Summary

Beredning av pseudotypade H5-aviära influensavirus med kalciumfosfattransfektionsmetod och mätning av antikroppsneutraliserande aktivitet

Published: November 22, 2021
doi:

Summary

Här beskrivs ett protokoll för pseudovirusförpackning och mätning av antikroppsneutraliserande aktivitet.

Abstract

Sedan 1996 har A/goose/Guangdong/1/96-härstamning högpatogen aviär influensa (HPAI) H5-virus orsakat influensautbrott hos fjäderfä och vilda fåglar. Ibland faller människor också offer för det, vilket resulterar i hög dödlighet. Ändå hindras HPAI-virusforskning ofta, med tanke på att den måste hanteras inom biosäkerhetsnivå 3-laboratorier. För att ta itu med detta problem antas pseudovirus som ett alternativ till vildtypvirus i vissa experiment av H5 HPAI-studier. Pseudovirus visar sig vara de perfekta verktygen för att studera neutraliserande antikroppar mot H5 HPAI-virus. Detta protokoll beskriver procedurer och kritiska steg för H5 HPAI-pseudoviruspreparat och pseudovirusneutralisationsanalyser. Den diskuterar också felsökning, begränsning och modifieringar av dessa analyser.

Introduction

Sedan 1996 har A/goose/Guangdong/1/96-härstamning högpatogen aviär influensa (HPAI) H5-virus orsakat kontinuerliga influensautbrott hos fjäderfä och vilda fåglar, vilket står för enorma socioekonomiska förluster i den globala fjäderfäindustrin. Ibland blir människor också smittade med det, inför en hög dödlighet 1,2. HPAI-virusforskning hindras dock ofta, eftersom den inte kan hanteras utanför biosäkerhetsnivå 3-laboratorier. För att ta itu med detta problem antas pseudovirus som ett alternativ till vildtypvirus i vissa experiment av H5 HPAI-studier. Pseudovirus är tillräckligt säkra för att träna i biosäkerhetsnivå 2-laboratorier.

H5 HPAI-pseudovirus tillhör chimära virus som består av surrogatviruskärnor, lipidhöljen med ytglykoproteiner från influensavirus och reportergener. Pseudoviruskärnor härrör vanligtvis från lentiviralt humant immunbristvirus (HIV), retrovirus såsom murint leukemivirus (MLV) och vesikulärt stomatitvirus (VSV)3. Specifikt används HIV-1-förpackningssystemet i stor utsträckning för att producera influensapseudovirus, där de primära generna som tillhandahålls är gag och pol. HIV-gag-genen uttrycker kärnproteiner. Pol-genen uttrycker integras och omvänt transkriptas, vilka båda är nödvändiga för uttrycket av rapportgenen i transducerade celler. Genom att efterlikna surrogatvirusets genom omfamnas reportergenen i pseudoviruskärnan i RNA-form. Reportergenen kommer att uttrycka proteinet i värdceller. Genuttrycksnivåerna för rapportgener kan användas för att mäta pseudovirusinfektionseffektivitet 3,4. Den primära rapportören är firefly-luciferas för att mäta de relativa luminiscensenheterna (RLU) eller den relativa luciferasaktiviteten (RLA) i transducerade celler. Andra reportrar som lacZ, Gaussia och Renilla luciferase används också, bara i mindre utsträckning5.

Pseudovirus är idealiska verktyg för att studera neutraliserande antikroppar mot H5 HAPI-virus. För att mäta den neutraliserande antikroppspotensen används pseudovirusneutralisering (PN) analyser6. Hemagglutinin (HA) och neuraminidas (NA) är glykoproteiner på ytan av influensa A-virus 7,8. HA består av en globulär huvuddomän för receptorbindning och en stamdomän för membranfusion. NA-proteinet har sialidasaktiviteten för att underlätta virusfrisättning 7,8. En PN-analys kan mäta neutraliserande antikroppar riktade mot HA-proteiner. Neutraliserande antikroppar riktade mot huvud- och stamregionen av HA kan också detekteras genom virusbindning och ingångsanalyser. Jämfört med vildtypvirus har pseudovirusneutraliseringsexperiment känsligare detektionsvärden, kan hanteras säkert i ett nivå 2-biosäkerhetslaboratorium och är i allmänhet lättare att använda i praktiken.

