Summary
نحن هنا وصف أسلوب إعداد وصيانة غرف compartmented عن خلايا عصبية حسية للزراعة العقد الجذرية الظهرية.
Abstract
الخلايا العصبية توسيع عمليات محواري التي هي بعيدة كل البعد من خلايا الجسم ليعصب الأنسجة المستهدفة ، حيث هناك حاجة الهدف المستمدة من عوامل نمو الخلايا العصبية من أجل البقاء والوظيفة. مطلوبة على وجه التحديد Neurotrophins للحفاظ على البقاء والتفريق بين الخلايا العصبية الحسية التعصيب ولكن مسألة كيف يمكن لهذه neurotrophins الهدف المستمدة من التواصل لخلايا الجسم من الخلايا العصبية التعصيب كان مجال للبحث نشطة لأكثر من 30 عاما. النموذج الأكثر شيوعا عن كيفية قبول اشارات neurotrophin تصل إلى خلايا الجسم يقترح أن يشير الإندوسومات تحمل هذه الإشارة retrogradely على طول محور عصبي. وكان من أجل دراسة النقل إلى الوراء ، وضعت أصلا لنظام الثقافة من خلال Campenot روبرت ، الذي يتم عزل أجسام الخلايا من المحاور الخاصة بهم. أسلوب إعداد هذه الدوائر compartmented لزراعة الخلايا العصبية الحسية يجمل تحفيز الانتقائي للمحطات التي تحدث في الخلايا العصبية بعد الافراج فيفو الهدف المستمدة neurotrophins. مما يشير إلى الوراء الأحداث التي تتطلب طويلة المدى تعتمد على النقل أنيبيب الوراء لها انعكاسات هامة لعلاج الاضطرابات العصبية.
Protocol
إعداد الكواشف
- طلاء الكولاجين : الكولاجين معطف زراعة الأنسجة لوحات P35 ومكان في الفرن عند 37 درجة مئوية لمدة 2 قبل أيام تشحيم وفواصل. وينبغي تركيز النهائي من الكولاجين تكون على 0.71 ملغ / مل حمض الهيدروكلوريك المخفف في N 0.001. ثم ، إضافة 1 مل من مزيج لكل لوحة.
- لوادر الشحوم : من أجل ملء المحمل الشحوم ، يجب أولا أن 60mL حقنة مليئة الشحوم فراغ كورنينج. استخدام حقنة لملء المحمل الشحوم ، وذلك في التفاف احباط ومن ثم تعقيم لمدة 45 دقيقة.
- تفلون فواصل : يجب أولا أن تكون فواصل إعادة استخدامها بعد كل تجربة لكن يجب تنظيفها بشكل صحيح. إزالة حاجز من لوحة ، وتمحو كل ما تبقى من الشحوم ومكان في حامض الكبريتيك لمدة 2 ايام. بعد إزالة من الحامض ، شطف مع غلي الماء ، 3X لمدة 20 دقيقة ، والسماح ليجف ، ومكان في طبق بتري P100 الزجاج وتعقيم لمدة 20 دقيقة.
- N2 - methylcellulose : زن من 1.5G من methylcellulose ووضعه في زجاجة 500mL. إضافة بقضيب والأوتوكلاف أنه لمدة 20 دقيقة على الجاف (من هذه النقطة يجب أن تكون جميع الأعمال العقيمة). المقبل ، إضافة 500 مليليتر من الدم وسائل الاعلام الحرة (N 2) ، واثارة في غرفة باردة حتى يذوب. قسامة إلى 50 مل وتجميد conicals في -20 درجة مئوية. قسامة للعمل ، واحدة من الأسهم conicals 50 مل في أنابيب 1mL وتجميد في -20 درجة مئوية.
- DRG وسائل الإعلام : DMEM ، 5 ٪ مصل الحصان الحرارة المعطل ، و 1 ٪ الستربتوميسين البنسلين.
- 100ng/mL DRGN وسائل الإعلام : إن تركيز الأسهم على حد سواء عامل النمو العصبي (NGF) والدماغ الناجم عن عوامل عصبية (BDNF) هو 1mg/mL. تمييع كل من neurotrophins 1:10،000 إلى وسائل الإعلام DRG. يمكن زراعتها في الثقافات وحدها NGF ، وهذا يغير من الخلايا العصبية التي تكمل البقاء في الثقافات.
