Summary

Différenciation des monocytes en macrophages phénotypiquement distincts après traitement par des exosomes dérivés de cellules souches de sang de cordon humain (CB-SC)-Dérivés

Published: November 12, 2020
doi:

Summary

L’application Exosome est un outil émergent pour le développement de médicaments et la médecine régénérative. Nous établissons un protocole d’isolement exosome avec une grande pureté pour isoler les exosomes de nouvelles cellules souches identifiées appelées CB-SC pour les études mécanistes. Nous coculture également cb-SC-dérivé exosomes avec des monocytes humains, conduisant à leur différenciation en macrophages phénotypiquement distincts.

Abstract

La thérapie d’éducateur de cellules souches (SCE) est une nouvelle approche clinique pour le traitement du diabète de type 1 et d’autres maladies auto-immunes. La thérapie de SCE fait circuler les cellules mononucléaires de sang du patient isolé (par exemple, lymphocytes et monocytes) par une machine d’apheresis, co-cultures les cellules mononucléaires de sang du patient avec des cellules souches adhérentes dérivées du sang de cordon ombilical (CB-SC) dans le dispositif de SCE, et retourne alors ces cellules immunitaires « instruites » au sang du patient. Les exosomes sont des vésicules extracellulaires de taille nanométrique entre 30\u2012150 nm existant dans tous les médias biofluidés et de culture cellulaire. Pour explorer davantage les mécanismes moléculaires sous-jacents à la thérapie SCE et déterminer les actions des exosomes libérés par CB-SC, nous étudions quelles cellules phagocytisent ces exosomes pendant le traitement par CB-SC. En co-culturant les exosomes dérivés du CB-SC étiquetés PAR Dio avec les cellules mononucléaires sanguines périphériques humaines (PBMC), nous avons constaté que les exosomes dérivés du CB-SC étaient principalement pris en charge par des monocytes humains CD14 positifs, conduisant à la différenciation des monocytes en macrophages de type 2 (M2), avec morphologie spindle-like et expression des marqueurs moléculaires de surface associés à M2. Ici, nous présentons un protocole pour l’isolement et la caractérisation des exosomes cb-SC-dérivés et le protocole pour la co-culture des exosomes CB-SC-dérivés avec les monocytes humains et la surveillance de la différenciation M2.

Introduction

Les cellules souches du sang de cordon ombilical (CB-SC) sont un type unique de cellules souches identifiées à partir du sang de cordon ombilical humain et se distinguent d’autres types connus de cellules souches telles que les cellules souches mésenchymales (MSC) et les cellules souches hématopoïétiques (HSC)1. En fonction de leurs propriétés uniques de modulation immunitaire et de leur capacité à adhérer étroitement à la surface des boîtes de Pétri, nous avons développé une nouvelle technologie désignée comme thérapie d’éducateur de cellules souches (SCE) dans les essaiscliniques 2,3. Pendant la thérapie de SCE, les cellules mononucléaires périphériques de sang d’un patient (PBMC) sont rassemblées et distribuées par un séparateur cellulaire et co-cultivés avec le CB-SC adhérent in vitro. Ces cellules « instruites » (CB-SC-traitées PBMC) sont alors retournées à la circulation du patient dans un système à boucle fermée. Les essais cliniques ont déjà démontré l’innocuité clinique et l’efficacité de la thérapie SCE pour le traitement des maladies auto-immunes, y compris le diabète de type 1 (T1D)2,4 et l’alopécie areata (AA)5.

Les exosomes sont une famille de nanoparticules dont le diamètre est de 30\u2012150 nm et existent dans tous les médias biofluides et de culture cellulaire6. Les exosomes sont enrichis de nombreuses molécules bioactives, y compris les lipides, les ARNM, les protéines et les microARN (miARN), et jouent un rôle important dans les communications cellule à cellule. Ces derniers temps, les exosomes sont devenus plus attrayants pour les chercheurs et les compagnies pharmaceutiques en raison de leur potentiel thérapeutique dans les cliniques7,8,9. Récemment, nos études mécanistes ont démontré que les exosomes CB-SC-libérés contribuent à la modulation immunisée de la thérapie de SCE10.

