Summary

כימות ברמה הגלובלית של שינויים פוסט-תרגומיים של היסטון במודל תרבית תאים תלת-ממדית של רקמת כבד

Published: May 05, 2022
doi:

Summary

פרוטוקול זה מתאר כיצד ניתן להשתמש במערכת תרביות תאים תלת-ממדית כדי למדל, לטפל ולנתח שינויי כרומטין במצב כמעט פיזיולוגי.

Abstract

תרביות שטוחות של תאי יונקים הן גישה נפוצה במבחנה להבנת הפיזיולוגיה של התא, אך מערכת זו מוגבלת במידול רקמות מוצקות עקב שכפול תאים מהיר באופן לא טבעי. זה מאתגר במיוחד כאשר מידול כרומטין בוגר, מכיוון שתאים המשכפלים במהירות מעורבים לעתים קרובות בשכפול DNA ויש להם אוכלוסייה פוליפלואידית הטרוגנית. להלן זרימת עבודה למידול, טיפול וניתוח של שינויים בכרומטין באמצעות מערכת תרביות תאים תלת-ממדית (3D). באמצעות פרוטוקול זה, קווי תאי קרצינומה הפטוצלולריים גדלים כספרואידים תלת-ממדיים הניתנים לשחזור באינקובטור המספק דיפוזיה פעילה של חומרים מזינים וכוחות גזירה נמוכים. הטיפול בנתרן בוטיראט ונתרן סוקסינט גרם לעלייה באצטילציה של היסטון ובסוקצינילציה, בהתאמה. עליות ברמות של אצטילציה היסטון ותמציתינילציה קשורות למצב כרומטין פתוח יותר. לאחר מכן נאספים כדוריים לבידוד גרעיני התא, שמהם מופקים חלבוני היסטון לניתוח השינויים שלאחר התרגום שלהם. ניתוח היסטון מתבצע באמצעות כרומטוגרפיה נוזלית בשילוב מקוון עם ספקטרומטריית מסה טנדם, ואחריה צינור חישובי פנימי. לבסוף, מוצגות דוגמאות לייצוג נתונים כדי לחקור את התדירות וההתרחשות של סימני היסטון קומבינטוריים.

Introduction

מאז סוף המאהה-19, מערכות תרביות תאים שימשו כמודל לחקר הצמיחה וההתפתחות של תאים מחוץ לגוף האדם 1,2. השימוש בהם הורחב גם כדי לחקור כיצד רקמות ואיברים מתפקדים בהקשרים בריאים וחוליםכאחד 1,3. תאי ההשעיה (למשל, תאי הדם) גדלים בצלחות פטרי או בצלוחיות בצורה חלקה ומתחלפת מכיוון שהם אינם מורכבים במבנים תלת-ממדיים (תלת-ממדיים) in vivo. תאים שמקורם באיברים מוצקים יכולים לגדול במערכות תרביות דו-ממדיות (דו-ממדיות) או תלת-ממדיות. בתרבית דו-ממדית, התאים גדלים בחד-שכבתית שנצמדת למשטח שטוח 2,4. מערכות תרביות תאים דו-ממדיות מאופיינות בצמיחה אקספוננציאלית ובזמן הכפלה מהיר, בדרך כלל 24 שעות עד כמה ימים5. תאים במערכות תלת-ממדיות גדלים ויוצרים אינטראקציות מורכבות בין תאים לתאים המדגימים קונגלומרטים דמויי רקמות בצורה הדוקה יותר, והם מאופיינים ביכולתם להגיע לשיווי משקל דינמי שבו זמן ההכפלה שלהם יכול להגיע לחודש או יותר5.

