Summary

Agrobacterium tumefaciens-緑色微細藻類Chlorella vulgarisの遺伝子工学

Published: October 27, 2023
doi:

Summary

このプロトコルは安定した形質転換剤の生産をもたらす緑の微細藻類Chlorella vulgarisの核ゲノムに興味の遺伝子を統合するためのアグロバクテリウムのtumefaciens仲介された変形(AMT)の利用を輪郭を描く。

Abstract

アグロバクテリウム・ツメファシエンスを介した形質転換(AMT)は、植物ゲノムを操作するための広く採用されているツールとして機能します。しかし、 A. tumefaciensは 、多様な種への遺伝子導入能力を示します。多くの微細藻類種は、目的の遺伝子を核ゲノムに確実に組み込むための確立された方法を欠いています。微細藻類バイオテクノロジーの潜在的な利点を利用するには、シンプルで効率的なゲノム操作ツールが不可欠です。本明細書では、ハイグロマイシンBおよびセフォタキシムを含むトリスアセテートリン酸(TAP)培地へのめっきによって、レポーター緑色蛍光タンパク質(mGFP5)およびハイグロマイシンBの抗生物質耐性マーカーを利用して、工業用微細藻類種 クロレラ・ブルガリスに最適化されたAMTプロトコルが提示されます。mGFP5の発現は、継代培養の10世代以上後に蛍光 によって 定量され、T-DNAカセットの安定した形質転換を示しています。このプロトコルは市販のpCAMBIA1302植物の表現のベクトルを用いる2週以下で多数のtransgenic C. vulgaris のコロニーの信頼できる生成を可能にする。

Introduction

アグロバクテリウム・ツメファシエンス(Agrobacterium tumefaciens)は、グラム陰性土壌伝染性細菌であり、独自の王国間遺伝子導入能力を有しており、「天然遺伝子工学者」1の称号を得ています。この細菌は、腫瘍誘導プラスミド(Ti-プラスミド)からIV型分泌系を介して宿主細胞にDNA(T-DNA)を移し、宿主ゲノム1,2,3,4内にT-DNAを統合して発現させることができます。自然界では、このプロセスは植物の腫瘍形成につながり、一般にクラウンゴール病として知られています。しかし、アグロバクテリウムは、実験室条件下で酵母、真菌、藻類、ウニ胚、さらにはヒト細胞など、他のさまざまな生物にT-DNAを転写することもできます5,6,7,8。

この自然システムを利用して、アグロバクテリウム・ツメファシエンスを介した形質転換(AMT)は、TiプラスミドのT-DNA領域を修飾することにより、目的の遺伝子を宿主細胞の核ゲノムにランダムに組み込むことができます。この目的のために、広く用いられているAMT植物発現ベクターは、pCAMBIA13029である。研究者は、目的のベクターをA. tumefaciensに移植し、その後目的の宿主に移植する前に、大腸菌で簡単なクローニングワークフローを採用することができます。

緑色微細藻類は、陸上植物と多くの類似点を共有する真核生物ですが、遺伝子組み換えに対して非常に抵抗性があります。しかし、遺伝子組み換えは、微細藻類の基礎研究とバイオテクノロジー研究の両方において重要な役割を果たしています。いくつかの微細藻類種、特にクラミドモナス・ラインハルトティでは、AMTによる遺伝子組み換えにより、ヒトインターロイキン-2(hIL-2)、重症急性呼吸器症候群コロナウイルス2受容体結合ドメイン(SARS-CoV-2 RBD)、および2つの抗菌ペプチド(AMP)などの導入遺伝子の導入に成功しています10,11,12,13。これらのうち、尋常性クロレラ(Chlorella vulgaris)は、あまり気難しくなく、成長の早い緑藻類種であり、炭水化物、タンパク質、栄養補助食品、色素、およびその他の高価値化合物の持続可能な生産に大きな可能性を秘めています14。しかし、C. vulgarisのトランスジェニック株を作製するための信頼できるツールの欠如が、その商業的進歩を妨げている。C. vulgaris15 で AMT を利用した研究が発表されているのは限られているため、植物と微細藻類の培養には大きな違いがあるため、AMT プロトコルの最適化が不可欠になります。

この研究では、研究者らは、カリフラワーモザイクウイルス(CamV)35Sプロモーターの下流に緑色蛍光タンパク質(mGFP5)を挿入し、ヒスチジンタグを付加して、タンパク質発現のレポーター遺伝子として使用しました。形質転換体はハイグロマイシンBを用いて選別され、20世代以上にわたって継代培養された後、形質転換は安定していました。この研究で用いたpCAMBIA1302プラスミドは、任意の目的遺伝子を含むように容易に適合させることができます。さらに、提示された方法および材料は、活性CamV35Sプロモーターを有する他の緑藻種について調整することができ、このプロモーターはハイグロマイシンの選択に使用される。

Protocol

すべての培地および溶液は、特に明記されていない限り、使用前にオートクレーブ滅菌する必要があります。すべての遠心分離管、ピペットチップなどは、使用前に滅菌またはオートクレーブ滅菌する必要があります。簡単に参照できるように、このプロトコルで使用される培地レシピを 表1にリストします。 1. A. tumefaciensの 電気コンピテントセ…