Ici, nous décrivons le protocole pour explorer le mécanisme de la thérapie de SCE ciblant des monocytes par des exosomes CB-SC-libérés. Premièrement, les exosomes libérés par CB-SC ont été isolés des supports conditionnés dérivés du CB-SC à l’aide de méthodes d’ultracentrifugation et validés par cytométrie d’écoulement, tache occidentale (WB) et diffusion dynamique de la lumière (DLS). Deuxièmement, les exosomes dérivés de CB-SC ont été étiquetés avec un colorant lipophile fluorescent vert : Dio. Troisièmement, ils ont été co-cultivés avec PBMC pour examiner les pourcentages positifs d’exosomes dérivés de CB-SC étiquetés Dio aux différentes sous-populations de PBMC par cytométrie de flux. Ce protocole fournit des conseils pour étudier l’action des exosomes sous-jacents à la modulation immunitaire des cellules souches.

Protocol

Le protocole suit les lignes directrices du comité institutionnel d’éthique de la recherche humaine au Center for Discovery and Innovation, Hackensack Meridian Health. Des unités humaines de sang de manteau buffy ont été achetées du centre de sang de New York (New York, NY). Des unités humaines de sang de cordon ombilical ont été recueillies auprès de donneurs en bonne santé et achetées auprès de la banque de sang Cryo-Cell International (Oldsmar, FL). Le New York Blood Center et Cryo-Cell ont tous deux re…

Representative Results

Au commencement, le phénotype et la pureté du CB-SC ont été examinés par cytométrie de flux avec des marqueurs CB-SC-associés tels que l’antigène commun de leucocyte CD45, les facteurs de transcription cellule-spécifiques d’ES OCT3/4, et SOX2. Cb-SC afficher des niveaux élevés de CD45, OCT3/4, SOX2, CD270, et galectin 9 expression, mais aucune expression de CD34 (Figure 1A). L’analyse de cytométrie de flux a confirmé l’expression des marqueurs exosome-spécifiques compre…

Discussion

L’application d’exosomes est un domaine émergent pour le diagnostic clinique, le développement de médicaments et la médecine régénérative. Ici, nous présentons un protocole détaillé concernant la préparation des exosomes CB-SC-dérivés et l’étude fonctionnelle des exosomes sur la différenciation des monocytes humains. Le protocole actuel a démontré que les exosomes fonctionnels CB-SC-dérivés sont isolés par centrifugation séquentielle et ultracentrifugation avec la pureté élevée et présentan…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Nous sommes reconnaissants à MM. Poddar et Ludwig pour leur généreux soutien financier par l’intermédiaire de la Fondation Hackensack UMC. Nous apprécions Laura Zhao pour le montage en anglais.