מוצגת במאמר זה מתודולוגיה חדשנית לגידול ספרואידים תלת-ממדיים במערכות תרביות תאים מסתובבות המדימות כוח משיכה מופחת6. זוהי נגזרת פשוטה של מערכת תרביות תאים שהוצגה על ידי נאס”א בשנות ה-90של המאה ה-20. גישה זו ממזערת את כוחות הגזירה, המתרחשים בשיטות קיימות כמו צלוחיות מסתובבות, ומגבירה את יכולת השכפול של הספרואידים6. בנוסף, הביוריאקטור המסתובב מגביר את הדיפוזיה הפעילה של חומרי המזון, וממזער היווצרות נמקית המתרחשת במערכות כמו תרבית תאים תלויה, שבהן חילופי המדיה אינם מעשיים6. בדרך זו, תאים גדלים בעיקר באין מפריע, ומאפשרים היווצרות של מאפיינים מבניים ופיזיולוגיים הקשורים לתאים הגדלים ברקמות. הפטוציטים מסוג C3A (HepG2/C3A) בתרבית באופן זה לא רק בעלי אברונים אולטרה-סטרוקטורליים, אלא גם הפיקו כמויות של ATP, אדנילט קינאז, אוריאה וכולסטרול בדומה לרמות שנצפו ב-vivo 1,2. בנוסף, תאים שגדלו במערכות תרביות תאים דו-ממדיות לעומת .3D מפגינים דפוסי ביטוי גנים שונים8. ניתוח ביטוי גנים של הפטוציטים C3A שגדלו כספרואידים תלת-ממדיים הראה כי תאים אלה ביטאו מגוון רחב של חלבונים ספציפיים לכבד, כמו גם גנים המעורבים במסלולים מרכזיים המווסתים את תפקודי הכבד8. פרסומים קודמים הדגימו את ההבדלים בין פרוטאומים של תאים הגדלים באופן אקספוננציאלי בתרבית דו-ממדית לעומת תאים בשיווי משקל דינמי בתרביות ספרואידיות תלת-ממדיות5. הבדלים אלה כוללים את חילוף החומרים התאי, אשר בתורו משפיע על המבנה, התפקוד והפיזיולוגיה של התא5. הפרוטאום של תאים שגדלו בתרבית דו-ממדית היה מועשר יותר בחלבונים שהיו מעורבים בשכפול תאים, בעוד שהפרוטאום של הספרואידים התלת-ממדיים היה מועשר יותר בתפקוד הכבד5.

קצב השכפול האיטי יותר של תאים הגדלים כספרואידים תלת-ממדיים מדגים בצורה מדויקת יותר תופעות ספציפיות הקשורות למצב כרומטין ולשינויים (לדוגמה, חיתוך היסטון9). חיתוך היסטון הוא שינוי בלתי הפיך של היסטון לאחר התרגום (PTM) הגורם לביקוע פרוטאוליטי של חלק מזנב ההיסטון N-טרמינלי. בעוד שתפקודו הביולוגי עדיין נמצא בדיון 10,11,12,13, ברור שנוכחותו בתאים ראשוניים וברקמת הכבד מבוססת על מודלים של תאי HepG2/C3A שגדלו כספרואידים, אך לא כתאים שטוחים 9. זה קריטי, שכן מצב הכרומטין והשינויים מווסתים את קריאת הדנ”א בעיקר על ידי ויסות הנגישות לגנים ובכך לביטוי שלהם14. PTMs של היסטון משפיעים על מצב הכרומטין באופן ישיר על ידי השפעה על המטען נטו של הנוקלאוזומים שבהם מורכבים היסטונים, או בעקיפין על ידי גיוס כותבי כרומטין, קוראים ומחקים14. מאות PTMs של היסטון זוהו עד כה15, מה שמחזק את ההשערה כי כרומטין מארח “קוד היסטון” המשמש את התא לפענוח דנ”א16. עם זאת, הזיהוי של מספר עצום של צירופי PTM15, והגילוי שלשילובים של PTMs היסטון יש לעתים קרובות פונקציות ביולוגיות שונות מ- PTMs הנמצאים בבידוד (למשל Fischle, et al.17), מדגישים כי נדרשת עבודה נוספת כדי לפענח את “קוד היסטון”.

