Summary

Könscell Transplantation och testiklar Tissue Xenografting hos möss

Published: February 06, 2012
doi:

Summary

Protokoll för könsceller transplantation och testiklar xenografting vävnad beskrivs. Könsceller transplantation resultat i givar-derived spermatogenes i mottagarländerna testiklar och representerar en funktionell beredning analys för identifiering av spermatogonial stamceller (SSC). Testikel vävnaden xenografting återger testiklar utveckling och spermatogenes av olika givare arter i mottagande möss.

Abstract

Könscell transplantation har utvecklats av Dr Ralph Brinster och kollegor vid University of Pennsylvania i 1994 1,2. Dessa banbrytande studier visade att mikroinjektion av könsceller från bördiga donatormöss i sädeskanalerna av alla infertila mottagande möss resulterar i givaren härlett spermatogenes och spermieproduktion av mottagaren djuret 2. Användningen av donatordjur bär den bakteriella β-galaktosidasgenen möjliggjorde identifiering av givare härrörande spermatogenes och överföring av givare haplotypen till avkomman med mottagande djur 1. Helt överraskande, efter transplantation in i lumen av sädeskanalernas tubuli, voro transplanterade könscellerna kunna röra sig från den luminala avdelningen till den källaren membranet där spermatogonier är belägna 3. Det är allmänt godtas att förordningen enbart SSC: er är i stånd att kolonisera den nisch-och återupprätta spermatogenesen hos de mottagande testikel. Därför könscelltransplantation ger ett funktionellt synsätt för att studera den nisch stamceller i testiklarna och för att karakterisera förmodade spermatogonial stamceller. Till datum, är grodden celltransplantation användas för att belysa grundläggande biologi stamcell, att producera transgena djur igenom genetisk manipulering av könsceller före transplantation 4,5, för att studera Sertolicellen-grodden cell-interaktion 6,7, Rymdbolaget homing och kolonisering 3, 8, samt SSC självförnyelse och differentiering 9,10.

Könscell transplantation är också möjligt i stora arter 11. I dessa är de huvudsakliga användningsområdena är bevarandet av fertilitet, spridning av elit genetik i djurpopulationer, och generering av transgena djur som studiet av spermatogenes och SSC biologi med denna teknik är logistiskt svårare och dyrare än hos gnagare. Transplantation av könsceller från stora arter i sädeskanalerna av möss leder till colonization av donerade celler och spermatogonial expansion, men inte i sin fulla differentiering förmodligen på grund av inkompatibilitet mellan mottagaren somatiska cellen fack med könscellerna från fylogenetiskt avlägsna arter 12. Ett alternativt tillvägagångssätt är transplantation av könsceller från stora arter tillsammans med sin omgivning somatisk avdelning. Vi rapporterade först i 2002, att små fragment av testiklarna vävnad från omogna män transplanterade under dorsal huden immundefekta möss kan överleva och genomgå en fullständig utveckling med produktion av befruktning kompetent sperma 13. Sedan dess har testiklarna vävnad xenografting har visat sig vara framgångsrik i många arter och framträdde som ett värdefullt alternativ för att studera testiklar utveckling och spermatogenes av stora djur i möss 14.

Protocol

DEL A. könsceller transplantation hos möss 1. Beredning av mottagande möss Mottagarna ska vara immunologiskt toleranta (antingen genetiskt anpassade till givare eller immunbrist) till cellerna donator testiklar. Mottagarna ska antingen vara naturligt saknar spermatogenesen (t.ex. W / W v möss) eller utarmat av endogena könsceller. Hos könsceller utarmning kan uppnås genom att bestrålning eller kemoterapeutiska droger såsom Busulfan. I detta pro…

Discussion

1. Germ celltransplantation

Germ celltransplantation tillhandahåller den enda funktionell-analysen för otvetydig bekräftelse av närvaron av spermatogonial stamceller (SSC: er) i en cellpopulation. Endast SSC kan hem till och kolonisera SSC nisch vid basalmembranet och initiera donator-derived spermatogenesen. Könscell transplantation gjort det möjligt att studera och manipulera SSC på ett aldrig tidigare skådat sätt. Tekniken har använts för att framställa transgena djur genom gene…

Declarações

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Arbete från författarna laboratoriet har fått stöd av USDA / CSREES / NRICGP (2007-35203-18213) NIH / NCRR (2 R01 RR17359-06), NIH / NIEHS (1 R21 ES014856-01A2) och Alberta innovativt – Health Solutions.

