Summary

Agrobacterium-Gemedieerde genetische transformatie, transgene productie, en de toepassing ervan voor de studie van mannelijke reproductieve ontwikkeling in rijst

Published: October 06, 2020
doi:

Summary

Dit werk beschrijft het gebruik van CRISPR-Cas9 genoombewerkingstechnologie om het endogene gen OsABCG15 uit te sluiten, gevolgd door een gemodificeerd Agrobacterium-gemedieerdtransformatieprotocol om een stabiele mansteriele lijn in rijst te produceren.

Abstract

Mannelijke steriliteit is een belangrijke agronomische eigenschap voor hybride zaadproductie die meestal wordt gekenmerkt door functionele defecten in mannelijke voortplantingsorganen / gameten. Recente ontwikkelingen in CRISPR-Cas9 genoombewerkingstechnologie zorgen voor een hoge bewerkingseffectie en tijdbesparende knock-out mutaties van endogene kandidaat-genen op specifieke locaties. Bovendien, Agrobacterium-bemiddelde genetische transformatie van rijst is ook een belangrijke methode voor genmodificatie, die op grote schaal is overgenomen door vele openbare en particuliere laboratoria. In deze studie hebben we CRISPR-Cas9 genoombewerkingstools toegepast en met succes drie mannelijke steriele mutantlijnen gegenereerd door gerichte genoombewerking van OsABCG15 in een japonica cultivar. We gebruikten een gemodificeerde Agrobacterium-gemedieerderijst transformatie methode die uitstekende middelen van genetische emasculatie voor hybride zaadproductie in rijst zou kunnen bieden. Transgene planten kunnen worden verkregen binnen 2-3 maanden en homozygoottransgeefmiddelen werden gescreend door genotyperen met behulp van PCR-versterking en Sanger sequencing. Fundamentele fenotypische karakterisering van de mannelijke steriele homozygootlijn werd uitgevoerd door microscopische observatie van de rijst mannelijke voortplantingsorganen, pollen levensvatbaarheid analyse door jodium kalium jodide (I2-KI) vlekken semi-dunne dwarsdoorsnede van de ontwikkeling van anthers.

Introduction

Rijst is het belangrijkste voedselgewas, met name in ontwikkelingslanden, en is een basisvoedsel voor meer dan de helft van de wereldbevolking. Over het geheel genomen groeit de vraag naar rijstkorrels en zal de vraag naar rijstkorrels naar verwachting met 50% toenemen in 2030 en 100% in 20501,2. Toekomstige verbeteringen in de rijstopbrengst zullen moeten profiteren van diverse moleculaire en genetische hulpbronnen die rijst een uitstekend model maken voor monocotyledonous plantonderzoek. Deze omvatten een efficiënt transformatiesysteem, geavanceerde moleculaire kaart en openbaar toegankelijke database van uitgedrukte sequentietags, die gedurende vele jaren3,4zijn gegenereerd . Een strategie om de gewasopbrengst te verbeteren is hybride zaadproductie5, waarvan een centraal element de mogelijkheid is om de mannelijke vruchtbaarheid te manipuleren. Inzicht in de moleculaire controle van de mannelijke vruchtbaarheid in graangewassen kan helpen om belangrijke kennis te vertalen naar praktische technieken om de hybride zaadproductie te verbeteren en de productiviteit van gewassen te verbeteren6,7.

Genetische transformatie is een belangrijk instrument voor fundamenteel onderzoek en commerciële landbouw, omdat het de introductie van vreemde genen of manipulatie van endogene genen in gewasplanten mogelijk maakt, en resulteert in het genereren van genetisch gemodificeerde lijnen. Een passend transformatieprotocol kan helpen om genetische en moleculaire biologiestudies te versnellen voor een fundamenteel begrip van genregulatie8. Bij bacteriën vindt genetische transformatie op natuurlijke wijze plaats; echter, in planten, het wordt kunstmatig uitgevoerd met behulp van moleculaire biologie technieken9,10. Agrobacterium tumefaciens is een door de bodem overgedragen, Gram-negatieve bacterie die kroongalziekte in planten veroorzaakt door T-DNA, een gebied van zijn Ti plasmid, via een type IV-afscheidingssysteem11,12over te brengen. In planten wordt A. tumefaciens-gemedieerdetransformatie beschouwd als een wijdverbreide methode voor genmodificatie omdat het leidt tot stabiele en lage integratie van het kopienummer van T-DNA in het gastheergenoom13. Transgene rijst werd voor het eerst gegenereerd door Agrobacterium-gemedieerdegen transformatie in het midden van de jaren 1990 in de japonica cultivar14. Met behulp van dit protocol werden verschillende transgene lijnen verkregen binnen een periode van 4 maanden met een transformatie-efficiëntie van 10%-30%. De studie gaf aan dat er twee kritieke stappen zijn voor de succesvolle transformatie: een daarvan is de inductie van embryoneieke callus uit volwassen zaden en een andere is de toevoeging van acetosyringone, een fenolische verbinding, aan de bacteriële cultuur tijdens de co-teelt, wat een hogere transformatie-efficiëntie in planten14,15mogelijk maakt . Dit protocol is op grote schaal gebruikt met kleine wijzigingen in japonica16,17,18,19 evenals andere cultivars zoals indica20,21,22,23 en tropische japonica24,25. Inderdaad, meer dan 80% van de artikelen waarin rijsttransformatie wordt beschreven, gebruikt Agrobacterium-gemedieerdegentransformatie als hulpmiddel13. Tot op heden zijn verschillende protocollen voor genetische transformatie ontwikkeld met behulp van rijstzaad als uitgangsmateriaal voor callusinductie16,17,18,19. Er is echter weinig bekend over jonge bloeiwijze als explants voor de productie van kalelt. Over het algemeen is het belangrijk om een snel, reproduceerbaar en efficiënt protocol voor gentransformatie en regeneratie vast te stellen voor functionele genomics en studies over gewasverbetering.

