La démyélinisation a lieu dans de multiples maladies du système nerveux central. Une technique fiable d’administration de médicaments in vivo est nécessaire pour remyéliniser les tests de dépistage de médicaments. Ce protocole décrit une méthode osmotique à base de pompe qui permet l’administration de médicaments à long terme directement dans le parenchyme cérébral et améliore la biodisponibilité du médicament, avec une large application dans la recherche sur la remyélinisation.
La démyélinisation a été identifiée non seulement dans la sclérose en plaques (SEP), mais aussi dans d’autres maladies du système nerveux central telles que la maladie d’Alzheimer et l’autisme. Comme les preuves suggèrent que la remyélinisation peut améliorer efficacement les symptômes de la maladie, l’accent est de plus en plus mis sur le développement de médicaments pour promouvoir le processus de régénération de la myéline. Ainsi, une technique d’administration de médicaments sélectionnable par région et fiable est nécessaire pour tester l’efficacité et la spécificité de ces médicaments in vivo. Ce protocole introduit l’implant de pompe osmotique comme nouvelle approche d’administration de médicaments dans le modèle murin de démyélinisation induite par la lysolécithine. La pompe osmotique est un petit dispositif implantable qui peut contourner la barrière hémato-encéphalique (BHE) et administrer des médicaments régulièrement et directement à des zones spécifiques du cerveau de la souris. Il peut également améliorer efficacement la biodisponibilité de médicaments tels que les peptides et les protéines avec une courte demi-vie. Par conséquent, cette méthode est d’une grande valeur pour le domaine de la recherche sur la régénération de la myéline du système nerveux central.
La pompe osmotique est un petit dispositif implantable libérant des solutions. Il peut être utilisé pour l’administration systémique lorsqu’il est implanté par voie sous-cutanée ou dans la cavité abdominale. La surface de la pompe osmotique est une membrane semi-perméable et sa face interne est une couche perméable. La pompe osmotique fonctionne en utilisant la différence de pression osmotique entre la couche osmotique et l’environnement tissulaire où la pompe est implantée. L’osmolalité élevée de la couche osmotique fait que l’eau dans le tissu s’écoule dans la couche osmotique à travers la membrane semi-perméable à la surface de la pompe. La couche osmotique dilate et comprime le réservoir flexible à l’intérieur de la pompe, déplaçant ainsi la solution du réservoir flexible à un certain rythme pendant une longue durée1. La pompe a trois volumes de réservoir différents, 100 μL, 200 μL et 2 mL, avec des débits variant de 0,11 μL / h à 10 μL / h. Selon le type de pompe sélectionné, l’appareil peut fonctionner de 1 jour à 6 semaines2. Dans ce protocole, une pompe osmotique de 100 μL avec un taux de transfert de 0,25 μL/h pouvant fonctionner pendant 14 jours est utilisée.
Dans les années 1970, la pompe osmotique avait été utilisée dans la recherche en neurosciences 3,4. Par exemple, Wei et al. ont adopté l’approche de la pompe osmotique pour injecter des peptides opioïdes dans le ventricule dans une étude sur la toxicomanie3. Après une amélioration continue, la pompe osmotique a maintenant été utilisée dans l’étude de l’administration contrôlée de milliers de médicaments, y compris les peptides, les facteurs de croissance, les médicaments addictifs, les hormones, les stéroïdes, les anticorps, etc. En outre, avec des cathéters spéciaux (kits de perfusion cérébrale) attachés, il peut être utilisé pour une perfusion ciblée à des tissus ou organes spécifiques, y compris la moelle épinière, le cerveau, la rate et le foie 5,6,7.
Dans l’étude de la remyélinisation, il a été démontré que de nombreux médicaments favorisent la régénération de la myéline in vitro, mais la plupart d’entre eux n’ont pas obtenu d’effets significatifs in vivo, peut-être en raison de l’absence d’une méthode d’administration appropriée. Les méthodes d’administration traditionnelles telles que l’injection intrapéritonéale, l’injection sous-cutanée et l’administration intragastrique ont des limites dans la biodisponibilité des médicaments. En outre, certains médicaments ont une faible perméabilité de la barrière hémato-encéphalique, ce qui compromet leur accès au parenchyme cérébral. Ensemble, ces limitations exigent une nouvelle méthode de livraison efficace. En combinaison avec les kits de perfusion cérébrale, les pompes osmotiques peuvent contourner la barrière hémato-encéphalique et administrer des médicaments directement au corps calleux, ce qui améliore efficacement la biodisponibilité des médicaments, en particulier pour certains médicaments polypeptidiques et protéiques à courte demi-vie. Par conséquent, la pompe osmotique en tant que nouvelle technique d’administration de médicaments est d’une grande valeur pour le domaine de la recherche sur la régénération de la myéline du système nerveux central. L’application de cette technique sera présentée en détail ci-dessous.
Ce protocole décrit la pompe osmotique comme une nouvelle technique d’administration de médicaments pour la recherche sur la régénération de la myéline, qui peut administrer des médicaments directement au site de traitement et permettre une administration constante de médicaments pendant une période prolongée, créant une concentration de médicament stable dans le micro-environnement du système nerveux central pendant toute la durée expérimentale. Par rapport à d’autres méthodes d’administration de …
The authors have nothing to disclose.
Ce travail a été soutenu par des subventions de la National Nature Science Foundation of China (NSFC 32070964, 31871045) à J.N. et de la Shenzhen Basic Research Foundation (JCYJ20210324121214039) à Y.S.
Anesthesia Air Pump | RWD | R510-29 | E05818-006 |
Brain Infusion kit 3 | ALZET | 0008851 | 1-3 mm |
Carprofen | Macklin | C830557-1g | 5 mg/kg every 24 h |
Erythromycin eye ointment | Along technology | YCKJ-RJ-024780 | Cover the surface of the eyeballs during anesthesia |
Erythromycin ointment | pythonbio | RG180 | |
Gas Evacuation Apparatus | RWD | R546W | E05518-002 |
L-α-Lysophosphatidylcholine | Sigma | L0906 | Dissolve at 1% with sterile PBS |
Microliter Syringe | Hamilton | 65460-05 | Syringe Series:1700, 10 µL, 33 gauge |
Micro-smotic pump model 1002 | ALZET | 0004317 | 0.25 µL per hour, 14 days |
PBS (pH = 7.3) | ORIGENE | ZLI-9061 | |
Pentobarbital sodium | Shanghai Civi | CAS NO: 57-33-0 | 150-200 mg/kg intraperitoneal injection for euthanasia |
Small Animal Anesthesia Machine | RWD | R520IE | E05807-006 M |
Stereotaxic Equipment | RWD | E06382 | |
STERI 250 sterilizer | Keller | 31101 | Rapid sterilization of surgical instruments |
Surgical sutures | Shanghai jinhuan | F504 | 5-0 |
Syringe needle (1 mL) | Shanghai KDL | 6930197811018 | 26 gauge (0.45 mm x 16 mm) |
Testing drug and solvent | Experiment dependent | N/A | |
ThermoStar Homeothermic Monitoring System | RWD | 69026 | Maintain body temperature during anesthesia |
Vetbond Tissue adhesive | 3M | 1469SB | Secure the brain infusion cannula , Adhere the skin incision |