Denne protokollen beskriver bruken av isotermisk titreringskalorimetri (ITC) for å analysere assosiasjons- og dissosiasjonskinetikken til bindingen mellom en DNA-aptamer og tetracyklin, inkludert prøvepreparering, løpende standarder og prøver, og tolkning av de resulterende dataene.
Bestemmelsen av bindende affinitet og oppførsel mellom en aptamer og dens mål er det mest avgjørende trinnet i å velge og bruke en aptamer for anvendelse. På grunn av de drastiske forskjellene mellom aptamer og små molekyler, må forskere legge mye arbeid i å karakterisere deres bindingsegenskaper. Isotermisk titreringskalorimetri (ITC) er en kraftig tilnærming til dette formålet. ITC går utover å bestemme disassosiasjonskonstanter (Kd) og kan gi entalpiendringer og bindende støkiometri av samspillet mellom to molekyler i løsningsfasen. Denne tilnærmingen utfører kontinuerlig titrering ved hjelp av etikettfrie molekyler og registrerer frigjort varme over tid på bindingshendelsene produsert av hver titrering, slik at prosessen følsomt kan måle bindingen mellom makromolekyler og deres små mål. Her introduserer artikkelen en trinnvis prosedyre for ITC-måling av en valgt aptamer med et lite mål, tetracyklin. Dette eksemplet viser allsidigheten til teknikken og dens potensial for andre applikasjoner.
Aptamerer er ssDNA- eller RNA-fragmenter valgt gjennom en evolusjonsprosess med høy bindingsaffinitet og spesifisitet til de ønskede målene 1,2, som kan fungere som avanserte gjenkjenningselementer eller kjemiske antistoffer 3,4,5. Dermed spiller aptamerenes bindingsaffinitet og spesifisitet til deres mål en avgjørende rolle i valg og anvendelse av en aptamer, og isotermisk titreringskalorimetri (ITC) har blitt mye brukt til disse karakteriseringsformålene. Mange tilnærminger har blitt brukt til å bestemme affiniteten til aptamerer, inkludert ITC, overflateplasmonresonans (SPR), kolorimetrisk titrering, mikroskala termoforese (MST) og Bio-Layer Interferometry (BLI). Blant dem er ITC en av de nyeste teknikkene for å bestemme den termodynamiske og kinetiske assosiasjonen til to molekyler i løsningsfasen. Denne tilnærmingen utfører kontinuerlig titrering ved hjelp av etikettfrie molekyler og registrerer frigjort varme over tid på bindingshendelsene produsert ved hver titrering 6,7. I motsetning til andre metoder kan ITC tilby bindingsaffinitet, flere bindingssteder og termodynamisk og kinetisk assosiasjon (figur 1A). Fra disse innledende parametrene bestemmes Gibbs frie energiendringer og entropiendringer ved hjelp av følgende forhold:
ΔG = ΔH-TΔS
Det betyr at ITC tilbyr en komplett termodynamisk profil av den molekylære interaksjonen for å belyse bindingsmekanismene (figur 1B). Det er vanskelig å bestemme bindingsaffiniteten for små molekyler med aptamer på grunn av de drastisk forskjellige størrelsene mellom aptamer og mål. I mellomtiden kan ITC gi sensitiv måling uten merking og immobilisering av molekyler, noe som gir et middel til å holde den naturlige strukturen til aptameren og målet under målingen. Med de nevnte attributtene kan ITC brukes som standardmetode for karakterisering av binding mellom en aptamer og små mål.
Etter valg av Gu-gruppen ble denne aptameren integrert med forskjellige plattformer, inkludert elektrokjemiske aptamerbaserte biosensorer, en konkurransedyktig enzymbundet aptameranalyse og en mikrotiterplate som kan oppnå høy gjennomstrømningsdeteksjon av tetracyklin 8,9,10. Dens bindende egenskaper er imidlertid ikke belyst godt nok til å velge riktig plattform8; det er verdt å karakterisere bindingen av aptameren til tetracyklinen ved hjelp av ITC.
Metoden som presenteres her ble modifisert i henhold til instruksjon fra TA Instruments og er tilstrekkelig til å bestemme bindingsaffiniteten og termodynamikken til mange utvalgte aptamerer og mål ved vårt senter. Viktige trinn fra denne prosedyren inkluderer utveksling av bufferen for å ha et mål som samsvarer med liganden, kjøre prøver med riktige parametere og finne riktig bindingstilpasningsmodell for å analysere dataene. Kontinuerlig registrering av varmeutslipp krever eliminering av all støyvarme, for eks…
The authors have nothing to disclose.
Denne forskningen ble støttet av forsknings- og utviklingsfinansiering fra Aptagen LLC.
5'-CGTACGGAATTCG CTAGCCCCCCGGCAGGCCACGG C TTGGGTTGGTCCCACTGCGCG TGGATCCGAGCTCCAC GTG-3' |
Integrated DNA Technologies, Inc | The sequence is adopted from Gu's research, which has not identified Kd using ITC (refer references 8 and 9) | |
Affinity ITC Auto Low Volume (190 µL) System Complete–Gold Cells | TA Instruments | 61000.901 | Isothermal titration calorimetry system |
CaCl2 | Avantor (VWR) | E506-100ML | Calcium chloride 1 M in aqueous solution, Biotechnology Grade, sterile |
Centrifuge | Eppendorf | 5417R | The Eppendorf 5417R is unsurpassed in safety, reliability and ease-of-use. Very easy to maintain with a brushless motor that spins up to 16,400 RPM with maximum RCF up to 25,000 x g. |
Complete Degassing Station (110/230V) | TA Instruments | 6326 | This degasser provides a self-contained stirring platform, vacuum chamber, vacuum port, temperature control and electronic timer for proper sample preparation. |
EDTA | TekNova | E0375 | EDTA 500 mM, pH 7.5 |
NanoDrop One Microvolume UV-Vis Spectrophotometer | ThermoFisher | ND-ONE-W | UV-Vis Spectrophotometer |
Nanosep, Nanosep MF and NAB Centrifugal Devices | Pall Laboratory | OD030C34 | 3 kDa molecular weight cutoff concentrator |
PBS pH 7.4 | IBI Scientific | IB70165 | Buffer containing Sodium phosphate, Sodium chloride, Potassium phosphate, and Potassium chloride Ultra-Pure Grade Sterile filtered using 0.2 µm filter. Autoclaved at 121 °C for greater than 20 min. |
Posi-Click 1.7 mL Large Cap Microcentrifuge Tubes | labForce (a Thomas Scientific Brand) | 1149K01 | |
Tetracycline, Hydrochoride | EMD Millipore Corperation | CAS64-75-5 |