נכון לעכשיו, ניתוח Histone PTM מבוסס על טכניקות המשתמשות בנוגדנים (למשל, כתמים מערביים, אימונופלואורסצנציה, או מיצוי חיסוני של כרומטין ולאחר מכן ריצוף [ChIP-seq]) או ספקטרומטריית מסה (MS). לטכניקות מבוססות נוגדנים יש רגישות גבוהה והן יכולות לספק מידע מפורט על לוקליזציה כלל-גנומית של סימני היסטון, אך לעתים קרובות הן מוגבלות בחקר PTMs או PTMs נדירים הנמצאים בשילובים 18,19,20. טרשת נפוצה מתאימה יותר לזיהוי וכימות בתפוקה גבוהה ובלתי משוחדת של שינויים בחלבונים בודדים וקיימים יחד, במיוחד חלבוני היסטון 18,19,20. מסיבות אלה, מעבדות אלה ומספר מעבדות אחרות ביצעו אופטימיזציה של צינור הטרשת הנפוצה לניתוח פפטידי היסטון (טרשת נפוצה מלמטה למעלה), זנבות היסטון שלמים (MS באמצע למטה) וחלבוני היסטון באורך מלא (MS מלמעלה למטה)21,22,23.

להלן תהליך עבודה לגידול כדוריות HepG2/C3A ולהכנתם לניתוח פפטידי היסטון (MS מלמטה למעלה) באמצעות כרומטוגרפיה ננו-נוזלית, בשילוב מקוון עם ספקטרומטריית מסות טנדם (nLC-MS/MS). גדלה תרבית תאים דו-ממדית והתאים נקטפו והועברו לביוריאקטור, שם הם יתחילו ליצור ספרואידים (איור 1). לאחר 18 יום בתרבית, הספרואידים טופלו בנתרן בוטיראט או נתרן סוקסינט כדי להגדיל את השפע היחסי של אצטילציה היסטון וסוקצינילציה. יש לציין כי ניתן לטפל בתרביות תלת-ממדיות באמצעות תרכובות גנוטוקסיות באותה מידה כמו מקבילותיהן לתרבית השטוחה; למעשה, פרסומים אחרונים מדגישים כי תגובת הטוקסיקולוגיה של תאים בתרבית תלת-ממדית דומה יותר לרקמות ראשוניות מאשר אלה בתרבית שטוחה דו-ממדית24,25. לאחר מכן נאספו תאים בנקודות זמן מוגדרות ובוצע בידוד גרעיני. לאחר מכן, היסטונים הופקו ונגזרו עם אנהידריד פרופיוני לפני ואחרי עיכול טריפסין על פי פרוטוקול שפותח לראשונה על ידי Garcia et al.26. הליך זה מייצר פפטידים בגודל המתאים להפרדה מקוונת עם כרומטוגרפיה פאזה הפוכה (C18) וזיהוי עם טרשת נפוצה. לבסוף, פפטידי היסטון זוהו וכומתו, והנתונים שנוצרו היו מיוצגים בדרכים רבות לפרשנות ביולוגית מלאה יותר.

Protocol

1. הכנת מאגרים וריאגנטים מדיית גדילת תאים (עבור תאי HepG2/C3A): הוסף סרום בקר עוברי (FBS) (10% v/v), חומצות אמינו לא חיוניות (1% v/v), תוסף L-גלוטמין (1% v/v) ופניצילין/סטרפטומיצין (0.5% v/v) למדיום הנשר המהונדס של דולבקו (DMEM, המכיל 4.5 גרם/ל’ גלוקוז). מדיית הצמיחה מאוחסנת בטמפרטורה של 4 מעלות צלזיוס למשך…