In de afgelopen jaren heeft de vooruitgang van crispr-Cas9-technologie geresulteerd in een nauwkeurig genoombewerkingsmechanisme om de genfunctie te begrijpen en agronomisch belangrijke verbeteringen te leveren voor plantenveredeling26,27. CRISPR biedt ook een aanzienlijke belofte voor de manipulatie van mannelijke reproductieve ontwikkeling en hybride productie. In deze studie gebruikten we een gen knock-out systeem met crispr-Cas9 technologie en koppelden het aan een efficiënt rijstgentransformatieprotocol met behulp van jonge bloeiwijzen als explants, waardoor stabiele mannelijke steriele lijnen werden gemaakt voor de studie van reproductieve ontwikkeling.

Protocol

1. sgRNA-CAS9 plantenexpressie vectorbouw en Agrobacterium-gemedieerdetransformatie Target een mannelijk steriel gen OsABCG15 in rijst volgens de gepubliceerde literatuur28. Ontwerp sgRNA voor de beoogde site gelegen tussen 106-125 bp in de tweede exon van OsABCG15 (figuur 1). Gebruik T4 polynucleotide kinase om de sgRNA oligos (sgR-OsABCG15-F: 5’TGGCAAGCACACACACACACACACCTCAAGGGGAT3′ en 5’sgR-OsABCG15-R: AAACATC…

Representative Results

Hier wordt aangetoond dat het gebruik van genbewerkingstechnologie is om een mannelijke steriele lijn te creëren voor toekomstig onderzoek door Agrobacterium-gemedieerdegenetische transformatie in rijst. Om de mannelijke steriele lijn van osabcg15te creëren, werd CRISPR-CAS9-gemedieerde mutagenesis gebruikt voor binaire vectorbouw. De sgRNA werd aangedreven door de OsU3 promotor, terwijl de expressie cassette van hSpCas9 werd aangedreven door de dubbele 35S promotor, en de middelste vector werd geasse…

Discussion

Kunstmatige geniale mannelijke steriele mutanten worden traditioneel gegenereerd door willekeurige fysische, chemische of biologische mutagenese. Hoewel dit krachtige technieken zijn, slaagt hun willekeurige aard er niet in om op de enorme hoeveelheid moderne genomische kennis te kapitaliseren die het potentieel heeft om op maat gemaakte verbeteringen in moleculaire veredeling32te leveren. Het CRISPR-Cas9-systeem wordt veel gebruikt in planten vanwege de eenvoudige en betaalbare middelen om DNA<su…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

De auteurs willen Xiaofei Chen erkennen voor het verstrekken van de jonge rijstbloeseseiten en hulp bij het maken van de rijstweefsel cultuur medium. Dit werk werd ondersteund door de National Natural Science Foundation of China (31900611).