Materials

1.5 ml Microcentrifuge tube Fisher Scientific 05-408-129
15 ml conical tube Falcon 352196
24-well plate Falcon 351147 Non-tissue culture
plate
3,3'-Diostadecyloxacarbocyanine perchlorate(Dio) Millipore sigma D4292-20MG Store at 4 °C
300 Mesh Grids Ted Pella 1GC300
50 mL conical tube Falcon 352070
6-well plate Falcon 353046 Tissue culture plate
96-well plate Falcon 353072 Tissue culture plate
ACK Lysis Buffer Lonza 10-548E 100 ml
Amicon-15 10kDa Centrifuge Fliter Unit Millipore sigma UFC901024
Anti-Human Alix Biolegend 634501 store at 4 °C, RRID: AB_2268110
Anti-Human Calnexin Biolegend 699401 store at 4 °C, RRID: AB_2728519
Anti-Human CD11c antibody, Pe-Cy7 BD Bioscience 561356 store at 4 °C, RRID: AB_10611859
Anti-Human CD14 antibody, Karma Orange Beckman Coulter B36294 store at 4 °C, RRID: AB_2728099
Anti-Human CD163 antibody, PE BD Bioscience 556018 store at 4 °C, RRID: AB_396296
Anti-Human CD19 antibody, PC5 Beckman Coulter IM2643U store at 4 °C, RRID: AB_131160
Anti-Human CD206 antibody, FITC BD Bioscience 551135 store at 4 °C, RRID: AB_394065
Anti-Human CD209 antibody, Brilliant Violet 421 BD Bioscience 564127 store at 4 °C, RRID: AB_2738610
Anti-Human CD270 antibody, PE Biolegend 318806 store at 4 °C, RRID: AB_2203703
Anti-Human CD3 antibody, Pacfic Blue Biolegend 300431 store at 4 °C, RRID: AB_1595437
Anti-Human CD34 antibody, APC Beckman Coulter IM2427U store at 4 °C, RRID: N/A
Anti-Human CD4 antibody, APC BD Bioscience 555349 store at 4 °C, RRID: AB_398593
Anti-Human CD45 antibody, Pe-Cy7 Beckman Coulter IM3548U store at 4 °C, RRID: AB_1575969
Anti-Human CD56 antibody, PE Beckman Coulter IM2073U store at 4 °C, RRID: AB_131195
Anti-Human CD63 antibody,PE BD Bioscience 561925 store at 4 °C, RRID: AB_10896821
Anti-Human CD8 antibody, APC-Alexa Fluor 750 Beckman Coulter A94686 store at 4 °C, RRID: N/A
Anti-Human CD80 antibody, APC Beckman Coulter B30642 store at 4 °C, RRID: N/A
Anti-Human CD81 antibody, FITC BD Bioscience 561956 store at 4 °C, RRID: AB_394049
Anti-Human CD86 antibody, APC-Alexa Fluor 750 Beckman Coulter B30646 store at 4 °C, RRID: N/A
Anti-Human CD9 antibody, FITC ThermoScientic MA5-16860 store at 4 °C, RRID: AB_2538339
Anti-Human Galectin 9 antibody, Brilliant Violet 421 Biolegend 348919 store at 4 °C, RRID: AB_2716134
Anti-Human OCT3/4 antibody, eFluor660 ThermoScientic 50-5841-82 store at 4 °C, RRID: AB_11218882
Anti-Human SOX2 antibody, Alexa Fluor 488 ThermoScientic 53-9811-82 store at 4 °C, RRID: AB_2574479
BCA Protein Assay Kit ThermoFisher Scientific 23227
Bovine Serum Albumin Millipore Sigma A1933
Buffy coat New York Blood Center 40-60 ml/unit
Cell scraper Falcon 353085
Disposable semi-micro cuvette VWR 97000590
Dissociation buffer Gibco 131510014 100 ml
Dual-Chanber cell counting slides Bio-Rad 1450015
Exosome-Human CD63 Detection reagent ThermoFisher Scientific 10606D store at 4 °C
Ficoll-Paque PLUS density grandient media GE Health 17-1440-03 500 ml
Fixed-Angle Rotor(25°) Thermo Scientifc 75003698 Maxium 24,700 x g
Gallios flow cytometer Beckman Coulter 3 lasers
10 Color Max
Human cord blood Cryo-Cell International 40-100 ml/unit
Human Fc Block BD Bioscience 564220 store at 4 °C
Immun-Blot PVDF membrane Bio-Rad 1620177
Millex-GP Syringe Filter Unit, 0.22 µm Millipore Sigma SLGP033RS
Optima XE-90 Ultracentriguge Beckman Coulter
Orbital Shaker MP4 BioExpress S-3500-1
PBS ThermoFisher Scientific 10010049 500 ml
Propidium Iodide BD Bioscience 56-66211E store at 4 °C
Nikon Eclipse Ti2 microscope Nikon instruments Inc Eclipse Ti2 NIS-Elements software version 5.11.02
Hochest 33342 Thermo Scientifc 62249 5 ml
Revert microsopy Fisher scientific 12563518
Rotor 41 Ti Beckman Coulter 331362 Maxium 41,000 rpm
Sorvall St 16R Centrifuge Thermo Scientifc 75004381
Swinging Bucket Rotor Thermo Scientifc 75003655
TC-20 cell counter Bio-Rad
ThermoScientific Forma 380 Steri Cycle CO2 Incubator ThermoFisher Scientific
Transmission electron microscopy JEOL JEM-2100 PLUS
Ultracentrifuge tube Beckman Coulter 331372
X'VIVO 15 Serum-free medium Lonza BEBP04-744Q 1000 ml Culture medium, store at 4 °C