Representative Results

בפרוטוקול זה, הספרואידים HepG2/C3A טופלו ב-20 mM NaBut וב-10 mM NaSuc, שניהם השפיעו על הרמות הגלובליות של PTMs היסטון (איור 3A). לאחר מכן זוהו וכומתו PTMs של Histone ברמת השאריות הבודדות באמצעות רכישת MS/MS (איור 3B). כאשר דגימות מופעלות בשכפולים, ניתן לבצע ניתוח סטט…

Discussion

הניתוח של PTMs היסטון שונה במהותו מצינור ניתוח הפרוטאומיקה הטיפוסי. לרוב ה-PTMs של היסטון עדיין יש פונקציות ביולוגיות אניגמטיות; כתוצאה מכך, ביאורים כגון Gene Ontology או מסדי נתונים של מסלולים אינם זמינים. קיימים מספר משאבים המקשרים שינויי היסטון עם האנזים האחראי על הקטליזה שלהם או חלבונים המכילי?…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

מעבדת סידולי מכירה בהכרת תודה לקרן לחקר הלוקמיה (מענק מחקר לחוקר חדש של הוליס בראונשטיין), AFAR (פרס Sagol Network GerOmics), לדירפילד (פרס Xseed), ל-Relay Therapeutics, ל-Merck ולמשרד המנהל של NIH (1S10OD030286-01).

Materials

0.05% trypsin-EDTA solution Gibco 25300054
0.5-20 µL pipet tips BRAND 13-889-172 (Fisher Scientific)
1.5 mL microcentrifuge tubes Bio-Rad 2239480
10 µL multi-channel pipette BRAND BR7059000 (Millipore Sigma)
10 mL syringe Henke Sass Wolf 14-817-31 (Fisher Scientific) Luer lock tip, graduated to 12 mL
10, 20, 200, and 1000 µL single-channel pipettes Eppendorf 14-285-904 (Fisher Scientific)
1000 µL pipet tips Rainin 30389164
18 G syringe needle Air-Tite 14-817-100 (Fisher Scientific) 3" length, 0.05" diameter
200 µL multi-channel pipette Corning 4082
2-200 µL pipet tips BRAND Z740118 (Millipore Sigma)
24-well ultra-low attachment microplate Corning 07-200-602
75 cm2  U-shaped cell culture flask Corning 461464U Untreated, with vent cap
96-well skirted plate Axygen PCR-96-FS-C (Corning)
Acetone Fisher Scientific A949-1 Acetone should be used cold
Ammonium bicarbonate (NH4HCO3) Sigma-Aldrich A6141-25G
Ammonium hydroxide solution Fisher Scientific AC423300250
Cell culture grade water Corning 25-055-CV
ClinoReactor CelVivo 10004-12 Bioreactor for 3D cell culture
ClinoStar CelVivo N/A Clinostat CO2 incubator for 3D cell culture
Control unit CelVivo N/A Tablet for ClinoStar settings
Dulbecco's Modified Eagle's Medium (DMEM) Corning 17-205-CV 1X solution with 4.5 g/L glucose and sodium pyruvate, without L-glutamine and phenol red
Fetal bovine serum (FBS) Corning 35-010-CV
Formic acid Thermo Scientific 28905
Fume hood Mott N/A Model 7121000