Detta protokoll presenterar i detalj procedurerna och kritiska steg för H5 HPAI-pseudoviruspreparat och PN-analyser. Den diskuterar också felsökning, begränsning och modifieringar av dessa analyser. I denna studie användes A/Thailand/1(KAN)-1/2004(TH)-stammen från H5N1 HPAI-virus som exempel. För att erhålla immunserum som används i analyser valde detta protokoll HA-proteinet från TH-stammen som immunogen för att immunisera möss.

Protocol

Alla pseudovirusrelaterade experimentella operationer utfördes under ABSL2-tillstånd i Institut Pasteur of Shanghai Chinese Academy of Sciences (IPS, CAS). Djurförsök utfördes baserat på Institutional Animal Care and Use Committee-godkända djurprotokoll från IPS, CAS. 1. Pseudovirusförpackning med kalciumfosfattransfektion Gör encellssuspensioner av HEK293FT celler (9 x 105 per ml) i komplett DMEM-medium (tabell 1). Tillsätt 10 …

Representative Results

HA, NA och HIV-1 p24 proteinuttryck av influensapseudovirusFör att identifiera virusförpackningens effektivitet upptäcktes först lager av influensapseudovirus genom HA-analys (figur 2A). HA-enheter per milliliter influensapseudovirus är 643 (tabell 3). Western-blot-analys och sandwich ELISA-analyser användes för att testa HA-, NA- och HIV-1 p24-proteinuttryck. Därefter beräknades förhållandena mellan HA-enhet och mängden gag p24 för pseudovi…

Discussion

HEK293FT celler används vanligtvis som förpackningsceller för att producera pseudovirus. Regelbunden mykoplasmadetektion är nödvändig under cellodlingen. Mykoplasmakontaminering kan drastiskt minska pseudovirusutbytet och ibland nära noll. Jämfört med andra föroreningar leder mykoplasmaföroreningar inte till pH-värdeförändringar eller grumlighet i cellodlingsmediet. Även en hög koncentration av mykoplasma är inte synlig med blotta ögon eller under ett mikroskop. Tre populära metoder för mykoplasmadete…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Detta arbete stöddes av forskningsbidragen från Innovation Capacity Building Project i Jiangsu-provinsen (BM2020019), Shenzhen Scientific and Technological Project (nr. JSGG20200225150702770), Strategic Priority Research Program of the Chinese Academy of Sciences (XDB29030103), Guangdong Scientific and Technological Project (nr 2020B1111340076) och Shenzhen Bay Laboratory Open Research Program (nr. SZBL202002271003).

Materials

1% Chiken Erythrocyte Bio-channel BC-RBC-C001 Reagent
96-well cell culture plates (flat-bottom) Thermo fisher scientific 167008 consumable material
96-well cell culture plates (round-bottom) Thermo fisher scientific 163320 consumable material
Allegra X-15R Beckman coulter Equipment/Centrifuge
BD Insulin Syringes BD 324910 consumable material
Calcium Chloride Anhydrous AMRESCO 1B1110-500G Reagent
chloroquine diphosphate Selleck S4157 Reagent
Dulbecco’s Modified Eagle Medium (DMEM) Gibco 12100-046 Reagent
Fetal Bovine Serum Gibco 16000-044 Reagent
HEK293FT Gibco R700-07 Cell line
HEPES FREE ACID AMRESCO 0511-250G Reagent
HIV-1 p24 Antigen ELISA ZeptoMetrix 801111 Reagent kit
Luciferase Assay System Freezer Pack Promega E4530 Reagent kit
MDCK.1 ATCC CRL-2935 Cell line
Microcentrifuge Tubes 1.5 mL Thermo fisher scientific 509-GRD-Q consumable material
Nunc Conical Centrifuge Tubes 15 mL Thermo fisher scientific 339650 consumable material
Nunc Conical Centrifuge Tubes 50 mL Thermo fisher scientific 339652 consumable material
Nunc EasYFlask 75 cm2 Thermo fisher scientific 156499 consumable material
Penicillin-Streptomycin Gibco 15140-122 Reagent
Pipette Tips (10 μL) Thermo fisher scientific TF102-10-Q consumable material
Pipette Tips (100 μL) Thermo fisher scientific TF113-100-Q consumable material
Pipette Tips (1000 μL) Thermo fisher scientific TF112-1000-Q consumable material
Serological pipets (5 mL) Thermo fisher scientific 170355N consumable material
Serological pipets (10 mL) Thermo fisher scientific 170356N consumable material
Trypsin/EDTA Gibco 25200-072 Reagent
Varioskan Flash Thermo fisher scientific Equipment/Microplate reader
Water Jacket Incubator Thermo fisher scientific 3111 Equipment/Cell incubator
Pentobarbital sodium salt Sigma 57-33-0 Reagent

