Summary

Merking av ekstracellulære vesicles for overvåking av migrasjon og opptak i bruskutløp

Published: October 04, 2021
doi:

Summary

Her presenterer vi en protokoll for å merke blodplater lysate-avledede ekstracellulære vesikler for å overvåke deres migrasjon og opptak i bruskutløp som brukes som modell for slitasjegikt.

Abstract

Ekstracellulære vesicles (ELBILER) brukes i forskjellige studier for å bevise sitt potensial som en cellefri behandling på grunn av deres last avledet fra deres cellulære kilde, for eksempel blodplatelysat (PL). Når elbiler brukes som behandling, forventes det at de kommer inn i målcellene og påvirker et svar fra disse. I denne forskningen har PL-avledede elbiler blitt studert som en cellefri behandling for slitasjegikt (OA). Dermed ble det satt opp en metode for å merke elbiler og teste opptaket på bruskutløp. PL-avledede elbiler er merket med det lipofile fargestoffet PKH26, vaskes to ganger gjennom en kolonne, og testes deretter i en in vitro-betennelsesdrevet OA-modell i 5 timer etter partikkel kvantifisering ved nanopartikkelsporingsanalyse (NTA). Hver time er bruskutløp faste, paraffinerte, kuttet i 6 μm seksjoner for å montere på lysbilder, og observeres under et konfokalt mikroskop. Dette gjør det mulig å verifisere om elbiler kommer inn i målcellene (kondrocytter) i denne perioden og analyserer deres direkte effekt.

Introduction

Artikulær degenerativ sykdom som innebærer en progressiv og irreversibel betennelse og ødeleggelse av den ekstracellulære matrisen til leddbrusk1. Selv om ulike former for leddgikt har mange behandlinger2,3,4, disse er begrenset av deres bivirkninger og begrenset effekt. Vevsteknikksteknikker ved hjelp av autolog kondrocyttimplantasjon brukes rutinemessig til regenerativ behandling av skadet brusk i tidlig OA brusk lesjoner4. Cellebaserte terapier er begrenset hovedsakelig på grunn av det begrensede antallet fenotypisk stabile kondrocytter eller kondroprogenitorer som er i stand til effektivt å reparere brusk3. Derfor er utviklingen av nye terapeutiske strategier for å forhindre sykdomsprogresjon og regenerere store bruskskader av avgjørende betydning.

Ekstracellulære vesicles (ELBILER) har blitt foreslått som en behandling for OA av forskjellige forfattere5,6. Elbiler er membranøse organer utskilt av de fleste celletyper, er involvert i intercellulær signalering, og har vist seg å utøve stamcellers terapeutiske effekter7,8,9, som de nylig har fremkalt interesse for regenerativ medisin10. ELBILER avledet fra mesenchymale stromale celler (MSCer) er de viktigste terapeutiske ELBIL-ene som undersøkes for OA, selv om andre leddrelaterte celler har blitt brukt som EV-kilder, for eksempel kondroprogenitorer eller immunceller11,12.

Blodplatekonsentrater, som blodplatelysater (PLs), brukes til å forbedre sårheling i forskjellige skader, for eksempel hornhinnensår13,14,15 eller i regenerering av senervev16, på grunn av hypotesen om at EV-komponenten av blodplatekonsentrater kan være ansvarlig for disse effektene17 . Noen studier relatert til leddrelaterte sykdommer bruker blodplaterette-avledede elbiler (PL-elbiler) som behandling for å forbedre osteoarthritiske tilstander. PL-ELBILER forbedrer kondrocyttproliferasjon og cellemigrasjon ved å aktivere Wnt / β-catenin-banen18, fremme uttrykket av kondrogene markører i osteoarthritic kondrocytter19, eller vise høyere nivåer av kondrogene proteiner og færre tissulære abnormiteter hos osteoarthritic kaniner behandlet med PL-EVs18.

Elbiler inneholder proteiner, lipider og nukleinsyrer som frigjøres til målcellen, og etablerer celle-til-celle-kommunikasjon, som er hovedfunksjonen relatert til deres terapeutiske applikasjoner20. Effektene av elbiler avhenger av deres rekkeviddeceller og påfølgende lastfrigjøring. Denne effekten kan bekreftes indirekte av endringer forårsaket i celler, for eksempel metabolsk aktivitet eller genuttrykksmodifisering. Disse metodene tillater imidlertid ikke visualisering av hvordan elbiler når celler for å utøve sin funksjon. Dermed presenterer dette papiret en metode for å merke disse PL-avledede ELBIL-ene som skal brukes som behandling for betennelsesdrevne OA-bruskutløp. Konfokal mikroskopi ble brukt til å overvåke EV-opptak og progresjon til kondrocyttene som er tilstede i eksplantene i et tidsforløp på 5 timer.

