Summary

Scoperta dei geni del conducente nelle scansioni tumorali del cancro derivato dal cancro colorettale

Published: July 22, 2020
doi:

Summary

Presentato qui è un protocollo per scoprire i geni del pilota sovraespressi che mantengono le cellule staminali tumorali stabilite derivate dalle cellule del colon-retto HT29. È stato eseguito RNAseq con bioinformatica disponibile per studiare e vagliare le reti di espressione genica per chiarire un potenziale meccanismo coinvolto nella sopravvivenza delle cellule tumorali mirate.

Abstract

Le cellule staminali tumorali svolgono un ruolo vitale contro le terapie cliniche, contribuendo alla ricaduta del tumore. Ci sono molti oncogeni coinvolti nella tumorigenesi e l’avvio delle proprietà dello stelo del cancro. Poiché l’espressione genica nella formazione delle sfere tumorali derivate dal cancro colorettale non è chiara, ci vuole tempo per scoprire i meccanismi che lavorano su un gene alla volta. Questo studio dimostra un metodo per scoprire rapidamente i geni del conducente coinvolti nella sopravvivenza delle cellule staminali del cancro colorettale in vitro. Le cellule tumorali del coloretalizzatore HT29 che esprimono il LGR5 quando coltivate come sferoidi e accompagnano un aumento dei marcatori di stelo CD133 sono state selezionate e utilizzate in questo studio. Il protocollo presentato viene utilizzato per eseguire RNAaseq con bioinformatica disponibile per scoprire rapidamente i geni del pilota sovraespressi nella formazione di sfere tutolali di tipo stelo derivato dall’HT29. La metodologia è in grado di vagliare e scoprire rapidamente potenziali geni del conducente in altri modelli di malattia.

Introduction

Il cancro colorettale (CRC) è una delle principali cause di morte con un’elevata prevalenza e mortalità in tutto il mondo1,2. A causa di mutazioni genetiche e amplificazioni, le cellule tumorali crescono senza controllo proliferativo, che contribuisce alla sopravvivenza cellulare3, anti-apoptosi4e stesità del cancro5,6,7. All’interno di un tessuto tumorale, l’eterogeneità tumorale permette alle cellule tumorali di adattarsi e sopravvivere durante i trattamenti terapeutici8. Le cellule staminali tumorali (CSC), con un più alto tasso di auto-rinnovamento e pluripotenza rispetto ai tipi di cancro differenziale, sono principalmente responsabili della recidiva tumorale9,10 e CRC metastatico11. I CSC presentano più resistenza ai farmaci12,13,14 e proprietà anti-apoptosi15,16, superstiggino così le chemioterapie tumorali.

Qui, al fine di studiare il potenziale meccanismo di stelo nelle cellule staminali CRC selezionate, è stato eseguito RNAseq per vagliare i geni espressi in modo differenziale negli sferoidi tumorali. Le cellule tumorali possono formare sferoidi (chiamati anche sfere tumorali) quando coltivati in condizioni di bassa aderenza e stimolati da fattori di crescita aggiunti al mezzo coltivato, tra cui EGF, bFGF, HGF, e IL6. Pertanto, abbiamo selezionato le cellule tumorali CRC HT29 che resistono alle chemioterapie con un aumento della STAT3 fosforolata quando trattate con oxaliplatin e irinotecon17. Inoltre, HT29 ha espresso marcatori di gambo più elevati quando coltivato nelle condizioni di coltura descritte. Il modello CSC derivato dall’HT29 esprimeva quantità più elevate di recettore G-proteina accoppiato a proteina 5 (LGR5)18,un marcatore specifico delle cellule staminali CRC19,20. Inoltre, CD133, considerato un biomarcatore generale per le cellule staminali tumorali, è anche altamente espresso nella linea cellulare HT2921. Lo scopo di questo protocollo è quello di scoprire gruppi di geni di guida nelle sfere tumorali simili a stelo del cancro stabilite basate su set di dati bioinformatici anziché studiare oncogeni individuali22. Esamina i potenziali meccanismi molecolari attraverso l’analisi degli RNAeq seguita da analisi bioinformatiche disponibili.