Glass Pasteur pipette Fisher Scientific 13-678-8B 9", cotton-plugged, borosilicate glass, non-sterile
Glutagro supplement Corning 25-015-CI 200 mM L-ananyl-L-glutamine
Hank’s Balanced Salt Solution (HBSS) Corning 21-022-CV 1X solution without calcium, magnesium, and phenol red
HPLC grade acetonitrile Fisher Scientific A955-4
HPLC grade water Fisher Scientific W6-1
Hydrochloric acid (HCl) Fisher Scientific A481-212
Ice N/A N/A
MEM non-essential amino acids Corning 25-025-CI 100X solution
Oasis HLB resin Waters 186007549 Hydrophilic-Lipophilic-Balanced (HLB) Resin with 30µm particle size
Orbitrap Fusion Lumos Tribrid mass spectrometer Thermo Fisher Scientific IQLAAEGAAPFADBMBHQ High resolution mass spectrometer
Oro-Flex I polypropylene filter plate Orochem OF1100 96-well polypropylene filter plate w/ 10 µM PE frit
Penicillin-Streptomycin Corning 30-002-CI 100X solution
pH paper Hydrion Z111848 (Sigma-Aldrich) 0-13 pH test paper
Pipette gun Eppendorf Z666467 (Millipore Sigma)
Polymicro capillary Molex 50-110-7740 (Fisher Scientific) Flexible fused silica capillary tubing with polymide coating, 75 µM ID x 363 µM OD
Polystyrene 10 mL serological pipets, sterile Fisher Scientific 1367549
Propionic anhydride Sigma-Aldrich 240311-50G
Refrigerated centrifuge Thermo Scientific 75-217-420
Reprosil-Pur resin MSWIL R13.AQ.0003 120 Å pore size, C18-AQ phase, 3 µM bead size
Rotator Clay Adams 25477 (American Laboratory Trading) Nutator Mixer 1105
Sequencing grade modified trypsin Promega V5111
Sodium butyrate Thermo Scientific A11079
Sodium succinate dibasic Sigma-Aldrich 14160-100G
SpeedVac vacuum concentrator (1.5 mL microcentrifuge tubes) Savant 20249 (American Laboratory Trading)
SpeedVac vacuum concentrator (96-well) Thermo Scientific 15308325 Savant SPD1010
Sterile hood Thermo Scientific 1375 Class II, Type A2
Sulfuric acid (H2SO4) Fisher Scientific 02-004-375 Baker Analyzed ACS reagent
Tissue-culture treated 100 mm x 20 mm dish Fisher Scientific 08-772-23
Trichloroacetic acid (TCA) Thermo Scientific AC421451000 Resuspend 100% w/v in HPLC grade water
Trifluoroacetic acid (TFA) Fisher Scientific PI28904 Sequencing grade
Vacuum manifold 96-well Millipore MAVM0960R
Vortex Sigma-Aldrich Z258415
Water bath Fisher Scientific FSGPD10
Wide bore pipet tips 1000 µL Axygen 14-222-703 (Fisher Scientific)
Wide bore pipet tips 200 µL Axygen 14-222-730 (Fisher Scientific)

