Summary

Medición cuantitativa asistida por software del grosor óseo subcondral osteoartrítico

Published: March 18, 2022
doi:

Summary

Este artículo de metodología presenta un protocolo de medición cuantitativa asistido por software para cuantificar el grosor óseo subcondral histológico en articulaciones de rodilla osteoartríticas murinas y articulaciones normales de rodilla como controles. Este protocolo es altamente sensible al engrosamiento sutil y es adecuado para detectar cambios óseos subcondrales osteoartríticos tempranos.

Abstract

El engrosamiento óseo subcondral y la esclerosis son las principales características de la osteoartritis (OA), tanto en modelos animales como en humanos. Actualmente, la gravedad del engrosamiento histológico del hueso subcondral está determinada principalmente por sistemas de clasificación semicuantitativos basados en la estimación visual. Este artículo presenta un protocolo reproducible y de fácil ejecución para medir cuantitativamente el grosor del hueso subcondral en un modelo de ratón de OA de rodilla inducida por desestabilización del menisco medial (DMM). Este protocolo utilizó el software ImageJ para cuantificar el grosor del hueso subcondral en imágenes histológicas después de definir una región de interés en el cóndilo femoral medial y la meseta tibial médica donde el engrosamiento del hueso subcondral generalmente ocurre en la OA de rodilla inducida por DMM. Se utilizaron imágenes histológicas de las articulaciones de la rodilla con un procedimiento simulado como controles. El análisis estadístico indicó que el sistema de medición ósea subcondral cuantitativa recientemente desarrollado era altamente reproducible con bajas variabilidades intra e interobservadores. Los resultados sugieren que el nuevo protocolo es más sensible al engrosamiento óseo subcondral sutil o leve que los sistemas de clasificación visual ampliamente utilizados. Este protocolo es adecuado para detectar cambios óseos subcondrales osteoartríticos tempranos y progresivos y para evaluar la eficacia in vivo de los tratamientos de OA en concierto con la clasificación del cartílago de OA.

Introduction

La artrosis (OA), caracterizada radiográficamente por el estrechamiento del espacio articular debido a la pérdida de cartílago articular, osteofitos y esclerosis del hueso subcondral (SCB), es la forma más común de artritis1,2. Aunque el papel del hueso periarticular en la etiología de la OA no se entiende completamente, generalmente se cree que la formación de osteofitos y la esclerosis SCB son los resultados del proceso de la enfermedad en lugar de factores causales, pero los cambios en la arquitectura / forma y biología del hueso periarticular pueden contribuir al desarrollo y progresión de OA3,4 . El desarrollo de un sistema de clasificación de OA preciso y fácil de ejecutar, incluida la medición de SCB, es fundamental para los estudios comparativos entre laboratorios de investigación y para evaluar la eficacia de los agentes terapéuticos diseñados para prevenir o atenuar la progresión de la OA.

SCB está construido con una placa ósea delgada en forma de cúpula y una capa subyacente de hueso trabecular. La placa SCB es la lámina cortical, que se encuentra paralela e inmediatamente debajo del cartílago calcificado. Pequeñas ramas de vasos arteriales y venosos, así como nervios, penetran a través de los canales en la placa SCB, comunicándose entre el cartílago calcificado y el hueso trabecular. El hueso trabecular subcondral contiene vasos sanguíneos, nervios sensoriales, médula ósea y es más poroso y metabólicamente activo que la placa SCB. Por lo tanto, el SCB ejerce funciones de absorción de impactos y de apoyo y también es importante para el suministro de nutrientes del cartílago y el metabolismo en las articulaciones normales5,6,7,8.

El engrosamiento de SCB (en histología) y la esclerosis (en radiografía) son las principales características distintivas de la OA y las áreas de investigación clave de la fisiopatología de la OA. La medición del engrosamiento de SCB es un componente importante de las evaluaciones histológicas de la gravedad de la OA. La microrradiografía digital previamente informada para medir la densidad mineral de SCB en roedores9, así como la medición cuantitativa de SCB basada en micro-tomografía computarizada (micro-CT) en modelos de roedores de OA10,11,12,13 han mejorado nuestra comprensión de la estructura de SCB y el papel de los cambios de SCB en la fisiopatología de OA. El área y el grosor del SCB también se han cuantificado con diapositivas histológicas utilizando un sofisticado sistema informático con un software de histomorfometría ósea específico y costoso14. Sin embargo, los sistemas de clasificación de OA semicuantitativos basados en estimaciones visuales, incluida la clasificación de espesamiento SCB, se utilizan más ampliamente que la micro-TC en la actualidad porque los sistemas de clasificación son fáciles de usar, particularmente para la detección de numerosas imágenes histológicas. Sin embargo, la mayoría de los sistemas de clasificación de OA existentes se centran principalmente en los cambios de cartílago15,16,17. Un método de clasificación de espesor de SCB osteoartrítico ampliamente utilizado que clasifica el engrosamiento de SCB como leve, moderado y severo es en gran medida subjetivo, y su confiabilidad no ha sido completamente validada15. Un protocolo de medición de espesor SCB osteoartrítico confiable y fácil de ejecutar paso a paso no está completamente desarrollado o no está estandarizado.