Protocol

MERK: Bruskutløp ble hentet fra IdISBa Biobank (IB 1995/12 BIO) i samsvar med institusjonelle retningslinjer etter etisk godkjenning av prosjektet av CEI-IB (IB 3656118 PI). 1. Kolonne forberedelse Likevektskolonner etter produsentens instruksjoner eller som følger: Fjern kolonnehetten og likevekt kolonnen. Fjern lagringsbufferen ved elution. Vask kolonnen 3 ganger med 2,5 ml fosfatbufret saltvann (PBS). Under hver vask, vent til kolonnen absorberer hele volumet….

Representative Results

En skjematisk oversikt over EV-merking og opptaksovervåking vises i figur 1. Partikkelkonsentrasjonen og EV-størrelsen som NTA har oppdaget i tabell 1, viser at EV-konsentrasjonen reduseres under prosessen på grunn av rensetrinnet som utføres to ganger etter merking med kolonnen. Mengden oppnådd er imidlertid i det optimale spekteret av antall partikler som skal brukes til behandling. Denne partikkelkonsentrasjonen brukes til å beregne volumet av PKH-PL-EV og kontroll …

Discussion

EV-avbildning bidrar til å forstå EV-egenskaper, for eksempel frigjørings- og opptaksmekanismer. Deres bildebehandling tillater overvåking av deres biodistribusjon og karakterisering av deres farmakokinetiske egenskaper som narkotikakjøretøy. Imidlertid kan EV-bildebehandling og sporing være vanskelig på grunn av deres små størrelser, selv om mange bildeenheter og merkingsteknikker er utviklet for å hjelpe forskere med å overvåke ELBILER under in vitro- og in vivo-forhold

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Denne forskningen ble finansiert av Instituto de Salud Carlos III, Ministerio de Economía y Competitividad, finansiert av ESF European Social Fund og ERDF European Regional Development Fund (MS16/00124; CP16/00124); av PROGRAMA JUNIOR del proyecto TALENT PLUS, construyendo SALUD, generando VALOR (JUNIOR01/18), finansiert av den bærekraftige turistskatten på Balearene; av Direcció General d’Investigació, Conselleria d’Investigació, Govern Balear (FPI/2046/2017); av FOLIUM postdoktorprogram (FOLIUM 17/01) innenfor FUTURMed, finansiert til 50% av den bærekraftige turistskatten på Balearene og på 50% av ESF; og av Comissio de Docencia i Investigacio de la Fundacio Banc de Sang i Teixits de les Illes Balears (CDI21/03).

Materials

Material
1.5 mL Centrifuge tube SPL life sciences PLC60015
1 mL Syringe BD Plastipak BD 303174
2-Propanol (Isopropanol) Panreac AppliChem 1.310.901.211 Prepared at 20% with Milli-Q water
96-well culture plate SPL life sciences PLC30096
Absolute ethanol Pharmpur Scharlab ET0006005P Used to prepare 96% and 75% ethanol with Milli-Q water
Biopsy Punch with plunger 3 mm Scandidact MTP-33-32
Bovine serum Albumin (BSA) Sigma-Aldrich A7030 Prepared at 5% with PBS
Cartilage explants IdISBa Biobank
Concentrating tube 15 mL Nanosep 100 kD Omega Pall MCP100C41
Concentrating tube 500 µL Nanosep 100 kD Omega Pall OD003C33
Cover glass 24 x 60 mm Deltalab D102460
DMEM-F12 -GlutaMAX medium Biowest L0092
Dulbecco's PBS (1x) Capricorn Scientific PBS-1A
Embedded paraffin tissue blocks IdISBa Biobank Fee for service
Exo-spin mini-HD columns Cell guidance systems EX05
Feather S35 Microtome Blade Feather 43037
Filtropur S 0.2 µm syringe filter Sarstedt 83.1826.001
Fluoroshield with DAPI Sigma-Aldrich F-6057
Oncostatin M Human Sigma-Aldrich O9635-10UG Prepare a stock solution to a final concentration of 0.1 µg/µL diluten in PBS-0.1% BSA
Paraformaldehyde Sigma-Aldrich 8.18715.1000 Prepared at 4% with PBS and stored at 4 °C
Penicillin-Streptomycin Solution 100x Biowest L0022
PKH26 Red Fluorescent Cell Linker Kit for General Cell Membrane Labeling Sigma-Aldrich MINI26 PKH26 and Dliuent C included
Sodium citrate dihydrate Scharlab SO019911000
Superfrost Plus Microscope Slides Thermo Scientific J1800AMNZ
TNFα R&D systems 210-TA-005 Prepare a stock solution to a final concentration of 0.01 µg/µL diluted in PBS-0.1% BSA
Triton X-100 Sigma-Aldrich T8787 Used to prepare a 0.1% Triton-0.1% sodium citrate solution with Milli-Q water
Xylene Scharlab XI0050005P
Equipment
Centrifuge 5430 R Eppendorf 5428000210 F-45-48-11 rotor
NanoSight NS300 Malvern NS300 Device with embedded laser at λ= 532 nm and camera sCMOS
Shandon Finesse 325 Manual Microtome Thermo Scientific™ A78100101
TCS-SPE confocal microscope Leica Microsystems 5200000271