ملاحظة : عند الحاجة ، وتركيز (السيتوزين الأرابينوزيد) أراك هو 1uM وتستخدم بتركيز نهائي 0.3uM. هذا وسوف تمنع نمو الخلايا الدبقية شوان وغيرها. - 10ng/mL DRGN وسائل الإعلام : خفف من وسائل الاعلام DRGN 100ng/mL (1:10) مع وسائل الاعلام DRG.
الشكل 1. الأدوات اللازمة لانشاء
إعداد غرف compartmented (1-2 بدء هذه العملية قبل أيام من تشريح)
- جعل الصفر في وسط صحن الكولاجين P35 المغلفة مع الحركة في الخارج.
- 30ul مكان methylcellulose - N2 في منتصف الصفر. مجموعة الأطباق جانبا حتى يتم مدهون المفرق.
- إرفاق عيار 23 محول كعب luer لودر الشحوم. وضع قبضة المفرق تفلون مع زوج من زاوية 90 درجة المرقأة وانها مسطحة مع مقسم مواجهة تحت المجهر. تتبع المفرق الشحوم مع التأكد من أنه في كل مرة يتم وضع محول على نقطة انطلاق جديدة يتم إدراج محول في الشحوم من الخطوة السابقة حتى لا يكون هناك خط متواصل من الشحوم (انظر الرسم البياني). حالما يتم تطبيق الشحوم إلى مقسم كامل ، بدوره واحدا من الأطباق المعدة P35 رأسا على عقب وضعه بحيث N2 - methylcellulose هو على المقصورة المتوسطة. اضغط لأسفل على الجزء السفلي من الطبق مع زوج من ملاقط. تأكد من الضغط على الداخل من مقسم في أربع زوايا (أعلى اليسار ، وانخفاض الحق ، والحق العلوي ، أسفل اليسار ، والمبينة في الرسم التخطيطي بواسطة "X").
الشكل 2 : خطوات لتشحيم المفرق
ملاحظة : من المهم للضغط بقوة كافية بحيث يجعل الشحوم ختم كاملة مع الطبق ، ولكن إذا تم إضافة الكثير من الضغط ، والمحاور ولن العبور الى الجانب مقصورات.
التقط المرقأة ، اقلبه وunclamp المفرق. أخيرا ، ضع الطبق مع المفرق ترتبط بقوة تحت المجهر التركيز على الجزء السفلي من المقصورة المتوسطة. مع المحمل الشحوم ، وجعل حاجز صغير (0.25 سم) مرة واحدة بحيث توضع الخلايا في وسط المقصورة التي لا يمكن تسرب. - بعد اقامة عدة ثقافات ، ووسائل الإعلام في كل مكان DRG من المقصورات الجانبية ومكان في حاضنة التي سيتم الإبقاء على الخلايا. السماح للثقافات على الجلوس لعدة ساعات ومن ثم تحقق من وجود تسرب. إذا كانت وسائل الاعلام قد تسربت الى حجرة متوسطة ، ثم ثقافة غير قابلة للاستخدام.
ملاحظة : عندما تعلم الاولى من هذا الأسلوب ، فإنه من المهم لاقامة المزيد من الثقافات وهناك حاجة لإجراء التجربة ، كما سيتم عدة تتسرب منها المياه.
الشكل 3 : "جيد ضد تسرب" ثقافة
الحفاظ على الخلايا العصبية في الثقافات compartmented DRG
- اليوم 1 : استبدال DRG وسائل الإعلام في المقصورات جنب مع 100ng/mL DRGN أراك + وسائل الإعلام. إجراء تشريح الخلايا وإضافة إلى مركز صحي (100،000 الخلايا).
- يوم 2 : إضافة وسائل الاعلام + 10ng/mL أراك إلى خارج الفاصل تفلون حتى وسائل الإعلام أكثر من التدفقات حاجز الشحوم والسوائل التبادلات مع مركز صحي.
- اليوم 3 : استبدال وسائل الإعلام في المقصورات الجانبية لDRGN 100ng/mL إهمال أراك وتحيط مع 10ng/mL DRGN إهمال أراك.
- اليوم 6 : استبدال وسائل الإعلام في المقصورات الجانبية ل1ng/mL + أراك وتحيط مع وسائل الاعلام DRG + أراك.
- يوم 9 : استخدام لالتجريب.