Materials

1-Naphthaleneacetic acid Sigma-Aldrich N0640
2,4-Dichlorophenoxyacetic Acid Sigma-Aldrich D7299
6-Benzylaminopurine (6-BA) Sigma-Aldrich B3408
Acetosyringone Sigma-Aldrich D134406
Agar Sinopharm Chemical Reagent Co., Ltd 10000561
Ammonium sulfate Sinopharm Chemical Reagent Co., Ltd 10002918
Aneurine hydrochloride Sigma-Aldrich T4625
Anhydrous ethanol Sinopharm Chemical Reagent Co., Ltd 10009218
Bacteriological peptone Sangon Biotech A100636
Beef extract Sangon Biotech A600114
Boric acid Sinopharm Chemical Reagent Co., Ltd 10004808
Calcium chloride dihydrate Sinopharm Chemical Reagent Co., Ltd 20011160
Casein acid hydrolysate Beijing XMJ Scientific Co., Ltd C184
Cobalt(Ⅱ) chloride hexahydrate Sinopharm Chemical Reagent Co., Ltd 10007216
Copper(Ⅱ) sulfate pentahydrate Sinopharm Chemical Reagent Co., Ltd 10008218
D(+)-Glucose anhydrous Sinopharm Chemical Reagent Co., Ltd 63005518
D-sorbitol Sinopharm Chemical Reagent Co., Ltd 63011037
EDTA, Disodium Salt, Dihydrate Sigma-Aldrich E5134
EOS Digital SLR and Compact System Cameras Canon EOS 700D
Formaldehyde Sinopharm Chemical Reagent Co., Ltd 10010018
Fully Automated Rotary Microtome Leica Biosystems Leica RM 2265
Glacial acetic acid Sinopharm Chemical Reagent Co., Ltd 10000208
Glycine Sinopharm Chemical Reagent Co., Ltd 62011516
Hygromycin Beijing XMJ Scientific Co., Ltd H370
Inositol Sinopharm Chemical Reagent Co., Ltd 63007738
Iodine Sinopharm Chemical Reagent Co., Ltd 10011517
Iron(Ⅱ) sulfate heptahydrate Sinopharm Chemical Reagent Co., Ltd 10012116
Kanamycine Beijing XMJ Scientific Co., Ltd K378
Kinetin Sigma-Aldrich K0753
L-Arginine Sinopharm Chemical Reagent Co., Ltd 62004034
L-Aspartic acid Sinopharm Chemical Reagent Co., Ltd 62004736
L-Glutamine Beijing XMJ Scientific Co., Ltd G229
L-proline Beijing XMJ Scientific Co., Ltd P698
Magnesium sulfate heptahydrate Sinopharm Chemical Reagent Co., Ltd 10013018
Manganese sulfate monohydrate Sinopharm Chemical Reagent Co., Ltd 10013418
Microscopes NIKON Eclipse 80i
MS Phytotech M519
Nicotinic acid Sigma-Aldrich N0765
Phytagel Sigma-Aldrich P8169
Potassium chloride Sinopharm Chemical Reagent Co., Ltd 10016308
Potassium dihydrogen phosphate Sinopharm Chemical Reagent Co., Ltd 10017608
Potassium iodide Sinopharm Chemical Reagent Co., Ltd 10017160
Potassium nitrate Sinopharm Chemical Reagent Co., Ltd 1001721933
Pyridoxine Hydrochloride (B6) Sigma-Aldrich 47862
Rifampicin Beijing XMJ Scientific Co., Ltd R501
Sodium hydroxide Sinopharm Chemical Reagent Co., Ltd 10019718
Sodium molybdate dihydrate Sinopharm Chemical Reagent Co., Ltd 10019816
Stereo microscopes Leica Microsystems Leica M205 A
Sucrose Sinopharm Chemical Reagent Co., Ltd 10021418
Technovit embedding Kits 7100 Heraeus Teknovi, Germany 14653
Timentin Beijing XMJ Scientific Co., Ltd T869
Toluidine Blue O Sigma-Aldrich T3260
Water bath for paraffin sections Leica Biosystems Leica HI1210
Yeast extract Sangon Biotech A515245
Zinc sulfate heptahydrate Sinopharm Chemical Reagent Co., Ltd 10024018