Representative Results

上記の方法を用いて形質転換の成功を示すために、 C. vulgaris をpCAMBIA1302プラスミドを含むAGL-1と共培養するか、プラスミドを含まない(野生型で、ハイグロマイシンBとセフォタキシムを添加したTAP寒天培地に播種した)(図1A)。左端のプレートは、ハイグロマイシンB/セフォタキシムプレート上で増殖可能な形質転換コロニーを示し、中央のプレートは、野生型AGL-1が…

Discussion

変換の効率は、いくつかの異なるパラメータに関連しています。AMTに使用される A.tumefaciens 株の選択は重要です。AGL-1は、発見された最も侵襲性の高い菌株の1つであり、このため、植物AMTで日常的に使用されています。 誘導媒体にグルコース(15〜20 mM)を補給することも、AMTの効率にとって重要です。 C. vulgaris は光栄養条件と従属栄養条件の両方で増殖できることを考慮すると?…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

著者らは、オランダのライデン大学ライデン生物学研究所からpCAMBIA1302ベクターと アグロバクテリウム・ツメファシエンス AGL1を提供してくださったPaul Hooykaas教授に感謝します。また、著者らは、蛍光形質転換体の培養に協力してくれたEva Colic氏にも感謝の意を表したい。この研究は、カナダ自然科学・工学研究評議会(Natural Sciences and Engineering Research Council of Canada)とMitacs Accelerateプログラムから資金提供を受けました。

Materials

1 Kb Plus DNA ladder FroggaBio DM015
Acetosyringone Fisher Scientific D26665G
Agrobacterium tumefaciens Gold Biotechnologies Strain: AGL-1; Gift from Prof. Paul Hooykaas Genotype: C58 RecA (RifR/CarbR) pTiBo542DT-DNA
Biotin Enzo Life Sciences 89151-400
CaCl2·2H2O VWR BDH9224-1KG
Cefotaxime AK Scientific J90010
Chlorella vulgaris University of Texas at Austin Culture Collection of Algae Strain: UTEX 395 Wildtype strain
CoCl2·6H2O Sigma Aldrich C8661-25G
CuSO4·5H2O EMD Millipore CX2185-1
FeCl3·6H2O VWR BDH9234-500G
Gene Pulser Xcell Electroporator Bio-Rad 1652662 Main unit equipped with PC module.
GeneJET Plant Genome Purification Kit Thermo Scientific K0791
Glacial acetic acid VWR CABDH3093-2.2P
Glycerol BioBasic GB0232
HEPES Buffer Sigma Aldrich H-3375
Hygromycin B Fisher Scientific AAJ6068103
K2HPO4 VWR BDH9266-500G
Kanamycin Gold Biotechnologies K-250-25
KH2PO4 VWR BDH9268-500G
MgSO4·7H2O VWR 97062-134
MnCl2·4H2O JT Baker BAKR2540-01
Na2CO3 VWR BDH7971-1
Na2EDTA·2H2O JT Baker 8993-01
Na2MoO2H2O JT Baker BAKR3764-01
NaCl VWR BDH7257-7
NaH2PO4 H2O Millipore Sigma CA80058-650
NaNO VWR BDH4574-500G
NEBExpress Ni Resin NewEngland BioLabs NEB #S1427
NH4Cl VWR BDH9208-500G
pCAMBIA1302 Leiden University Gift from Prof. Paul Hooykaas pBR322, KanR, pVS1, T-DNA(CaMV 35S/HygR/CaMV polyA, CaMV 35S promoter/mgpf5-6xhis/NOS terminator)
Polypropylene Columns (5 mL) QIAGEN 34964
Precision Plus Protein Unstained Protein Standards, Strep-tagged recombinant, 1 mL Bio-Rad 1610363
Rifampicin Millipore Sigma R3501-1G
SunBlaster LED Strip Light 48 Inch  SunBlaster 210000000906
Synergy 4 Microplate UV/Vis spectrometer  BioTEK S4MLFPTA
Tetracycline Thermo Scientific Chemicals CAAAJ61714-14
TGX Stain-Free FastCast Acrylamide Kit, 12% Bio-Rad 1610185
Thiamine TCI America T0181-100G
Tris Base Fisher Scientific BP152-500
Tryptone BioBasic TG217(G211)
Vitamin B12 (cyanocobalamin) Enzo Life Sciences 89151-436
Yeast Extract BioBasic G0961
ZnSO4·7H2O JT Baker 4382-01