Il sequenziamento di nuova generazione è un metodo di sequenziamento del DNA ad alta produttività, facilmente reperibile e affidabile basato su un aiuto computazionale, utilizzato per vagliare in modo completo i geni del conducente per guidare le terapie tumorali23. La tecnologia viene utilizzata anche per rilevare l’espressione genica dalla trascrizione inversa di un campione di RNA isolato24. Tuttavia, durante lo screening con RNAseq, i geni più importanti da rivolgere con la terapia potrebbero non avere il differenziale di espressione più alto tra campioni sperimentali e di controllo. Pertanto, sono state sviluppate alcune bioinformatice per classificare e identificare i geni in base ai set di dati attuali come KEGG25, GO26,27o PANTHER28, tra cui Ingenuity Pathway Analysis (IPA)29 e NetworkAnalyst30. Questo protocollo mostra l’integrazione di RNAseq e NetworkAnalyst per scoprire rapidamente un gruppo di geni negli sferoidi selezionati derivati dall’HT29 rispetto alle cellule parentali HT29. L’applicazione di questo metodo ad altri modelli di malattia è anche suggerita per scoprire le differenze nei geni importanti.

Rispetto allo studio dell’espressione genica individuale, una tecnica ad alto throughput offre vantaggi per trovare facilmente potenziali geni del conducente per la medicina di precisione del tumore. Con set di dati utili come KEGG, GO o PANTHER, geni specifici possono essere identificati sulla base dei modelli di malattia, dei percorsi di segnalazione o di funzioni specifiche, e questo permette di concentrarsi rapidamente su geni specifici e importanti, risparmiando tempo e costi di ricerca. Un’applicazione simile viene utilizzata negli studi precedenti14,18,31. In particolare, un tumore è più complicato perché diversi tipi di tumori esprimono geni distintivi e percorsi per la sopravvivenza e la proliferazione. Pertanto, questo protocollo può raccogliere geni che distinguono diversi tipi di tumore in circostanze diverse. C’è il potenziale per trovare strategie efficaci contro i tumori comprendendo il meccanismo di un’espressione genica specifica.

Protocol

1. Coltura cellulare e formazione della sfera della tumore Coltura cellule HT29 in un piatto da 10 cm contenente il mezzo aquila modificato di Dulbecco (DMEM) con 10% siero bovino fetale (FBS) e 1% antibiotico penicillina-streptomicina (P/S). Coltiva le cellule in un’incubatrice a 37 gradi centigradi con il 5% di CO2 e il 95% di umidità in condizioni aptiche, fino a raggiungere l’80% di confluenza. Provare le celle HT29 con 1 mL di 0,25% trypsin per 5 min a 37 s c e di conseguenz…

Representative Results

Per stabilire il modello per studiare il meccanismo nelle cellule staminali tumorali, le cellule del colon-retto HT29 sono state utilizzate per colture le sfere tumorali simili a stelo del cancro in vitro in una piastra a basso attaccamento contenente B27, EGF, bFGF, HGF e IL6. Le sfere tumorali > 100 m di diametro si sono formate in 7 giorni (Figura 1A). Le sfere tumorali sono state provate in singole cellule e analizzate usando la citometria di flusso per rilevare l’espressione LGR5 e CD13…

Discussion

In questo studio, le tumori del cancro coltivato sono state utilizzate come modello nell’analisi dei dati degli RNA con la bioinformatica disponibile. Per un modello di malattia, sono state utilizzate sfere tumorali derivate dall’HT29. Poiché le sfere tumorali hanno resistenza ai farmaci contro le terapie tumorali, il modello stabilito può essere utilizzato per studiare i meccanismi dettagliati della resistenza studiando le differenze nell’espressione genica. Inoltre, la tecnologia genomica che utilizza l’RNAseq con la…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Gli autori ringraziano il Radiation Biology Core Laboratory of Institute for Radiological Research, Chang Gung Memorial Hospital, per il supporto tecnico. Questo studio è stato sostenuto dalle sovvenzioni del Chang Gung Memorial Hospital (CMRPD1J0321), del Cheng Hsin General Hospital (CHGH 106-06) e del Mackay Memorial Hospital (MMH-CT-10605 e MMH-106-61). Gli organismi finanziatori non hanno avuto alcuna influenza nella progettazione dello studio e nella raccolta, analisi e interpretazione dei dati o nella scrittura del manoscritto.

