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Artigo de método

Biologicamente fabricação de materiais derivados injetável para Engenharia de Tecidos do Miocárdio

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DOI:

10.3791/2109

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20 de dezembro de 2010

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Neste artigo

Resumo

Métodos para a preparação de um gel matriz injetável a partir de tecido decelularizado e injetá-lo em rato miocárdio In vivo São descritos.

Resumo

Este protocolo fornece métodos para a preparação de um gel injetável matriz extracelular (ECM) para aplicações de engenharia de tecidos do miocárdio. Resumidamente, o tecido é decelularizado liofilizada, moída, enzimaticamente digerido, e então levadas ao pH fisiológico. A liofilização remove todo o conteúdo de água do tecido, resultando em ECM seco que podem ser moídos em um pó fino com um pequeno moinho. Depois da moagem, o pó ECM é digerida com pepsina para formar uma matriz de injetáveis. Após o ajuste para pH 7,4, o material da matriz líquido pode ser injetado no miocárdio. Resultados de ensaios de caracterização prévios mostraram que os géis matriz produzida a partir de decelularizado pericárdio e miocárdio conservar os componentes ECM nativa, incluindo diversas proteínas, peptídeos e glicosaminoglicanos. Dada a utilização deste material para engenharia de tecidos, na caracterização vivo é especialmente útil, aqui, um método para a realização de uma injeção intramural para o ventrículo esquerdo (VE) da parede livre é apresentado como um meio de analisar a resposta do hospedeiro ao gel matriz em um modelo animal de pequeno porte. Acesso à cavidade torácica é adquirida através do diafragma ea injeção é feita um pouco acima do ápice na parede livre do VE. O andaime biologicamente derivada pode ser visualizado por biotina rotulagem antes da injeção e, em seguida, coloração secções de tecido com um rabanete de cavalo conjugado com peroxidase neutravidin e visualização através de coloração diaminobenzidina (DAB). Análise da região de injeção também pode ser feito com coloração histológica e imuno-histoquímico. Desta forma, o gel previamente examinadas matriz de pericárdio e miocárdio foram mostrados a forma fibrosa, redes porosas e promover a formação de vasos na região da injeção.

Protocolo

1. Pré-processamento de preparação dos tecidos

  1. Antes de utilizar este protocolo, é preciso ter já decelularizado o tecido de escolha. Para este exemplo, suína fresca e as amostras de pericárdio humanos são decelularizado usando lavagens hipotônica e hipertônica em água deionizada (DI) e dodecil sulfato de sódio (SDS).
  2. Especificamente, primeiro lave o pericárdio suíno em água DI por 30 minutos, em seguida, agitar continuamente em SDS 1% em tampão fosfato salino (PBS) por 24 horas, seguido de água a 5 horas DI enxaguar. Para pericárdio humano, primeiro lave em água DI por 30 minutos, em seguida, agitar continuamente em SDS 1% em PBS ....

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Discussão

Este método permite a geração de biologicamente derivada, andaimes injetável para a engenharia de tecidos do miocárdio. Embora estes métodos foram desenvolvidos inicialmente para a fabricação e testes in vivo de um gel matriz do miocárdio e apresentou aqui com um gel matriz de pericárdio, este protocolo pode ser adaptado para uso com qualquer tecido, desde que o tecido pode ser adequadamente descelularizados. Decelularização deve ser realizada e verificada antes da utilização destes métodos, como a presença de .......

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Divulgações

Use animal: Todos os experimentos deste estudo foram realizados de acordo com as directrizes publicadas pela Institutional Animal Care e do Comitê Use da Universidade da Califórnia, San Diego e da Associação Americana para Credenciamento de Laboratório Animal Care.

Agradecimentos

Esta pesquisa foi financiada em parte pelo Programa Novo Diretor do NIH Innovator Award, que faz parte do Roteiro NIH para Pesquisa Médica, através de concessão de número 1-DP2-OD004309-01. SBS-N. gostaria de agradecer a NSF para uma Bolsa de Investigação Pós-Graduação.

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Materiais

Lista de materiais utilizados neste artigo
NomeEmpresaNúmero de catálogoComentários
Reagentes:
PepsinaSigma-Aldrichp6887-1GLiofilizado
BiotinaThermo Fisher Scientific, Inc.21217
Neutravidina-HRPThomas Scientific21130
Equipamento:
Moedor Wiley MiniThomas Scientific3383L10
Liofilizador LabconcoLabconco Corp.7670520
Suprimentos cirúrgicos:
BetadinePurdue Products L.P.67618-154-16
Solução de Ringer com lactatoMWI Veterinary Supply003966
KY JellyMWI Veterinary Supply28658
Lidocaína, 2%MWI Veterinary Supply17767
Buprenorfina cloridratoReckitt Benckiser12496-0757-1
Pomada de lágrima artificialFisher ScientificNC9860843
Pomada antibiótica triplaFisher Scientific19082795
IsófluranoMWI Veterinary Supply60307-120-25
Otoscópio MWI Veterinary Supply008699
Válvula de três viasMWI Veterinary Supply006245
Sutura 3-0 VicrileMWI Veterinary SupplyJ327H
Sutura 5-0 ProlineMWI Veterinary Supplys-1173
Agulha de corte reverso (RC)Ethicon Inc.8684G
Microhemostáticos Fine Science Tools13013-14
Pinça micro dentadaFine Science Tools11084-07
Bisturi nº 10Fine Science Tools10110-01
Tesoura rombaFine Science Tools14108-09
Tesoura curva afiadaFine Science Tools14085-08
Pinça grande serrilhadaFine Science Tools1106-12
Tubo de sucção PE160BD Biosciences427430
Tosquiadeira MWI Veterinary Supply21608
Grampos cirúrgicos/aplicador de grampos Ethicon Inc.PRR35
Suprimentos gerais:
Placas de agitação
HCl 0,1 M
NaOH 1 M
PBS 10x
PBS 1x
Etanol 70%
Seringas de 0,1 mL
Seringa de 10 mL
Cotonetes
Cola cirúrgica
Campo cirúrgico
Grampos para toalha
Aspirador de mão pequeno

Referências

  1. Seif-Naraghi, S. B., Salvatore, M. A., Magoffin-Schup, P. J., Hu, D. P., Christman, K. L. Design and characterization of an injectable pericardial matrix gel: A potentially autologous scaffold for cardiac tissue engineering. Tissue Engineering. , (2009).
  2. Freytes, D. O., Martin, J., Velankar, S. S., Lee, A. S., Badylak, S. F.

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Reimpressões e permissões

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