References

  1. Smith, E. F., Townsend, C. O. A plant tumor of bacterial origin. Science. 25 (643), 671-673 (1907).
  2. Chilton, M. D., et al. Stable incorporation of plasmid DNA into higher plant cells: The molecular basis of tumorigenesis. Cell. 11 (2), 263-271 (1977).
  3. De Cleene, M., De Ley, J. The host range of crown gall. The Botanical Review. 42, 389-466 (1976).
  4. Hooykaas, P. J., Schilperoort, R. A. Agrobacterium and plant genetic engineering. Plant Molecular Biology. 19, 15-38 (1992).
  5. Bundock, P., den Dulk-Ras, A., Beijersbergen, A., Hooykaas, P. J. J. Transkingdom T-DNA transfer from Agrobacterium tumefaciens to Saccharomyces cerevisiae. The European Molecular Biology Organization. 14 (13), 3206-3214 (1995).
  6. Piers, K. L., Heath, J. D., Liang, X., Stephens, K. M., Nester, E. W. Agrobacteriumtumefaciens-mediated transformation of yeast. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 93 (4), 1613-1618 (1996).
  7. Kumar, S. V., Misquitta, R. W., Reddy, V. S., Rao, B. J., Rajam, M. V. Genetic transformation of the green alga-Chlamydomonas reinhardtii by Agrobacteriumtumefaciens. Plant Science. 166 (3), 731-738 (2004).
  8. de Groot, M. J., Bundock, P., Hooykaas, P. J., Beijersbergen, A. G. Agrobacteriumtumefaciens-mediated transformation of filamentous fungi. Nature Biotechnology. 16 (9), 839-842 (1998).
  9. Hajdukiewicz, P., Svab, Z., Maliga, P. The small, versatile pPZP family of Agrobacterium binary vectors for plant transformation. Plant Molecular Biology. 25 (6), 989-994 (1994).
  10. Dehghani, J., Adibkia, K., Movafeghi, A., Pourseif, M. M., Omidi, Y. Designing a new generation of expression toolkits for engineering of green microalgae; robust production of human interleukin-2. BioImpacts. 10 (4), 259-268 (2020).
  11. Berndt, A. J., Smalley, T. N., Ren, B., Simkovsky, R., Badary, A., Sproles, A. E., Fields, F. J., Torres-Tiji, Y., Heredia, V., Mayfield, S. P. Recombinant production of a functional SARS-CoV-2 spike receptor binding domain in the green algae Chlamydomonas reinhardtii. PLoS One. 16, 0257089 (2021).
  12. Li, A., Huang, R., Wang, C., Hu, Q., Li, H., Li, X. Expression of anti-lipopolysaccharide factor isoform 3 in Chlamydomonas reinhardtii showing high antimicrobial activity. Marine Drugs. 19 (5), 239 (2021).
  13. Xue, B., Dong, C. M., Hu, H. H., Dong, B., Fan, Z. C. Chlamydomonas reinhardtii-expressed multimer of ToAMP4 inhibits the growth of bacteria of both Gram-positive and Gram-negative. Process Biochemistry. 91, 311-318 (2020).
  14. Khan, M. I., Shin, J. H., Kim, J. D. The promising future of microalgae: current status, challenges, and optimization of a sustainable and renewable industry for biofuels, feed, and other products. Microbial Cell Factories. 17, 36 (2018).
  15. Cha, T. S., Yee, W., Aziz, A. Assessment of factors affecting Agrobacterium-mediated genetic transformation of the unicellular green alga, Chlorella vulgaris. World Journal of Microbiology and Biotechnology. 28, 1771-1779 (2012).
  16. Lee, P. Y., Costumbrado, J., Hsu, C. Y., Kim, Y. H. Agarose gel electrophoresis for the separation of DNA fragments. Journal of Visualized Experiments. (62), e3923 (2012).
  17. Bio-Rad Laboratories Inc. A Guide to Polyacrylamide Gel Electrophoresis and Detection. Bulletin 6040, Rev C. Bio-Rad Laboratories Inc. Accessed. , (2023).
  18. NEBExpress Ni Resin Gravity Flow Typical Protocol. New England Biolabs Inc Available from: https://international.neb.com/protocols/2019/09/10/nebexpress-ni-resin-gravity-flow-typical-protocol (2023)
  19. Ward, V. C. A., Rehmann, L. Fast media optimization for mixotrophic cultivation of Chlorella vulgaris. Scientific Reports. 9, 19262 (2019).
  20. Morton, E. R., Fuqua, C. Laboratory maintenance of Agrobacterium. Current Protocols in Microbiology. , (2012).
  21. Haddadi, F., Abd Aziz, M., Abdullah, S. N., Tan, S. G., Kamaladini, H. An efficient Agrobacterium-mediated transformation of strawberry cv. Camarosa by a dual plasmid system. Molecules. 20 (3), 3647-3666 (2015).
  22. Wang, X., Ryu, D., Houtkooper, R. H., Auwerx, J. Antibiotic use and abuse: a threat to mitochondria and chloroplasts with impact on research, health, and environment. Bioessays. 37 (10), 1045-1053 (2015).
  23. Gelvin, S. B. Plant DNA repair and Agrobacterium T-DNA integration. International Journal of Molecular Sciences. 22 (16), 8458 (2021).

Play Video

Cite This Article
Roushan, M. R., Chen, C., Ahmadi, P., Ward, V. C. A. Agrobacterium tumefaciens-Mediated Genetic Engineering of Green Microalgae, Chlorella vulgaris. J. Vis. Exp. (200), e65382, doi:10.3791/65382 (2023).

View Video