Materials

iRiS Digital Cell Imaging System Logos Biosystems, Inc I10999 for observing the formation of tumorspheres
Flow cytometry BD biosciences FACSCalibur for detecting the LGR5 and CD133 in the tumorspheres
anti-LGR5-PE Biolegend 373803 LGR5 detection reagent
anti-CD133-PE Biolegend 372803 CD133 detection reagent
EGF GenScript Z00333 for culture of tumorspheres
bFGF GenScript Z03116 for culture of tumorspheres
HGF GenScript Z03229 for culture of tumorspheres
IL6 GenScript Z03034 for culture of tumorspheres
PureLink RNA extraction kit Invitrogen 12183025 isolate total RNA for RNAseq analysis
RNAseq performance Biotools, Taiwan RNAseq analysis is done commerially by Biotools, Ttaiwan
NetworkAnalyst Institute of Parasitology, McGill University, Montreal, Quebec, Canada http://www.networkanalyst.ca/
Prism GraphPad Software a statistical analysis software

References

  1. Rawla, P., Sunkara, T., Barsouk, A. Epidemiology of colorectal cancer: incidence, mortality, survival, and risk factors. Przegląd Gastroenterologiczny. 14 (2), 89-103 (2019).
  2. Wong, M. C., Ding, H., Wang, J., Chan, P. S., Huang, J. Prevalence and risk factors of colorectal cancer in Asia. Intestinal Research. 17 (3), 317-329 (2019).
  3. Liu, Q., et al. Positive expression of basic transcription factor 3 predicts poor survival of colorectal cancer patients: possible mechanisms involved. Cell Death & Disease. 10 (7), 509 (2019).
  4. Slattery, M. L., et al. Dysregulated genes and miRNAs in the apoptosis pathway in colorectal cancer patients. Apoptosis. 23 (3-4), 237-250 (2018).
  5. Arteaga, C. L., Engelman, J. A. ERBB receptors: from oncogene discovery to basic science to mechanism-based cancer therapeutics. Cancer Cell. 25 (3), 282-303 (2014).
  6. Yarden, Y., Pines, G. The ERBB network: at last, cancer therapy meets systems biology. Nature Reviews Cancer. 12 (8), 553-563 (2012).
  7. Cheng, C. C., et al. YM155 as an inhibitor of cancer stemness simultaneously inhibits autophosphorylation of epidermal growth factor receptor and G9a-mediated stemness in lung cancer cells. PLoS One. 12 (8), 0182149 (2017).
  8. Prasetyanti, P. R., Medema, J. P. Intra-tumor heterogeneity from a cancer stem cell perspective. Molecular Cancer. 16 (1), 41 (2017).
  9. Zhao, Y., et al. CD133 expression may be useful as a prognostic indicator in colorectal cancer, a tool for optimizing therapy and supportive evidence for the cancer stem cell hypothesis: a meta-analysis. Oncotarget. 7 (9), 10023-10036 (2016).
  10. Choi, J. E., et al. Expression of epithelial-mesenchymal transition and cancer stem cell markers in colorectal adenocarcinoma: Clinicopathological significance. Oncology Reports. 38 (3), 1695-1705 (2017).
  11. Massard, C., Deutsch, E., Soria, J. C. Tumour stem cell-targeted treatment: elimination or differentiation. Annals of Oncology. 17 (11), 1620-1624 (2006).
  12. Grillet, F., et al. Circulating tumour cells from patients with colorectal cancer have cancer stem cell hallmarks in ex vivo culture. Gut. 66 (10), 1802-1810 (2017).
  13. Dallas, N. A., et al. Chemoresistant colorectal cancer cells, the cancer stem cell phenotype, and increased sensitivity to insulin-like growth factor-I receptor inhibition. 암 연구학. 69 (5), 1951-1957 (2009).
  14. Chang, Y. F., et al. STAT3 induces G9a to exacerbate HER3 expression for the survival of epidermal growth factor receptor-tyrosine kinase inhibitors in lung cancers. BMC Cancer. 19 (1), 959 (2019).
  15. Catalano, V., et al. Colorectal cancer stem cells and cell death. Cancers (Basel). 3 (2), 1929-1946 (2011).