Este estudio tuvo como objetivo desarrollar un protocolo reproducible, sensible y fácilmente ejecutable para medir cuantitativamente el espesor de SCB en un modelo de ratón de OA. Nuestras rigurosas pruebas de medición y análisis estadístico demostraron que este protocolo de medición cuantitativa asistido por software ImageJ podría cuantificar el grosor de SCB en articulaciones de rodilla normales y osteoartríticas. El protocolo recientemente desarrollado es reproducible y más sensible a los cambios leves de SCB que los sistemas de clasificación visual ampliamente utilizados. Se puede utilizar para detectar cambios tempranos en el SCB osteoartrítico y para evaluar la eficacia in vivo de los tratamientos con OA en concierto con la clasificación del cartílago OA.

Protocol

Todos los procedimientos de animales incluidos en este protocolo fueron aprobados por el Comité Institucional de Cuidado y Uso de Animales (IACUC) en el Centro Médico de la Universidad de Kansas, en cumplimiento con todas las leyes y regulaciones federales y estatales. 1. Creación de OA de rodilla en ratones Crear un modelo de ratón de OA de rodilla mediante desestabilización quirúrgica del menisco medial (DMM) descrito por Glasson et al.18</s…

Representative Results

Comparación de reproducibilidad entre la clasificación de estimaciones visuales y la medición cuantitativa asistida por ImageJ:El grosor de SCB en 48 regiones de interés (ROI) (24 MFC y 24 MTP), definido a partir de una sección media de cada rodilla de 24 rodillas/animales, fue calificado por tres individuos independientes utilizando el esquema de puntuación visual 0-3 existente como se describe en la literatura15,23, donde 0 = engrosam…

Discussion

La medición del engrosamiento de SCB es un componente importante de las evaluaciones histológicas de la gravedad de la OA. La mayoría de los sistemas de clasificación de OA existentes se centran principalmente en los cambios de cartílago15,16,17. Un método de clasificación de espesor SCB osteoartrítico murino ampliamente utilizado que clasifica el engrosamiento SCB como leve, moderado y severo es en gran medida subjetivo…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Este trabajo fue apoyado por el Instituto Nacional de Artritis y Enfermedades Musculoesqueléticas y de la Piel de los Institutos Nacionales de Salud (NIH) bajo el número de premio R01 AR059088, el Departamento de Defensa (DoD) bajo el número de premio de investigación W81XWH-12-1-0304, y el Mary and Paul Harrington Distinguished Professorship Endowment.

Materials

Safranin-O Sigma-Aldrich S8884
Fast green Sigma-Aldrich F7252
Hematoxylin Sigma-Aldrich GHS216
Eosin Sigma-Aldrich E4382
illustrator Adobe Not applicable