References

  1. Izawa, T., Shimamoto, K. Becoming a model plant: The importance of rice to plant science. Trends in Plant Science. 1 (3), 95-99 (1996).
  2. Shimamoto, K., Kyozuka, J. Rice as a model for comparative genomics of plants. Annual Review of Plant Biology. 53 (1), 399-419 (2002).
  3. Selva, C., et al. Hybrid breeding in wheat: how shaping floral biology can offer new perspectives. Functional Plant Biology. 47 (8), 675-694 (2020).
  4. Lippman, Z. B., Zamir, D. Heterosis: revisiting the magic. Trends in Genetics. 23 (2), 60-66 (2007).
  5. Zhang, D., Liang, W. Improving food security: using male fertility for hybrid seed breeding. Science. , 45-48 (2016).
  6. Masters, A., et al. Agrobacterium-Mediated Immature Embryo Transformation of Recalcitrant Maize Inbred Lines Using Morphogenic Genes. Journal of Visualized Experiments. (156), e60782 (2020).
  7. Laurenceau, R., et al. A type IV pilus mediates DNA binding during natural transformation in Streptococcus pneumoniae. PLoS Pathogens. 9 (6), 1003473 (2013).
  8. Tzfira, T., Citovsky, V. Agrobacterium-mediated genetic transformation of plants: biology and biotechnology. Current Opinion in Biotechnology. 17 (2), 147-154 (2006).
  9. Gelvin, S. B. Agrobacterium in the genomics age. Plant Physiology. 150 (4), 1665-1676 (2009).
  10. Lacroix, B., Citovsky, V. The roles of bacterial and host plant factors in Agrobacterium-mediated genetic transformation. International Journal of Developmental Biology. 57, 467-481 (2013).
  11. Hiei, Y., Komari, T. Agrobacterium-mediated transformation of rice using immature embryos or calli induced from mature seed. Nature Protocols. 3 (5), 824 (2008).
  12. Hiei, Y., Ohta, S., Komari, T., Kumashiro, T. Efficient transformation of rice (Oryza sativa L.) mediated by Agrobacterium and sequence analysis of the boundaries of the T-DNA. The Plant Journal. 6 (2), 271-282 (1994).
  13. Hiei, Y., Komari, T., Kubo, T. Transformation of rice mediated by Agrobacterium tumefaciens. Plant Molecular Biology. 35 (1-2), 205-218 (1997).
  14. Nishimura, A., Aichi, I., Matsuoka, M. A protocol for Agrobacterium-mediated transformation in rice. Nature Protocols. 1 (6), 2796 (2006).
  15. Yara, A., et al. Production of transgenic japonica rice (Oryza sativa) cultivar, Taichung 65, by the Agrobacterium-mediated method. Plant Biotechnology. 18 (4), 305-310 (2001).
  16. Cho, S. K., et al. Efficient transformation of Korean rice cultivars (Oryza sativa L.) mediated by Agrobacterium tumefaciens. Journal of Plant Biology. 41 (4), 262-268 (1998).
  17. Toki, S. Rapid and efficient Agrobacterium-mediated transformation in rice. Plant Molecular Biology Reporter. 15, 16-21 (1997).
  18. Zhang, J., Xu, R. j., Elliott, M. C., Chen, D. F. Agrobacterium-mediated transformation of elite indica and japonica rice cultivars. Molecular Biotechnology. 8 (3), 223-231 (1997).
  19. Aldemita, R. R., Hodges, T. K. Agrobacterium tumefaciens-mediated transformation of japonica and indica rice varieties. Planta. 199 (4), 612-617 (1996).
  20. Rashid, H., Yokoi, S., Toriyama, K., Hinata, K. Transgenic plant production mediated by Agrobacterium in indica rice. Plant Cell Reports. 15 (10), 727-730 (1996).
  21. Sahoo, K. K., Tripathi, A. K., Pareek, A., Sopory, S. K., Singla-Pareek, S. L. An improved protocol for efficient transformation and regeneration of diverse indica rice cultivars. Plant Methods. 7 (1), 49 (2011).
  22. Rachmawati, D., Hosaka, T., Inoue, E., Anzai, H. Agrobacterium-mediated transformation of Javanica rice cv. Rojolele. Bioscience, Biotechnology, and Biochemistry. 68 (6), 1193-1200 (2004).
  23. Dong, J., Teng, W., Buchholz, W. G., Hall, T. C. Agrobacterium-mediated transformation of Javanica rice. Molecular Breeding. 2 (3), 267-276 (1996).
  24. Bortesi, L., Fischer, R. The CRISPR/Cas9 system for plant genome editing and beyond. Biotechnology Advances. 33 (1), 41-52 (2015).
  25. Li, Q., et al. Development of japonica photo-sensitive genic male sterile rice lines by editing carbon starved anther using CRISPR/Cas9. Journal of Genetics and Genomics. 43 (6), 415 (2016).
  26. Qin, P., et al. ABCG15 encodes an ABC transporter protein, and is essential for Post-Meiotic anther and pollen exine development in rice. Plant and Cell Physiology. 54, (2013).
  27. Mao, Y., et al. Application of the CRISPR-Cas system for efficient genome engineering in plants. Molecular Plant. 6 (6), 2008-2011 (2013).
  28. Itoh, J. I., et al. Rice plant development: from zygote to spikelet. Plant and Cell Physiology. 46 (1), 23-47 (2005).
  29. Gawel, N. J., Jarret, R. L. A modified CTAB DNA extraction procedure forMusa andIpomoea. Plant Molecular Biology Reporter. 9 (3), 262-266 (1991).
  30. Wei, F. J., Droc, G., Guiderdoni, E., Hsing, Y. i. C. International Consortium of Rice Mutagenesis: resources and beyond. Rice. 6 (1), 39 (2013).
  31. Feng, Z., et al. Efficient genome editing in plants using a CRISPR/Cas system. Cell Research. 23 (10), 1229 (2013).

Play Video

Cite This Article
Xu, D., Mondol, P. C., Uzair, M., Tucker, M. R., Zhang, D. Agrobacterium-Mediated Genetic Transformation, Transgenic Production, and Its Application for the Study of Male Reproductive Development in Rice. J. Vis. Exp. (164), e61665, doi:10.3791/61665 (2020).

View Video