References

  1. Wang, G., et al. DNA prime and virus-like particle boost from a single H5N1 strain elicits broadly neutralizing antibody responses against head region of h5 hemagglutinin. The Journal of Infectious Diseases. 209 (5), 676-685 (2014).
  2. Wang, G., Yin, R., Zhou, P., Ding, Z. Combination of the immunization with the sequence close to the consensus sequence and two DNA prime plus one VLP boost generate H5 hemagglutinin specific broad neutralizing antibodies. Plos One. 12 (5), 0176854 (2017).
  3. Li, Q., Liu, Q., Huang, W., Li, X., Wang, Y. Current status on the development of pseudoviruses for enveloped viruses. Reviews in Medical Virology. 28 (1), 1963 (2018).
  4. Duvergé, A., Negroni, M. Pseudotyping lentiviral vectors: When the clothes make the virus. Viruses. 12 (11), 1311 (2020).
  5. Carnell, G. W., Ferrara, F., Grehan, K., Thompson, C. P., Temperton, N. J. Pseudotype-based neutralization assays for influenza: A systematic analysis. Frontiers in Immunology. 6 (161), (2015).
  6. Trombetta, C., Perini, D., Mather, S., Temperton, N., Montomoli, E. Overview of serological techniques for influenza vaccine evaluation: Past, present and future. Vaccines. 2 (4), 707-734 (2014).
  7. Wei, C. J., et al. Next-generation influenza vaccines: opportunities and challenges. Nature Reviews Drug Discovery. 19 (4), 239-252 (2020).
  8. Krammer, F., et al. Influenza. Nature Reviews Disease Primers. 4 (3), (2018).
  9. Wei, C. J., et al. Induction of broadly neutralizing H1N1 influenza antibodies by vaccination. Science. 27 (329), 1060-1064 (2010).
  10. Chernov, V. M., Chernova, O. A., Sanchez-Vega, J. T., Kolpakov, A. I., Ilinskaya, O. N. Mycoplasma contamination of cell cultures vesicular traffic in bacteria and control over infectious agents. Acta Naturae. 6 (3), 41-51 (2014).
  11. Michael, R. G., Joseph, S. . Molecular Cloning: A Laboratory Manual (Fourth Edition). , (2012).
  12. Kumar, P., Nagarajan, A., Uchil, P. D. Transfection of mammalian cells with calcium phosphate-DNA coprecipitates. Cold Spring Harbor Protocols. 2019 (10), (2019).
  13. Robert, E. K., Chen, C. A., Okayama, H., John, K. R. Calcium phosphate transfection. Current Protocols in Molecular Biology. 9, (2003).
  14. Robert, E. K., Chen, C. A., Okayama, H., John, K. R. Transfection of DNA into eukaryotic cells. Current Protocols in Molecular Biology. 9, 11-19 (1996).
  15. Kachkin, D. V., Khorolskaya, J. I., Ivanova, J. S., Rubel, A. A. An efficient method for isolation of plasmid DNA for transfection of mammalian cell cultures. Methods and Protocols. 3 (4), 69 (2020).
  16. . Luciferase assay system Available from: https://www.promega.com.cn/products/luciferase-assays/reporter-assays/luciferase-assay-system (2021)
  17. . Corning 96-Well Solid Black or White Polystyrene Microplates Available from: https://www.fishersci.com/shop/products/costar-96-well-black-white-solid-plates (2021)
check_url/62626?article_type=t

Play Video

Cite This Article
Chang, X., Zhou, K., Liu, Y., Duan, L., Zhang, L., Zhang, G., Wang, H., Wang, G. Preparation of Pseudo-Typed H5 Avian Influenza Viruses with Calcium Phosphate Transfection Method and Measurement of Antibody Neutralizing Activity. J. Vis. Exp. (177), e62626, doi:10.3791/62626 (2021).

View Video