References

  1. Sutton, S., et al. The contribution of the synovium, synovial derived inflammatory cytokines and neuropeptides to the pathogenesis of osteoarthritis. The Veterinary Journal. 179 (1), 10-24 (2009).
  2. Zylińska, B., Silmanowicz, P., Sobczyńska-Rak, A., Jarosz, &. #. 3. 2. 1. ;., Szponder, T. Treatment of articular cartilage defects: Focus on tissue engineering. In Vivo. 32 (6), 1289-1300 (2018).
  3. Mobasheri, A., Kalamegam, G., Musumeci, G., Batt, M. E. Chondrocyte and mesenchymal stem cell-based therapies for cartilage repair in osteoarthritis and related orthopaedic conditions. Maturitas. 78 (3), 188-198 (2014).
  4. Ringe, J., Burmester, G. R., Sittinger, M. Regenerative medicine in rheumatic disease-progress in tissue engineering. Nature Reviews Rheumatology. 8 (8), 493-498 (2012).
  5. Ringe, J., Burmester, G. R., Sittinger, M. Regenerative medicine in rheumatic disease-progress in tissue engineering. Nature Reviews Rheumatology. 8 (8), 493-498 (2012).
  6. Burke, J., et al. et al.Therapeutic potential of mesenchymal stem cell based therapy for osteoarthritis. Clinical and Translational Medicine. 5 (1), 27 (2016).
  7. Doeppner, T. R., et al. Extracellular vesicles improve post-stroke neuroregeneration and prevent postischemic immunosuppression. Stem Cells Translational Medicine. 4 (10), 1131-1143 (2015).
  8. Bruno, S., et al. Mesenchymal stem cell-derived microvesicles protect against acute tubular injury. Journal of the American Society of Nephrology. 20 (5), 1053-1067 (2009).
  9. Bruno, S., Camussi, G. Role of mesenchymal stem cell-derived microvesicles in tissue repair. Pediatric Nephrology. 28 (12), 2249-2254 (2013).
  10. Théry, C. Exosomes: secreted vesicles and intercellular communications. F1000 Biology Reports. 3, 15 (2011).
  11. D’Arrigo, D., et al. Secretome and extracellular vesicles as new biological therapies for knee osteoarthritis: a systematic review. Journal of Clinical Medicine. 8 (11), 1867 (2019).
  12. Ryan, S. T., et al. Extracellular vesicles from mesenchymal stromal cells for the treatment of inflammation-related conditions. International Journal of Molecular Sciences. 22 (6), 1-34 (2021).
  13. El Backly, R., et al. Platelet lysate induces in vitro wound healing of human keratinocytes associated with a strong proinflammatory response. Tissue Engineering. Part A. 17 (13-14), 1787-1800 (2011).
  14. Yuta, K., et al. Graefe’s archive for clinical and experimental ophthalmology outcomes of phacoemulsification in patients with chronic ocular graft-versus-host disease. Bone Marrow Transplantation. 45 (3), 479-483 (2013).
  15. Del Bue, M., et al. Platelet lysate promotes in vitro proliferation of equine mesenchymal stem cells and tenocytes. Veterinary Research Communications. 31, 289-292 (2007).
  16. Klatte-Schulz, F., et al. Comparative analysis of different platelet lysates and platelet rich preparations to stimulate tendon cell biology: an in vitro study. International Journal of Molecular Sciences. 19 (1), 212 (2018).
  17. Headland, S. E., et al. Neutrophil-derived microvesicles enter cartilage and protect the joint in inflammatory arthritis. Science Translational Medicine. 7 (315), 1-13 (2015).
  18. Liu, X., et al. Exosomes derived from platelet-rich plasma present a novel potential in alleviating knee osteoarthritis by promoting proliferation and inhibiting apoptosis of chondrocyte via Wnt/β-catenin signaling pathway. Journal of Orthopaedic Surgery and Research. 14 (1), 470 (2019).
  19. Otahal, A., et al. Characterization and chondroprotective effects of extracellular vesicles from plasma- and serum-based autologous blood-derived products for osteoarthritis therapy. Frontiers in Bioengineering and Biotechnology. 8 (1), 584050 (2020).