Materials

Name of the reagent Company Catalogue number
Collagenase (type IV) Sigma C5138
Trypsin-EDTA Invitrogen 25200-056
DNaseI Sigma DN25
DMEM Invitrogen 31053-028
Trypan blue stain Invitrogen 15250-061
Nylon mesh cell strainer BD biosciences 352340 (40μm)
352350 (70μm)
Busulfan Sigma B2635
Thin-Wall Glass Capillaries World Precision Instrument TW 100-3
BD intramedic plyethylene tubing (PE100) BD CA-63018-725
Ethicon 6-0 Silk Suture Ethicon 706G
Wound clips BD 427631
Sigmacote Sigma SL2
X-gal Sigma B4252
Potassium Ferrocyanide Sigma P9387
Potassium Ferricyanide Sigma P3667
magnesium chloride Sigma 208337
sodium deoxycholate Sigma D6750
N,N-Dimethylformamide Sigma D4551
Igepal CA-630 Sigma 18896

Referências

  1. Brinster, R. L., Avarbock, M. R. Germline transmission of donor haplotype following spermatogonial transplantation. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 91 (24), 11303-11303 (1994).
  2. Brinster, R. L., Zimmermann, J. W. Spermatogenesis following male germ-cell transplantation. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 91 (24), 11298-11298 (1994).
  3. Nagano, M., Avarbock, M. R., Brinster, R. L. Pattern and kinetics of mouse donor spermatogonial stem cell colonization in recipient testes. Biology of Reproduction. 60 (6), 1429-1429 (1999).
  4. Nagano, M., Brinster, C. J., Orwig, K. E. Transgenic mice produced by retroviral transduction of male germ-line stem cells. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 98 (23), 13090-13090 (2001).
  5. Ryu, B. Y., Orwig, K. E., Oatley, J. M. Efficient generation of transgenic rats through the male germline using lentiviral transduction and transplantation of spermatogonial stem cells. Journal of Andrology. 28 (2), 353-353 (2007).
  6. Hess, R. A., Cooke, P. S., Hofmann, M. C. Mechanistic insights into the regulation of the spermatogonial stem cell niche. Cell Cycle. 5 (11), 1164-1164 (2006).
  7. Oatley, M. J., Racicot, K. E., Oatley, J. M. Sertoli cells dictate spermatogonial stem cell niches in the mouse testis. Biology of Reproduction. 84 (4), 639-639 (2011).
  8. Nagano, M. C. Homing efficiency and proliferation kinetics of male germ line stem cells following transplantation in mice. Biology of Reproduction. 69 (2), 701-701 (2003).
  9. Kubota, H., Avarbock, M. R., Brinster, R. L. Growth factors essential for self-renewal and expansion of mouse spermatogonial stem cells. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 101 (47), 16489-16489 (2004).
  10. Oatley, J. M., Avarbock, M. R., Telaranta, A. I. Identifying genes important for spermatogonial stem cell self-renewal and survival. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 103 (25), 9524-9524 (2006).
  11. Dobrinski, I. Germ cell transplantation and testis tissue xenografting in domestic animals. Animal Reproduction Science. 89 (1-4), 137-137 (2005).
  12. Dobrinski, I., Avarbock, M. R., Brinster, R. L. Transplantation of germ cells from rabbits and dogs into mouse testes. Biology of Reproduction. 61 (5), 1331-1331 (1999).
  13. Honaramooz, A., Snedaker, A., Boiani, M. Sperm from neonatal mammalian testes grafted in mice. Nature. 418 (6899), 778-778 (2002).