References

  1. Kapalczynska, M., et al. 2D and 3D cell cultures – a comparison of different types of cancer cell cultures. Archives of Medical Science. 14 (4), 910-919 (2018).
  2. Breslin, S., O’Driscoll, L. Three-dimensional cell culture: the missing link in drug discovery. Drug Discovery Today. 18 (5-6), 240-249 (2013).
  3. Kim, J. B. Three-dimensional tissue culture models in cancer biology. Seminars in Cancer Biology. 15 (5), 365-377 (2005).
  4. Duval, K., et al. Modeling physiological events in 2D vs. 3D cell culture. Physiology (Bethesda). 32 (4), 266-277 (2017).
  5. Wrzesinski, K., et al. The cultural divide: exponential growth in classical 2D and metabolic equilibrium in 3D environments. PLoS One. 9 (9), 106973 (2014).
  6. Wrzesinski, K., Fey, S. J. Metabolic reprogramming and the recovery of physiological functionality in 3D cultures in micro-bioreactors. Bioengineering (Basel). 5 (1), 22 (2018).
  7. Gonda, S. R., et al. Three-dimensional transgenic cell model to quantify genotoxic effects of space environment. Advances in Space Research. 27 (2), 421-430 (2001).
  8. Yamada, K. M., Cukierman, E. Modeling tissue morphogenesis and cancer in 3D. Cell. 130 (4), 601-610 (2007).
  9. Tvardovskiy, A., et al. Top-down and middle-down protein analysis reveals that intact and clipped human histones differ in post-translational modification patterns. Molecular and Cellular Proteomics. 14 (12), 3142-3153 (2015).
  10. Azad, G. K., et al. Modifying chromatin by histone tail clipping. Journal of Molecular Biology. 430 (18), 3051-3067 (2018).
  11. Kragesteen, B. K., Amit, I. Heads or tails: histone tail clipping regulates macrophage activity. Nature Immunology. 22 (6), 678-680 (2021).
  12. Dhaenens, M. Histone clipping: the punctuation in the histone code. EMBO Reports. 22 (8), 53440 (2021).
  13. Anderson, L. C., et al. Analyses of histone proteoforms using front-end electron transfer dissociation-enabled orbitrap instruments. Molecular and Cellular Proteomics. 15 (3), 975-988 (2016).
  14. Morgan, M. A. J., Shilatifard, A. Reevaluating the roles of histone-modifying enzymes and their associated chromatin modifications in transcriptional regulation. Nature Genetics. 52 (12), 1271-1281 (2020).
  15. Chan, J. C., Maze, I. Nothing is yet set in (hi)stone: novel post-translational modifications regulating chromatin function. Trends in Biochemical Sciences. 45 (10), 829-844 (2020).
  16. Jenuwein, T., Allis, C. D. Translating the histone code. Science. 293 (5532), 1074-1080 (2001).
  17. Fischle, W., et al. Molecular basis for the discrimination of repressive methyl-lysine marks in histone H3 by Polycomb and HP1 chromodomains. Genes and Development. 17 (15), 1870-1881 (2003).
  18. Onder, O., et al. Progress in epigenetic histone modification analysis by mass spectrometry for clinical investigations. Expert Review of Proteomics. 12 (5), 499-517 (2015).
  19. Sidoli, S., Cheng, L., Jensen, O. N. Proteomics in chromatin biology and epigenetics: Elucidation of post-translational modifications of histone proteins by mass spectrometry. Journal of Proteomics. 75 (12), 3419-3433 (2012).
  20. Egelhofer, T. A., et al. An assessment of histone-modification antibody quality. Nature Structural and Molecular Biology. 18 (1), 91-93 (2011).
  21. Moradian, A., et al. The top-down, middle-down, and bottom-up mass spectrometry approaches for characterization of histone variants and their post-translational modifications. Proteomics. 14 (4-5), 489-497 (2014).
  22. Zheng, Y., Huang, X., Kelleher, N. L. Epiproteomics: quantitative analysis of histone marks and codes by mass spectrometry. Current Opinion in Chemical Biology. 33, 142-150 (2016).
  23. Sidoli, S., Garcia, B. A. Middle-down proteomics: a still unexploited resource for chromatin biology. Expert Review of Proteomics. 14 (7), 617-626 (2017).
  24. Stampar, M., et al. Hepatocellular carcinoma (HepG2/C3A) cell-based 3D model for genotoxicity testing of chemicals. Science of the Total Environment. 755, 143255 (2021).
