفزاز تنفس الغاز التي تسمح لقياس RVR موضوع في بيئة خاضعة للرقابة في نقاط زمنية محددة مع عدم إدخال تعديلات على جهاز التصوير OCTA والحد الأدنى من الانزعاج أو خطر على هذا الموضوع. يتم وصف هذا الإعداد بطريقة تسمح بإجراء تعديلات سهلة لتناسب اح?…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

تم دعم هذا العمل من قبل NIH K08EY027006 ، R01EY030564 ، UH3NS100614 ، منح البحوث من كارل زايس ميديتيك شركة (دبلن ، كاليفورنيا) وتمويل إدارة غير مقيد من البحوث لمنع العمى (نيويورك ، نيويورك).

Materials

5% CO2 gas [5% CO2, 21% O2, 74% N2] (Compressed) Institution Dependent (Praxair)
Bacdown Disinfectant Detergent Decon Labs 8001 https://deconlabs.com/products/disinfectant-bdd/
Clean-Bor Tubes (35 mm Inner Diameter) Vacumed 1011-108 http://www.vacumed.com/zcom/product/Product.do?compid=27&skuid=1197
Cuff adapter for Douglas bag filling Vacumed 22254 http://www.vacumed.com/zcom/product/Product.do?compid=27&prodid=343
Douglas bag (200-liter capacity) Harvard Apparatus 500942 https://www.harvardapparatus.com/douglas-bag.html
Elbow Joint (Inner Diameter 19mm/ Outer Diameter 22 mm), Modified in House
Fingertip Pulse Oximeter (Pro-Series) CMS CMS 500DL https://www.walmart.com/ip/Pro-Series-CMS-500DL-Fingertip-Pulse-Oximeter-Blood-Oxygen-Saturation-Monitor-with-silicon-cover-batteries-and-lanyard/479049154
Gas Delivery Tube (22 mm Inner Diameter) Modified in House
Gas filling tube (1/8" for compressed gas)
Hydrogen Peroxide Cleaner Disinfectant Wipes Clorox Healthcare 30824 https://www.cloroxpro.com/products/clorox-healthcare/hydrogen-peroxide-cleaner-disinfectants/?gclid=EAIaIQobChMIk-KG4vi15QIVcRh9Ch0NNwLPEAAYASAAEgJIa_D_BwE&gclsrc=aw.ds
Lubricant Eye Drops Refresh Refresh Plus https://www.refreshbrand.com/Products/refresh-plus
Manual Directional Control Valves: Three-Way T-Shape Stopcock Type (Inner Diameter 28.6 mm, Outer Diameter 35 mm) Hans Rudolph 2100C Series www.rudolphkc.com
Medical O2 (Compressed) Institution Dependent
Mouth piece (Silicone, Model #9061) Hans Rudolph 602076 www.rudolphkc.com
OCTA Imaging Device (PLEX Elite 9000) Carl Zeiss Meditec, Dublin, CA, USA https://www.zeiss.com/meditec/int/product-portfolio/optical-coherence-tomography-devices/plex-elite-9000-swept-source-oct.html
Phenylephrine Hydrochloride Ophthalmic Solution, USP 2.5% Paragon Bioteck, Inc NDC 42702-102-15 https://paragonbioteck.com/products/diagnostics/phenylephrine-hydrochloride-ophthalmic-solution-usp-2-5/
Plastic Nose Clip Sterile Foam CS100 Sklar Sterile 96-2951 https://www.sklarcorp.com/disposables/plastic/plastic-nose-clip-sterile-foam-box-of-100.html
Proparacaine Hydrochloride Ophthalmic Solution, USP .5% Bausch + Lomb NDC 24208-730-06 https://www.bausch.com/ecp/our-products/rx-pharmaceuticals/generics
Regulator (tank dependent- 5% CO2: Fisherbrand Mulitstage Gas Cylinder Regulators) Genstar Technologies Company 10575150 https://www.fishersci.com/shop/products/fisherbrand-multistage-cylinder-regulators-22/10575150?keyword=true
Regulator (tank dependent- Oxygen: Fisherbrand Multistage Gas Cylinder Regulators) Genstar Technologies Company 10575145 https://www.fishersci.com/shop/products/fisherbrand-multistage-cylinder-regulators-22/10575145?keyword=true
Rubber Tubing (Inner diameter 19 mm, Outer diameter 27 mm), Made in House
Sealing tape- Parafilm Wrap (2" Wide) Cole Parmer PM992 https://www.coleparmer.com/i/parafilm-pm992-wrap-2-wide-250-ft-roll/0672050?PubID=VV&persist=True&ip=no&gclid=EAIaIQobChMInY3vqomz5QIVfyCtBh1VSg64EAAYASAAEgJ9n_D_BwE
Sterile Alcohol Prep Pads Medline MDS090670 https://www.medline.com/product/Sterile-Alcohol-Prep-Pads/Swab-Pads/Z05-PF03816
Tropicamide Ophthalmic Solution, USP 1% Akorn NDC 17478-102-12 http://www.akorn.com/prod_detail.php?ndc=17478-102-12
Tubing Adapter, Made in House
Two-way non-rebreathing valve (2600 Series- Inner Diameter 28.6 mm, Outer Diameter 35 mm) Hans Rudolph 2600 Series, UM-112078 www.rudolphkc.com