References

  1. Zhao, Y. Stem cell educator therapy and induction of immune balance. Current Diabetes Reports. 12 (5), 517-523 (2012).
  2. Zhao, Y., et al. Reversal of type 1 diabetes via islet beta cell regeneration following immune modulation by cord blood-derived multipotent stem cells. BMC Medicine. 10 (1), 3 (2012).
  3. Zhao, Y., et al. Targeting insulin resistance in type 2 diabetes via immune modulation of cord blood-derived multipotent stem cells (CB-SCs) in stem cell educator therapy: phase I/II clinical trial. BMC Medicine. 11, 160 (2013).
  4. Delgado, E., et al. Modulation of autoimmune T-cell memory by stem cell educator therapy: phase 1/2 clinical trial. EBioMedicine. 2 (12), 2024-2036 (2015).
  5. Li, Y., et al. Hair regrowth in alopecia areata patients following Stem Cell Educator therapy BMC. 의학. 13 (1), 87 (2015).
  6. Colombo, M., Raposo, G., Thery, C. Biogenesis, secretion, and intercellular interactions of exosomes and other extracellular vesicles. Annual Review of Cell And Developmental Biology. 30, 255-289 (2014).
  7. Abak, A., Abhari, A., Rahimzadeh, S. Exosomes in cancer: small vesicular transporters for cancer progression and metastasis, biomarkers in cancer therapeutics. PeerJ. 6, 4763 (2018).
  8. Adamiak, M., Sahoo, S. Exosomes in myocardial repair: advances and challenges in the development of next-generation therapeutics. Molecular Therapy. 26 (7), 1635-1643 (2018).
  9. Akyurekli, C., et al. A systematic review of preclinical studies on the therapeutic potential of mesenchymal stromal cell-derived microvesicles. Stem Cell Review and Report. 11 (1), 150-160 (2015).
  10. Hu, W., Song, X., Yu, H., Sun, J., Zhao, Y. Released exosomes contribute to the immune modulation of cord blood-derived stem cells (CB-SC). Frontiers in Immunology. (11), 165 (2020).
  11. Jacobson, G., Kårsnäs, P. Important parameters in semi-dry electrophoretic transfer. Electrophoresis. 11 (1), 46-52 (1990).
  12. Dykstra, M. J., Reuss, L. E. . Biological Electron Microscopy: Theory, Techniques, and Troubleshooting. , (2011).
  13. Konoshenko, M. Y., Lekchnov, E. A., Vlassov, A. V., Laktionov, P. P. Isolation of extracellular vesicles: general methodologies and latest trends. BioMed Research International. 2018, 8545347 (2018).
  14. Witwer, K. W., et al. Standardization of sample collection, isolation and analysis methods in extracellular vesicle research. Journal of Extracellular Vesicles. 2, (2013).
  15. Orecchioni, M., Ghosheh, Y., Pramod, A. B., Ley, K. Macrophage polarization: different gene signatures in M1(LPS+) vs. classically and M2(LPS-) vs. alternatively activated macrophages. Frontiers in Immunology. 10, 1084 (2019).
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Cite This Article
Hu, W., Song, X., Yu, H., Sun, J., Zhao, Y. Differentiation of Monocytes into Phenotypically Distinct Macrophages After Treatment with Human Cord Blood Stem Cell (CB-SC)-Derived Exosomes. J. Vis. Exp. (165), e61562, doi:10.3791/61562 (2020).

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