  20. Penfornis, P., Vallabhaneni, K. C., Whitt, J., Pochampally, R. Extracellular vesicles as carriers of microRNA, proteins and lipids in tumor microenvironment. International Journal of Cancer. 138 (1), 14-21 (2016).
  21. Ortega, F. G., et al. Interfering with endolysosomal trafficking enhances release of bioactive exosomes. Nanomedicine: Nanotechnology, Biology, and Medicine. 20, 102014 (2019).
  22. de Miguel Pérez, D., et al. Extracellular vesicle-miRNAs as liquid biopsy biomarkers for disease identification and prognosis in metastatic colorectal cancer patients. Scientific Reports. 10 (1), 1-13 (2020).
  23. Morelli, A. E., et al. Endocytosis, intracellular sorting, and processing of exosomes by dendritic cells. Blood. 104 (10), 3257-3266 (2004).
  24. Feng, D., et al. Cellular internalization of exosomes occurs through phagocytosis. Traffic. 11 (5), 675-687 (2010).
  25. Chuo, S. T. Y., Chien, J. C. Y., Lai, C. P. K. Imaging extracellular vesicles: Current and emerging methods. Journal of Biomedical Science. 25, 91 (2018).
  26. Rice, B. W., Cable, M. D., Nelson, M. B. In vivo imaging of light-emitting probes. Journal of Biomedical Optics. 6 (4), 432 (2001).
  27. Lai, C. P., et al. Visualization and tracking of tumour extracellular vesicle delivery and RNA translation using multiplexed reporters. Nature Communications. 6, 7029 (2015).
  28. Takahashi, Y., et al. Visualization and in vivo tracking of the exosomes of murine melanoma B16-BL6 cells in mice after intravenous injection. Journal of Biotechnology. 165 (2), 77-84 (2013).
  29. Askenasy, N., Farkas, D. L. Optical imaging of PKH-labeled hematopoietic cells in recipient bone marrow in vivo. Stem Cells. 20 (6), 501-513 (2002).
  30. Tamura, R., Uemoto, S., Tabata, Y. Immunosuppressive effect of mesenchymal stem cell-derived exosomes on a concanavalin A-induced liver injury model. Inflammation and Regeneration. 36, 26 (2016).
  31. Deddens, J. C., et al. Circulating extracellular vesicles contain miRNAs and are released as early biomarkers for cardiac injury. Journal of Cardiovascular Translational Research. 9 (4), 291-301 (2016).
  32. Skardelly, M., et al. Long-term benefit of human fetal neuronal progenitor cell transplantation in a clinically adapted model after traumatic brain injury. Journal of Neurotrauma. 28 (3), 401-414 (2011).
  33. Protocol guide: Exosome labeling using PKH lipophilic membrane dyes. Sigma-Aldrich Available from: https://www.sigmaaldrich.com/technical-documents/protocols/biology/cell-culture/exosome-labeling-pkh.html (2021)
  34. Dehghani, M., Gulvin, S. M., Flax, J., Gaborski, T. R. Systematic evaluation of PKH labelling on extracellular vesicle size by nanoparticle tracking analysis. Scientific Reports. 10 (1), 1-10 (2020).
  35. Morales-Kastresana, A., et al. Labeling extracellular vesicles for nanoscale flow cytometry. Scientific Reports. 7 (1), 1-10 (2017).
  36. Takov, K., Yellon, D. M., Davidson, S. M. Confounding factors in vesicle uptake studies using fluorescent lipophilic membrane dyes. Journal of Extracellular Vesicles. 6 (1), 1388731 (2017).
  37. Mortati, L., et al. In vitro study of extracellular vesicles migration in cartilage-derived osteoarthritis samples using real-time quantitative multimodal nonlinear optics imaging. Pharmaceutics. 12 (8), 1-18 (2020).

Play Video

Cite This Article
Forteza-Genestra, M. A., Antich-Rosselló, M., Ortega, F. G., Ramis-Munar, G., Calvo, J., Gayà, A., Monjo, M., Ramis, J. M. Labeling of Extracellular Vesicles for Monitoring Migration and Uptake in Cartilage Explants. J. Vis. Exp. (176), e62780, doi:10.3791/62780 (2021).

View Video