References

  1. Country, M. W. Retinal metabolism: A comparative look at energetics in the retina. Brain Research. 1672, 50-57 (2017).
  2. Ashimatey, B. S., Green, K. M., Chu, Z., Wang, R. K., Kashani, A. H. Impaired Retinal Vascular Reactivity in Diabetic Retinopathy as Assessed by Optical Coherence Tomography Angiography. Investigative Ophthalmology & Visual Science. 60 (7), 2468 (2019).
  3. Hickam, J. B. M. D., Frayser, R. P. D. Studies of the Retinal Circulation in Man: Observations on Vessel Diameter, Arteriovenous Oxygen Difference, and Mean Circulation Time. Circulation. 33 (2), 302-316 (1966).
  4. Dorner, G. T., Garhoefer, G., Zawinka, C., Kiss, B., Schmetterer, L. Response of Retinal Blood Flow to CO2 -Breathing in Humans. European Journal of Ophthalmology. 12 (6), 459-466 (2002).
  5. Linsenmeier, R. A., Zhang, H. F. Retinal oxygen: from animals to humans. Progress in Retinal and Eye Research. 58, 115-151 (2017).
  6. Eliakim, M., Mor, I., Michaelson, I. C. Assessment of pharmacologic effects on the retinal circulation of hypertensive subjects by a quantitative method. Microvascular Research. 4 (4), 374-383 (1972).
  7. Gilmore, E. D., et al. Retinal arteriolar hemodynamic response to an acute hyperglycemic provocation in early and sight-threatening diabetic retinopathy. Microvascular Research. 73 (3), 191-197 (2007).
  8. Hickam, J. B., Sieker, H. O. Retinal Vascular Reactivity in Patients with Diabetes Mellitus and with Atherosclerosis. Circulation. 22 (2), 243-246 (1960).
  9. Gilmore, E. D., et al. Retinal Arteriolar Diameter, Blood Velocity, and Blood Flow Response to an Isocapnic Hyperoxic Provocation in Early Sight-Threatening Diabetic Retinopathy. Investigative Ophthalmology & Visual Science. 48 (4), 1744 (2007).
  10. Garhofer, G. Reduced response of retinal vessel diameters to flicker stimulation in patients with diabetes. British Journal of Ophthalmology. 88 (7), 887-891 (2004).
  11. Felder, A. E., Wanek, J., Blair, N. P., Shahidi, M. Inner Retinal Oxygen Extraction Fraction in Response to Light Flicker Stimulation in Humans. Investigative Ophthalmology & Visual Science. 56 (11), 6633-6637 (2015).
  12. Rose, K., Flanagan, J. G., Patel, S. R., Cheng, R., Hudson, C. Retinal Blood Flow and Vascular Reactivity in Chronic Smokers. Investigative Ophthalmology & Visual Science. 55 (7), 4266 (2014).
  13. Omae, T., Nagaoka, T., Yoshida, A. Effects of Habitual Cigarette Smoking on Retinal Circulation in Patients With Type 2 Diabetes. Investigative Ophthalmology & Visual Science. 57 (3), 1345 (2016).
  14. Pusparajah, P., Lee, L. H., Abdul Kadir, K. Molecular Markers of Diabetic Retinopathy: Potential Screening Tool of the Future. Frontiers in Physiology. 7, (2016).
  15. Hammer, M., Vilser, W., Riemer, T., Schweitzer, D. Retinal vessel oximetry-calibration, compensation for vessel diameter and fundus pigmentation, and reproducibility. Journal of Biomedical Optics. 13 (5), 054015 (2008).
  16. Gilmore, E. D., Hudson, C., Preiss, D., Fisher, J. Retinal arteriolar diameter, blood velocity, and blood flow response to an isocapnic hyperoxic provocation. American Journal of Physiology-Heart and Circulatory Physiology. 288 (6), 2912-2917 (2005).
  17. Duan, A., Bedggood, P. A., Metha, A. B., Bui, B. V. Reactivity in the human retinal microvasculature measured during acute gas breathing provocations. Scientific Reports. 7 (1), 2113 (2017).
  18. Burns, S. A., Elsner, A. E., Sapoznik, K. A., Warner, R. L., Gast, T. J. Adaptive optics imaging of the human retina. Progress in Retinal and Eye Research. 68, 1-30 (2019).