  14. Rodriguez-Sosa, J. R., Dobrinski, I. Recent developments in testis tissue xenografting. Reproduction. 138 (2), 187-187 (2009).
  15. Dobrinski, I., Rathi, R. Ectopic grafting of mammalian testis tissue into mouse hosts. Methods in Molecular Biology. 139, 450-450 (2008).
  16. Rodriguez-Sosa, J. R., Schlatt, S., Dobrinski, I., Seli, E., Agarwal, A. Testicular tissue transplantation for fertility preservation. Fertility Preservation: Emerging Technologies and Clinical Applications. , 331-331 (2011).
  17. Rathi, R., Honaramooz, A., Zeng, W. Germ cell fate and seminiferous tubule development in bovine testis xenografts. Reproduction. 130 (6), 923-923 (2005).
  18. Rathi, R., Honaramooz, A., Zeng, W. Germ cell development in equine testis tissue xenografted into mice. Reproduction. 131 (6), 1091-1091 (2006).
  19. Kim, Y., Selvaraj, V., Pukazhenthi, B. Effect of donor age on success of spermatogenesis in feline testis xenografts. Reproduction, Fertility, and Development. 19 (7), 869-869 (2007).
  20. Arregui, L., Rathi, R., Zeng, W. Xenografting of adult mammalian testis tissue. Animal Reproduction Science. 106 (1-2), 65-65 (2008).
  21. Schlatt, S., Honaramooz, A., Ehmcke, J. Limited survival of adult human testicular tissue as ectopic xenograft. Human Reproduction. 21 (2), 384-384 (2006).
  22. Shinohara, T., Avarbock, M. R., Brinster, R. L. beta1- and alpha6-integrin are surface markers on mouse spermatogonial stem cells. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 96 (10), 5504-5504 (1999).
  23. Kanatsu-Shinohara, M., Toyokuni, S., Shinohara, T. CD9 is a surface marker on mouse and rat male germline stem cells. Biology of Reproduction. 70 (1), 70-70 (2004).
  24. Ryu, B. Y., Orwig, K. E., Oatley, J. M. Effects of aging and niche microenvironment on spermatogonial stem cell self-renewal. Stem Cells. 24 (6), 1505-1505 (2006).
  25. Costoya, J. A., Hobbs, R. M., Barna, M. Essential role of Plzf in maintenance of spermatogonial stem cells. Nature Genetics. 36 (6), 653-653 (2004).
  26. Morrow, C. M., Hostetler, C. E., Griswold, M. D. ETV5 is required for continuous spermatogenesis in adult mice and may mediate blood testes barrier function and testicular immune privilege. Annals of the New York Academy of Sciences. 1120, 144-144 (2007).
  27. Zeng, W., Snedaker, A. K., Megee, S. Preservation and transplantation of porcine testis tissue. Reproduction, Fertility and Development. 21 (3), 489-489 (2009).
  28. Jahnukainen, K., Ehmcke, J., Hergenrother, S. D. Effect of cold storage and cryopreservation of immature non-human primate testicular tissue on spermatogonial stem cell potential in xenografts. Human Reproduction. 22 (4), 1060-1060 (2007).
  29. Rathi, R., Zeng, W., Megee, S. Maturation of testicular tissue from infant monkeys after xenografting into mice. Endocrinology. 149 (10), 5288-5288 (2008).
  30. Honaramooz, A., Li, M. W., Penedo, M. C. Accelerated maturation of primate testis by xenografting into mice. Biology of Reproduction. 70 (5), 1500-1500 (2004).
check_url/pt/3545?article_type=t

Play Video

Citar este artigo
Tang, L., Rodriguez-Sosa, J. R., Dobrinski, I. Germ Cell Transplantation and Testis Tissue Xenografting in Mice. J. Vis. Exp. (60), e3545, doi:10.3791/3545 (2012).

View Video