الشكل 4 : صور IHC الهيئات الخلية والمحاوير القاصي
ملاحظة : عند تغيير وسائل الإعلام ، من المهم أن نضح السائل من أعلى المقصورة الجانبية لكل منهما. أيضا ، لا تتغير أبدا وسائل الإعلام من منتصف المقصورة نفسها ، فقط من المحيط ، والسماح لها تدفق أكثر من حاجز الشحوم في المركز.
Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.
Discussion
في هذا الفيديو ، لقد أثبتنا كيفية إعداد وصيانة غرف compartmented لاستخدامها في زراعة الخلايا العصبية DRG. ذلك صحيح ، وهذا النظام يسمح الفصل بين خلايا الجسم من محور عصبي ، من أجل دراسة الآليات التي neurotrophins إشارة عبر محاور عصبية طويلة. لأنه ليس هناك عزلة fluidic بين المقصورات ، لأنها تتيح لتحفيز انتقائية أو علاج صحي واحد دون أن تتأثر المقصورات الأخرى. يمكن أن الثقافات غرفة Compartmented دعم أنواع الخلايا الأخرى بما فيها الخلايا العصبية المتعاطفة من العقد لعنق الرحم متفوقة ، والعقدة العصبية في شبكية العين ، والخلايا العصبية القشرية. فهم قد المكاني لنقل الإشارة neurotrophin تقديم رؤى جديدة في علاج الاضطرابات العصبية. وترتبط اضطرابات الاعصاب عدة ، من بينها مرض الزهايمر ومرض هنتنغتون والأمراض العصبية الحركية ، وعيوب في النقل محواري. وقد استخدمت الدراسات التي أجريت مؤخرا غرف ميكروفلويديك بدلا من هذه الغرف compartmented. غرف ميكروفلويديك 4،5 تتمتع بالعديد من المزايا للتحليل التصوير.
لقد اختبرت دراسات سابقة قدرة هذه الثقافات لمنع نشرها بين المحوار ومقصورة 1،3،6 خلايا الجسم. ويمكن بسهولة أن يكون هذا اختبار بإضافة تركيزات منخفضة من صبغة زرقاء مثل التريبان مقصورة واحدة فقط ، وابحث عن نشرها للصباغة. يجب أن يكون هناك نشر القليل أو لا مرئية في غضون 24 ساعة.
Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.
Acknowledgments
نود أن نشكر كاتارينا Cosker وCourchesne ستيفاني لإجراء مناقشات مفيدة.
Materials
Name | Type | Company | Catalog Number | Comments |
collagen | Reagent | BD Biosciences | 354249 | |
N2-methylcellulose 400CPS | Reagent | Sel-Win Chemicals | ||
Teflon divider | Other | Tyler Research | CAMP10 | many other types of dividers are available |
Pin rake | Tool | Tyler Research | Camp-PR | |
Grease loader | Tool | Tyler Research | Camp-GLSS | |
DMEM | Reagent | Fisher Scientific | MT10017CV | |
NGF | Reagent | PeproTech Inc | 450-01 | |
BDNF | Reagent | PeproTech Inc | 450-02 | |
High vacuum grease | Reagent | Fisher Scientific | 14-635-5D | |
AraC | Reagent | Sigma-Aldrich | C-1768 | |
23 gauge luer stub adapter | Tool | Fisher Scientific | 427565 | |
90° angle hemostats | Tool | Roboz Surgical Instruments Co. | RS-7035 |
References
- Campenot, R. B. Independent Control of the Local Environment of Somas and Neurites. Methods in Enzymology. 58, 302-307 (1979).
- Watson, F. L., et al. Neurotrophins use the Erk5 pathway to mediate a retrograde survival response. Nature Neuroscience. 4, 981-988 (2001).
- Heerssen, H. M., et al. Dynein motors transport activated Trks to promote survival of target-dependent neurons. Nature Neuroscience. 7, 596-603 (2004).
- Taylor, A. M., et al. A microfluidic culture platform for CNS axonal injury, regeneration and transport. Nature Methods. 2, 599-605 (2006).
- Park, J. W., et al. Microfluidic culture platform for neuroscience research. Nat Protoc. 4, 2128-2136 (2006).
- Ure, D. R., et al. Retrograde transport and steady-state distribution of 125I-nerve growth factor in rat sympathetic neurons in compartmented cultures. J Neuroscience. 4, 1282-1290 (1997).