Summary

Large Scale zebravis-Based In vivo Kleine Molecule Screen

Published: December 30, 2010
doi:

Summary

Zebravis heeft ontpopt als een krachtig<em> In vivo</em> Platform voor fenotype-based drug-schermen en chemische genetische analyse. Hier demonstreren we een eenvoudige, praktische methode voor grootschalige screening van kleine moleculen met behulp van zebravis embryo's.

Abstract

Gezien hun geringe omvang embryo, snelle ontwikkeling, transparantie, vruchtbaarheid, en tal van moleculaire, morfologische en fysiologische overeenkomsten met zoogdieren, heeft zebravis ontpopt als een krachtig<em> In vivo</em> Platform voor fenotype-based drug-schermen en chemische genetische analyse. Hier demonstreren we een eenvoudige, praktische methode voor grootschalige screening van kleine moleculen met behulp van zebravis embryo's.

Protocol

1) zebravis Ei Collectie Op de middag voorafgaand aan de dag van de chemische scherm, opgezet 10 tot 20 zebravis kweekbakken. Vul elke tank met water uit de aquacultuur systeem. Met behulp van een visnet, overdracht een volwassen man en een tot twee volwassen vrouwtjes tot innerlijke container in elk kweekbak. Scheiden de mannelijke en vrouwelijke vis uit elkaar met een divider. Het etiket van de kooien en doe een deksel over hen. Op de ochtend van het scherm, verwijder de verdelers van de kweekbakk…

Discussion

Bij het plannen van een zebravis-gebaseerde chemische scherm, moet bijzondere aandacht worden besteed aan de robuustheid van het fenotype in kwestie en de achtergrond van een dergelijke snelheid fenotype. Dit is vooral van belang voor schermen voor chemische onderdrukkers van een geïnduceerde fenotype. Bijvoorbeeld, voor een fenotype veroorzaakt door hitte-shock inductie van een transgen, de voorwaarde dat het fenotype induceert reproduceerbaar moet precies in kaart worden gebracht voordat wordt begonnen met het scherm…

Declarações

The authors have nothing to disclose.

Materials

  1. Minimum of 20 pairs of adult zebrafish of desired genotype.
  2. Fish nets, Breeding tanks, with removable inner container and dividers (Aquatic Habitats).
  3. Petri dishes (10 cm).
  4. Plastic tea strainer.
  5. Wash bottle containg embryo water.
  6. Disposable polyethylene transfer pipettes.
  7. Polystyrene 96-well round-bottom assay plates (Corning COSTAR; Lowell, MA).
  8. Glass Pasteur pipette (Fisher Scientific).
  9. Manual pipette pump, 10 mL (Bel-Art Products, Pequannock, NJ).
  10. E3 embryo medium: 5 mM NaCl, 0.17 mM KCl, 0.33 mM CaCl2 , 0.33 mM MgSO4 , containing 0.003% PTU (phenylthio-carbamide, Sigma; St. Louis, MO). PTU can be prepared as a 10x solution by dissolving 0.3-g PTU in 1 L of E3 embryo media. Solutions containing PTU should be protected from light by covering with aluminum foil.
  11. 12-channel pipettes, 2-20 μL (Eppendorf).
  12. 12-channel pipettes, 3-300 μL (Eppendorf).
  13. Disposable polystyrene pipette basin, 50 mL (Fisher Scientific).
  14. Small molecule library of structurally diverse compounds arrayed in a 96-wll format at 10 mM stock in DMSO. Each master plate is aliquoted into 96-well polypropylene storage plates (Corning), and stored at -80°C until use.
  15. Aluminum sealing tape for 96-well plates (Nunc, Rochester, NY).
  16. DMSO (Sigma, St. Louis, MO).
  17. Basic incubator, 28.5°C (Fisher Scientific).
  18. Stereomicroscope with transmitted light base (Leica Microsystems, Bannockburn, IL).

Referências

  1. Bayliss, P. E. Chemical modulation of receptor signaling inhibits regenerative angiogenesis in adult zebrafish. Nature chemical biology. 2, 265-273 (2006).
  2. Burns, C. G. High-throughput assay for small molecules that modulate zebrafish embryonic heart rate. Nature chemical biology. 1, 263-264 (2005).
  3. Hao, J. In vivo structure-activity relationship study of dorsomorphin analogues identifies selective VEGF and BMP inhibitors. ACS chemical biology. 5, 245-253 (2010).
  4. Hong, C. C., Peterson, Q. P., Hong, J. Y., Peterson, R. T. Artery/vein specification is governed by opposing phosphatidylinositol-3 kinase and MAP kinase/ERK signaling. Curr Biol. 16, 1366-1372 (2006).
  5. Milan, D. J., Peterson, T. A., Ruskin, J. N., Peterson, R. T., MacRae, C. A. Drugs that induce repolarization abnormalities cause bradycardia in zebrafish. Circulation. 107, 1355-1358 (2003).
  6. Peterson, R. T., Link, B. A., Dowling, J. E., Schreiber, S. L. Small molecule developmental screens reveal the logic and timing of vertebrate development. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 97, 12965-12969 (2000).
  7. Yu, P. B. Dorsomorphin inhibits BMP signals required for embryogenesis and iron metabolism. Nature chemical biology. 4, 33-41 (2008).
  8. Zon, L. I., Peterson, R. T. In vivo drug discovery in the zebrafish. Nature reviews. 4, 35-44 (2005).
  9. Stern, H. M. Small molecules that delay S phase suppress a zebrafish bmyb mutant. Nature chemical biology. 1, 366-370 (2005).
  10. Peterson, R. T. Chemical suppression of a genetic mutation in a zebrafish model of aortic coarctation. Nature biotechnology. 22, 595-599 (2004).
check_url/pt/2243?article_type=t

Play Video

Citar este artigo
Hao, J., Williams, C. H., Webb, M. E., Hong, C. C. Large Scale Zebrafish-Based In vivo Small Molecule Screen. J. Vis. Exp. (46), e2243, doi:10.3791/2243 (2010).

View Video