  19. Kim, A. Y., Chu, Z., Shahidzadeh, A., Wang, R. K., Puliafito, C. A., Kashani, A. H. Quantifying Microvascular Density and Morphology in Diabetic Retinopathy Using Spectral-Domain Optical Coherence Tomography Angiography. Investigative Ophthalmology & Visual Science. 57 (9), (2016).
  20. Koulisis, N., et al. Quantitative microvascular analysis of retinal venous occlusions by spectral domain optical coherence tomography angiography. PLOS ONE. 12 (4), 0176404 (2017).
  21. Kim, A. Y., et al. Quantifying Retinal Microvascular Changes in Uveitis Using Spectral-Domain Optical Coherence Tomography Angiography. American Journal of Ophthalmology. 171, 101-112 (2016).
  22. Kashani, A. H., et al. Optical coherence tomography angiography: A comprehensive review of current methods and clinical applications. Progress in Retinal and Eye Research. 60, 66-100 (2017).
  23. Yu, D. Y., et al. Retinal capillary perfusion: Spatial and temporal heterogeneity. Progress in Retinal and Eye Research. 70, 23-54 (2019).
  24. Tayyari, F., et al. The Relationship between Retinal Vascular Reactivity and Arteriolar Diameter in Response to Metabolic Provocation. Investigative Ophthalmology & Visual Science. 50 (10), 4814 (2009).
  25. Lu, H., Liu, P., Yezhuvath, U., Cheng, Y., Marshall, O., Ge, Y. MRI Mapping of Cerebrovascular Reactivity via Gas Inhalation Challenges. Journal of Visualized Experiments. (94), e52306 (2014).
  26. Reif, R., Qin, J., An, L., Zhi, Z., Dziennis, S., Wang, R. Quantifying Optical Microangiography Images Obtained from a Spectral Domain Optical Coherence Tomography System. International Journal of Biomedical Imaging. 2012, 1-11 (2012).
  27. Olafsdottir, O. B., Eliasdottir, T. S., Kristjansdottir, J. V., Hardarson, S. H., Stefánsson, E. Retinal Vessel Oxygen Saturation during 100% Oxygen Breathing in Healthy Individuals. PLOS ONE. 10 (6), 0128780 (2015).
  28. Kiss, B., et al. Retinal Blood Flow during Hyperoxia in Humans Revisited: Concerted Results Using Different Measurement Techniques. Microvascular Research. 64 (1), 75-85 (2002).
  29. Yezhuvath, U. S., Lewis-Amezcua, K., Varghese, R., Xiao, G., Lu, H. On the assessment of cerebrovascular reactivity using hypercapnia BOLD MRI. NMR in biomedicine. 22 (7), 779-786 (2009).
  30. Hardarson, S. H., et al. Automatic Retinal Oximetry. Investigative Ophthalmology & Visual Science. 47 (11), 5011 (2006).
  31. Sousa, D. C., Leal, I., Moreira, S., Dionísio, P., Abegão Pinto, L., Marques-Neves, C. Hypoxia challenge test and retinal circulation changes – a study using ocular coherence tomography angiography. Acta Ophthalmologica. 96 (3), 315-319 (2018).
  32. Slessarev, M., Somogyi, R., Preiss, D., Vesely, A., Sasano, H., Fisher, J. A. Efficiency of oxygen administration: Sequential gas delivery versus “flow into a cone” methods. Critical Care Medicine. 34 (3), 829-834 (2006).
  33. Gilmore, E. D., Hudson, C., Venkataraman, S. T., Preiss, D., Fisher, J. Comparison of Different Hyperoxic Paradigms to Induce Vasoconstriction: Implications for the Investigation of Retinal Vascular Reactivity. Investigative Ophthalmology & Visual Science. 45 (9), 3207 (2004).
  34. Shahidi, A. M., Patel, S. R., Huang, D., Tan, O., Flanagan, J. G., Hudson, C. Assessment of total retinal blood flow using Doppler Fourier Domain Optical Coherence Tomography during systemic hypercapnia and hypocapnia. Physiological Reports. 2 (7), 12046 (2014).
  35. Maleki, N., et al. The Effect of Hypercarbia and Hyperoxia on the Total Blood Flow to the Retina as Assessed by Magnetic Resonance Imaging. Investigative Ophthalmology & Visual Science. 52 (9), 6867 (2011).