  16. Piggott, L., et al. Suppression of apoptosis inhibitor c-FLIP selectively eliminates breast cancer stem cell activity in response to the anti-cancer agent, TRAIL. Breast Cancer Research. 13 (5), 88 (2011).
  17. Chung, S. Y., et al. Two novel SHP-1 agonists, SC-43 and SC-78, are more potent than regorafenib in suppressing the in vitro stemness of human colorectal cancer cells. Cell Death Discovery. 4, 25 (2018).
  18. Cheng, C. C., et al. STAT3 exacerbates survival of cancer stem-like tumorspheres in EGFR-positive colorectal cancers: RNAseq analysis and therapeutic screening. Journal of Biomedical Science. 25 (1), 60 (2018).
  19. Kleist, B., Xu, L., Li, G., Kersten, C. Expression of the adult intestinal stem cell marker Lgr5 in the metastatic cascade of colorectal cancer. International Journal of Clinical and Experimental Pathology. 4 (4), 327-335 (2011).
  20. Medema, J. P. Targeting the Colorectal Cancer Stem Cell. New England Journal of Medicine. 377 (9), 888-890 (2017).
  21. Sahlberg, S. H., Spiegelberg, D., Glimelius, B., Stenerlow, B., Nestor, M. Evaluation of cancer stem cell markers CD133, CD44, CD24: association with AKT isoforms and radiation resistance in colon cancer cells. PLoS One. 9 (4), 94621 (2014).
  22. Xia, J., Gill, E. E., Hancock, R. E. NetworkAnalyst for statistical, visual and network-based meta-analysis of gene expression data. Nature Protocols. 10 (6), 823-844 (2015).
  23. Gagan, J., Van Allen, E. M. Next-generation sequencing to guide cancer therapy. Genome Medicine. 7 (1), 80 (2015).
  24. Panichnantakul, P., Bourgey, M., Montpetit, A., Bourque, G., Riazalhosseini, Y. RNA-Seq as a Tool to Study the Tumor Microenvironment. Methods in Molecular Biology. 1458, 311-337 (2016).
  25. Kanehisa, M., Sato, Y. KEGG Mapper for inferring cellular functions from protein sequences. Protein Science. 29 (1), 28-35 (2020).
  26. Ashburner, M., et al. Gene ontology: tool for the unification of biology. The Gene Ontology Consortium. Nature Genetics. 25 (1), (2000).
  27. The Gene Ontology Collective. The Gene Ontology Resource: 20 years and still GOing strong. Nucleic Acids Research. 47, 330-338 (2019).
  28. Mi, H., Muruganujan, A., Thomas, P. D. PANTHER in 2013: modeling the evolution of gene function, and other gene attributes, in the context of phylogenetic trees. Nucleic Acids Research. 41, 377-386 (2013).
  29. Yu, F., Shen, X. Y., Fan, L., Yu, Z. C. Genome-wide analysis of genetic variations assisted by Ingenuity Pathway Analysis to comprehensively investigate potential genetic targets associated with the progression of hepatocellular carcinoma. European Review for Medical and Pharmacological Sciences. 18 (15), 2102-2108 (2014).
  30. Zhou, G., et al. NetworkAnalyst 3.0: a visual analytics platform for comprehensive gene expression profiling and meta-analysis. Nucleic Acids Research. 47 (1), 234-241 (2019).
  31. Cheng, C. C., et al. Epidermal growth factor induces STAT1 expression to exacerbate the IFNr-mediated PD-L1 axis in epidermal growth factor receptor-positive cancers. Molecular Carcinogenesis. 57 (11), 1588-1598 (2018).
  32. Gallego Romero, I., Pai, A. A., Tung, J., Gilad, Y. RNA-seq: impact of RNA degradation on transcript quantification. BMC Biology. 12, 42 (2014).

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Cite This Article
Cheng, C., Hsu, P., Sie, Z., Chen, F. Discovery of Driver Genes in Colorectal HT29-derived Cancer Stem-Like Tumorspheres. J. Vis. Exp. (161), e61077, doi:10.3791/61077 (2020).

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