References

  1. Kotlarz, H., Gunnarsson, C. L., Fang, H., Rizzo, J. A. Insurer and out-of-pocket costs of osteoarthritis in the US: evidence from national survey data. Arthritis and Rheumatology. 60 (12), 3546-3553 (2009).
  2. Buckwalter, J. A., Martin, J. A. Osteoarthritis. Advanced Drug Delivery Reviews. 58 (2), 150-167 (2006).
  3. Weinans, H., et al. Pathophysiology of peri-articular bone changes in osteoarthritis. Bone. 51 (2), 190-196 (2012).
  4. Baker-LePain, J. C., Lane, N. E. Role of bone architecture and anatomy in osteoarthritis. Bone. 51 (2), 197-203 (2012).
  5. Li, G., et al. Subchondral bone in osteoarthritis: Insight into risk factors and microstructural changes. Arthritis Research and Therapy. 15 (6), 223 (2013).
  6. Madry, H., van Dijk, C. N., Mueller-Gerbl, M. The basic science of the subchondral bone. Knee Surgery, Sports, Traumatology, Arthrosclerosis. 18 (4), 419-433 (2010).
  7. Milz, S., Putz, R. Quantitative morphology of the subchondral plate of the tibial plateau. Journal of Anatomy. 185, 103-110 (1994).
  8. Blalock, D., Miller, A., Tilley, M., Wang, J. Joint instability and osteoarthritis. Clinical Medicine Insights: Arthritis and Musculoskeleton Disorders. 8, 15-23 (2015).
  9. Waung, J. A., et al. Quantitative X-ray microradiography for high-throughput phenotyping of osteoarthritis in mice. Osteoarthritis Cartilage. 22 (10), 1396-1400 (2014).
  10. Botter, S. M., et al. Cartilage damage pattern in relation to subchondral plate thickness in a collagenase-induced model of osteoarthritis. Osteoarthritis Cartilage. 16 (4), 506-514 (2008).
  11. Nalesso, G., et al. Calcium calmodulin kinase II activity is required for cartilage homeostasis in osteoarthritis. Science Reports. 11 (1), 5682 (2021).
  12. Ding, M., Christian Danielsen, C., Hvid, I. Effects of hyaluronan on three-dimensional microarchitecture of subchondral bone tissues in guinea pig primary osteoarthrosis. Bone. 36 (3), 489-501 (2005).
  13. Kraus, V. B., Huebner, J. L., DeGroot, J., Bendele, A. The OARSI histopathology initiative – recommendations for histological assessments of osteoarthritis in the guinea pig. Osteoarthritis Cartilage. 18, 35-52 (2010).
  14. McNulty, M. A., et al. A comprehensive histological assessment of osteoarthritis lesions in Mice. Cartilage. 2 (4), 354-363 (2011).
  15. Glasson, S. S., Chambers, M. G., Van Den Berg, W. B., Little, C. B. The OARSI histopathology initiative – recommendations for histological assessments of osteoarthritis in the mouse. Osteoarthritis Cartilage. 18, 17-23 (2010).
  16. Pritzker, K. P., et al. Osteoarthritis cartilage histopathology: grading and staging. Osteoarthritis Cartilage. 14 (1), 13-29 (2006).
  17. Mankin, H. J., Dorfman, H., Lippiello, L., Zarins, A. Biochemical and metabolic abnormalities in articular cartilage from osteo-arthritic human hips. II. Correlation of morphology with biochemical and metabolic data. Journal of Bone and Joint Surgery American. 53 (3), 523-537 (1971).
  18. Glasson, S. S., Blanchet, T. J., Morris, E. A. The surgical destabilization of the medial meniscus (DMM) model of osteoarthritis in the 129/SvEv mouse. Osteoarthritis Cartilage. 15 (9), 1061-1069 (2007).
  19. Wang, J., et al. Transcription factor Nfat1 deficiency causes osteoarthritis through dysfunction of adult articular chondrocytes. Journal of Pathology. 219 (2), 163-172 (2009).
  20. Zhang, M., Lu, Q., Budden, T., Wang, J. NFAT1 protects articular cartilage against osteoarthritic degradation by directly regulating transcription of specific anabolic and catabolic genes. Bone Joint Research. 8 (2), 90-100 (2019).
  21. Zhang, M., et al. Epigenetically mediated spontaneous reduction of NFAT1 expression causes imbalanced metabolic activities of articular chondrocytes in aged mice. Osteoarthritis Cartilage. 24 (7), 1274-1283 (2016).
  22. Rodova, M., et al. Nfat1 regulates adult articular chondrocyte function through its age-dependent expression mediated by epigenetic histone methylation. Journal of Bone and Mineral Research. 26 (8), 1974-1986 (2011).
  23. Jackson, M. T., et al. Depletion of protease-activated receptor 2 but not protease-activated receptor 1 may confer protection against osteoarthritis in mice through extracartilaginous mechanisms. Arthritis and Rheumatology. 66 (12), 3337-3348 (2014).
check_url/kr/62973?article_type=t

Play Video

Cite This Article
Liu, X., Pitner, M. A., Baki, P. P., Lu, Q., Schroeppel, J. P., Wang, J. Software-Assisted Quantitative Measurement of Osteoarthritic Subchondral Bone Thickness. J. Vis. Exp. (181), e62973, doi:10.3791/62973 (2022).

View Video