  36. Smit, B., Smulders, Y. M., vander Wouden, J. C., Oudemans-van Straaten, H. M., Spoelstra-de Man, A. M. E. Hemodynamic effects of acute hyperoxia: systematic review and meta-analysis. Critical Care. 22 (1), 45 (2018).
  37. Piccolino, F. P., Cagini, C., Fruttini, D., Nicolò, M., Eandi, C. M., Tito, S. Retinal Vascular Reactivity in Central Serous Chorioretinopathy. Investigative Ophthalmology & Visual Science. 59 (11), 4425 (2018).
  38. Sousa, D. C., et al. A Protocol to Evaluate Retinal Vascular Response Using Optical Coherence Tomography Angiography. Frontiers in Neuroscience. 13, 566 (2019).
  39. Robinson, F., Riva, C. E., Grunwald, J. E., Petrig, B. L., Sinclair, S. H. Retinal Blood Flow Autoregulation in Response to on Acute Increase in Blood Pressure. Investigative Ophthalmology & Visual Science. 27 (5), 5 (1986).
  40. Gherghel, D., Hosking, S. L., Cunliffe, I. A. Abnormal Systemic and Ocular Vascular Response to Temperature Provocation in Primary Open-Angle Glaucoma Patients: A Case for Autonomic Failure. Investigative Ophthalmology & Visual Science. 45 (10), 3546 (2004).
  41. You, Q., et al. Reproducibility of vessel density measurement with Optical Coherence Tomography Angiography in eyes with and without retinopathy. Retina. 37 (8), 1475-1482 (2017).
  42. Lei, J., et al. Repeatability and Reproducibility of Superficial Macular Retinal Vessel Density Measurements Using Optical Coherence Tomography Angiography En Face Images. JAMA Ophthalmology. 135 (10), 1092 (2017).
  43. Czakó, C., et al. Intrasession and Between-Visit Variability of Retinal Vessel Density Values Measured with OCT Angiography in Diabetic Patients. Scientific Reports. 8 (1), 10598 (2018).
  44. Field, A. S., Laurienti, P. J., Yen, Y. F., Burdette, J. H., Moody, D. M. Dietary Caffeine Consumption and Withdrawal: Confounding Variables in Quantitative Cerebral Perfusion Studies. Radiology. 227 (1), 129-135 (2003).
  45. Baek, S. U., et al. Diurnal change of retinal vessel density and mean ocular perfusion pressure in patients with open-angle glaucoma. PLOS ONE. 14 (4), 0215684 (2019).
  46. Müller, V. C., Storp, J. J., Kerschke, L., Nelis, P., Eter, N., Alnawaiseh, M. Diurnal variations in flow density measured using optical coherence tomography angiography and the impact of heart rate, mean arterial pressure and intraocular pressure on flow density in primary open-angle glaucoma patients. Acta Ophthalmologica. 97 (6), (2019).
  47. Sarwar, S., et al. Diurnal variation of choriocapillaris vessel flow density in normal subjects measured using optical coherence tomography angiography. International Journal of Retina and Vitreous. 4 (1), 37 (2018).
  48. Liu, P., De Vis, J. B., Lu, H. Cerebrovascular reactivity (CVR) MRI with CO2 challenge: A technical review. NeuroImage. 187, 104-115 (2019).
  49. Ting, D. S. W., et al. Optical Coherence Tomographic Angiography in Type 2 Diabetes and Diabetic Retinopathy. JAMA Ophthalmology. 135 (4), 306 (2017).
  50. Spaide, R. F., Fujimoto, J. G., Waheed, N. K., Sadda, S. R., Staurenghi, G. Optical coherence tomography angiography. Progress in retinal and eye research. 64, 1-55 (2018).
  51. An, D., et al. Quantitative comparisons between optical coherence tomography angiography and matched histology in the human eye. Experimental Eye Research. 170, 13-19 (2018).

Play Video

Cite This Article
Kushner-Lenhoff, S., Ashimatey, B. S., Kashani, A. H. Retinal Vascular Reactivity as Assessed by Optical Coherence Tomography Angiography. J. Vis. Exp. (157), e60948, doi:10.3791/60948 (2020).

View Video