  25. Calitz, C., et al. Toxicity and anti-prolific properties of Xysmalobium undulatum water extract during short-term exposure to two-dimensional and three-dimensional spheroid cell cultures. Toxicology Mechanisms and Methods. 28 (9), 641-652 (2018).
  26. Garcia, B. A., et al. Chemical derivatization of histones for facilitated analysis by mass spectrometry. Nature Protocols. 2 (4), 933-938 (2007).
  27. Sidoli, S., et al. Sequential window acquisition of all theoretical mass spectra (SWATH) analysis for characterization and quantification of histone post-translational modifications. Molecular and Cellular Proteomics. 14 (9), 2420-2428 (2015).
  28. Sidoli, S., et al. Low resolution data-independent acquisition in an LTQ-orbitrap allows for simplified and fully untargeted analysis of histone modifications. Analytical Chemistry. 87 (22), 11448-11454 (2015).
  29. Karch, K. R., Sidoli, S., Garcia, B. A. Identification and quantification of histone PTMs using high-resolution mass spectrometry. Methods in Enzymology. 574, 3-29 (2016).
  30. Yuan, Z. F., et al. EpiProfile quantifies histone peptides with modifications by extracting retention time and intensity in high-resolution mass spectra. Molecular and Cellular Proteomics. 14 (6), 1696-1707 (2015).
  31. Yuan, Z. F., et al. EpiProfile 2.0: a computational platform for processing epi-proteomics mass spectrometry data. Journal of Proteome Research. 17 (7), 2533-2541 (2018).
  32. MacLean, B., et al. Skyline: an open source document editor for creating and analyzing targeted proteomics experiments. Bioinformatics. 26 (7), 966-968 (2010).
  33. Pino, L. K., et al. The Skyline ecosystem: Informatics for quantitative mass spectrometry proteomics. Mass Spectrometry Reviews. 39 (3), 229-244 (2020).
  34. Aguilan, J. T., Kulej, K., Sidoli, S. Guide for protein fold change and p-value calculation for non-experts in proteomics. Molecular Omics. 16 (6), 573-582 (2020).
  35. Lex, A., et al. UpSet: Visualization of intersecting sets. IEEE Transactions on Visualization and Computer Graphics. 20 (12), 1983-1992 (2014).
  36. Shah, S. G., et al. HISTome2: a database of histone proteins, modifiers for multiple organisms and epidrugs. Epigenetics and Chromatin. 13 (1), 31 (2020).
  37. Xie, Z., et al. Lysine succinylation and lysine malonylation in histones. Molecular and Cellular Proteomics. 11 (5), 100-107 (2012).
  38. Liu, J., et al. Histone succinylation and its function on the nucleosome. Journal of Cellular and Molecular Medicine. 25 (15), 7101-7109 (2021).
  39. Howe, F. S., et al. Is H3K4me3 instructive for transcription activation. Bioessays. 39 (1), 1-12 (2017).
  40. Nicetto, D., Zaret, K. S. Role of H3K9me3 heterochromatin in cell identity establishment and maintenance. Current Opinion in Genetics and Development. 55, 1-10 (2019).
  41. Wojcik, J. B., et al. Histone H3K27 dimethyl loss is highly specific for malignant peripheral nerve sheath tumor and distinguishes true PRC2 loss from isolated H3K27 trimethyl loss. Modern Pathology. 32 (10), 1434-1446 (2019).
  42. Sellers, W. R., et al. Next-generation characterization of the cancer cell line encyclopedia. Nature. 569 (7757), 503-508 (2019).
  43. Zhang, D., et al. Metabolic regulation of gene expression by histone lactylation. Nature. 574 (7779), 575-580 (2019).
  44. Farrelly, L. A., et al. Histone serotonylation is a permissive modification that enhances TFIID binding to H3K4me3. Nature. 567 (7749), 535-539 (2019).
  45. Chen, Q., et al. ADP-ribosylation of histone variant H2AX promotes base excision repair. The EMBO Journal. 40 (2), 104542 (2021).
  46. Zheng, Q., et al. Reversible histone glycation is associated with disease-related changes in chromatin architecture. Nature Communications. 10 (1), 1289 (2019).

Play Video

Cite This Article
Joseph-Chowdhury, J. N., Stransky, S., Graff, S., Cutler, R., Young, D., Kim, J. S., Madrid-Aliste, C., Aguilan, J. T., Nieves, E., Sun, Y., Yoo, E. J., Sidoli, S. Global Level Quantification of Histone Post-Translational Modifications in a 3D Cell Culture Model of Hepatic Tissue. J. Vis. Exp. (183), e63606, doi:10.3791/63606 (2022).

View Video